E2通过p38 MAPK及PI3K/Akt信号通路调控奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2的表达

封紫嫣，王相国，袁梦仪，付博凡，谢彤彤，常 迪，吴春阳，倪和民，肖龙菲

(北京农学院 动物科学技术学院，北京 102206)

哺乳动物的妊娠过程需要母体与胎儿间建立联系、进行物质交换并协同发展。子宫是孕育胎儿的重要场所，在哺乳动物生殖过程中，子宫内膜与胚胎附植间有着密切联系。子宫内膜位于哺乳动物的子宫腔面，正常的子宫内膜由内侧的上皮层(具有分泌功能的子宫内膜上皮细胞)和其下方的固有层(基质细胞)构成。在生殖过程中，子宫内膜与胚胎附植间有着密切联系[1]；同时，子宫内膜作为卵巢激素的作用靶点，其多种生物功能受卵巢激素调节，如雌激素和孕激素[2]。哺乳动物的卵巢、黄体、胎盘和睾丸均可分泌雌激素。雌二醇(Estradiol，E2)作为功能性最强的雌激素，参与了调节子宫内细胞增殖、腔上皮腺体分泌以及增加子宫内血管通透性和子宫肌收缩等功能[3]。

环氧合酶2(Cyclooxygenase-2，COX-2)是合成前列腺素类化合物(Prostaglandins，PGs)的关键限速酶，COX-2催化合成的PGs在排卵、胚胎植入和胚胎发育等方面发挥了重要作用。PGs是由环氧合酶催化不饱和脂肪酸形成的一类脂类介质[4]，属于膜磷脂的衍生物，其可被催化为5种前列腺素，分别为PGE2、PGF2α、PGI2、PGD2及血栓烷TXA2[5]。妊娠早期，PGF2α能促进排卵及配子结合，妊娠过程中PGF2α参与调控胚胎附着和发育[6]。研究显示，子宫来源的PGF2α对啮齿类和反刍类动物的黄体溶解发挥着重要的调节作用[7]，PGF2α还可促进子宫颈成熟和促进分娩等。PGF2α通过诱导猪子宫平滑肌收缩从而参与调节分娩过程[8]。E2能诱导牛输卵管上皮细胞[9]和子宫内膜上皮细胞COX-2的表达，从而促进PGF2α的分泌[10]。哺乳动物妊娠过程中的激素调控十分复杂，关于E2调控妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2的表达及PGF2α合成的具体调控机制，目前研究尚不充分。

因此，试验以奶牛为模式动物，通过体外培养妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞，利用qRT-PCR、Western Blot、ELISA等技术，探究E2对奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2的表达及PGF2α分泌的影响，并深入研究相关的作用途径及分子机制，为进一步探究奶牛的生殖生理和繁殖机理奠定理论基础。

1 材料和方法

1.1 奶牛子宫样品收集

奶牛子宫收集自河北省大厂县屠宰场。根据子宫中胎儿大小，选取外观健康，妊娠45～90 d的奶牛子宫。将收集的子宫组织用37 ℃预温含0.01 mol/L双抗的DPBS(磷酸盐缓冲液)清洗后，2 h内带回实验室用于后续的细胞培养。

1.2 奶牛子宫内膜上皮细胞的体外培养

无菌条件下，用眼科镊和眼科剪将子宫内侧脂肪组织去除干净。剥离子宫内膜并用含0.01 mol/L双抗的DPBS清洗3次后，剪成1 mm2大小的组织块。将组织块接种于75 cm2细胞培养瓶中，静置2 h后，加入5 mL含10% FBS的完全培养基(DMEM/F12，HYClone)并放入37 ℃、5% CO2细胞培养箱中进行培养。每隔48 h进行换液，当细胞铺满至80%时，根据子宫基质细胞和子宫内膜上皮细胞消化时间不同，用0.25%胰蛋白酶进行细胞纯化和传代。

1.3 子宫内膜上皮细胞的鉴定

将纯化后的F2子宫内膜上皮细胞均匀传至6孔板中进行细胞爬片。培养3 d后选取细胞量为50%～60%的细胞去除细胞培养液，用4 ℃预冷的DPBS清洗3次；加入1 mL 4%的多聚甲醛固定30 min。4 ℃预冷的DPBS清洗3次后，加入1 mL 0.01% Triton X-100通透15 min。用4 ℃预冷的DPBS清洗3次后，加入1 mL 5%的BSA封闭30 min。加入200 μL稀释好的兔抗多克隆角蛋白-18抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-2043R，1∶100)4 ℃过夜，之后加入100 μL PE标记的山羊抗兔荧光二抗(北京全式金生物技术有限公司，HS121，1∶150)，37 ℃避光孵育1 h。4 ℃预冷的DPBS清洗后，加入200 μL的1 μg/mL DAPI避光孵育1 min。预冷的DPBS清洗并用倒置荧光显微镜拍照观察。

1.4 细胞处理

将纯化后子宫内膜上皮细胞按106/mL细胞密度接种于6孔板中，放入37 ℃、5% CO2细胞培养箱中进行培养。待细胞量为80%～90% 时弃去培养板中的培养基，加入基础培养基对细胞饥饿12 h。为了检测E2对奶牛子宫内膜上皮细胞COX-2表达及PGF2α分泌的影响，加入E2(Sigma公司，美国)使其终浓度分别为0,10-9,10-8,10-7mol/L，分批处理细胞，处理1 h后收集的细胞检测Akt及p38 MAPK磷酸化水平；处理24 h后收集的细胞和细胞培养基检测COX-2基因和蛋白的表达及PGF2α分泌水平的变化。为了验证E2是否通过p38 MAPK和PI3K/Akt信号通路调控子宫内膜上皮细胞COX-2表达及PGF2α的分泌，添加10-7mol/L的E2单独或联合p38 MAPK通路抑制剂SB203580和PI3K通路抑制剂LY294002处理奶牛子宫内膜上皮细胞24 h，检测COX-2基因和蛋白的表达及PGF2α分泌水平的变化。

1.5 总RNA提取及qRT-PCR

将收集的细胞按照TriQuick Resgent总RNA提取试剂(北京索莱宝科技有限公司)说明书提取RNA，保存于-80 ℃冰箱。按照Promega反转录试剂盒说明书进行反转录，将得到的cDNA保存于-20 ℃冰箱。

引物序列交由北京生物工程有限公司合成，具体信息见表1。按照SYBR®Premix Ex TaqTM(TaKaRa))试剂盒说明书进行操作，以GAPDH为参照基因，每个样品重复3次，具体反应条件：95 ℃ 10 min；95 ℃ 10 s，60 ℃30 s，40个循环。采用2-ΔΔCt定量分析法分析基因的表达变化。

表1 实时荧光定量PCR引物Tab.1 Primers used in Real-time PCR

1.6 总蛋白提取及Western Blot

向收集到的细胞中加入150 μL添加了1% PMSF和蛋白酶抑制剂的 RIPA裂解液(北京索莱宝科技有限公司)，反复冻融3次裂解细胞，12 000 r/min离心5 min，用BCA试剂盒测定蛋白浓度；取总蛋白40 μg加入4×Loading Buffer(北京索莱宝科技有限公司)，98 ℃变性10 min后置于冰盒上。上样进行SDS-PAGE电泳，转膜，5%脱脂奶粉封闭2 h后，分别用Akt多克隆抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-6951R，1∶500)，p-Akt多克隆抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-0876R，1∶500)，p38 MAPK多克隆抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-0637R，1∶500)，p-p38 MAPK多克隆抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-2210R，1∶500)，COX-2多克隆抗体(Abcam，美国，ab169782，1∶500)和GAPDH多克隆抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-10900R，1∶3 000)4 ℃孵育过夜。二抗为HRP标记的羊抗兔IgG抗体(北京博奥森生物技术有限公司，bs-0295G-HRP，1∶3 000)37 ℃孵育1 h。ECL化学发光(南京诺唯赞生物科技有限公司)检测蛋白条带。

1.7 细胞上清液PGF2α检测

将收集的细胞培养基3 000 r/min离心20 min，按照Bovine PGF2αELISA试剂盒(上海江莱生物科技有限公司)进行操作，测定不同浓度E2处理细胞24 h和E2联合ICI182780处理24 h后的细胞培养基中PGF2α的浓度，每个样品3个重复。

1.8 数据分析

所有定量数据均以均数±标准误(s)表示。通过使用SPSS 19.0(IBM Corporation，NY，USA)进行单因素方差分析来评估统计学差异。P<0.05表示差异显著，P>0.05表示无差异。

2 结果与分析

2.1 上皮细胞鉴定

通过体外培养妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞，研究E2对妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞COX-2表达的调节作用，结果如图1所示：纯化后的奶牛子宫内膜上皮细胞之间紧密衔接，连接成片，呈蜂窝状贴壁生长；通过细胞免疫荧光染色鉴定奶牛子宫内膜上皮细胞中角蛋白-18含量，结果显示，超过95%的细胞及细胞质呈阳性表达，表明获得的细胞可用于后续试验。

2.2 不同浓度E2对奶牛子宫内膜上皮细胞COX-2及PGF2α的影响

由图2可知，不同浓度E2处理子宫内膜上皮细胞24 h后，10-8，10-7mol/L的E2显著促进奶牛子宫内膜上皮细胞中PGF2α的分泌 (P<0.05)；COX-2mRNA的表达呈浓度依赖性升高(P<0.05)，COX-2蛋白表达趋势与基因水平变化一致，均随着E2水平上升而蛋白表达水平上调(P<0.05)。

2.3 不同浓度E2对Akt和p38 MAPK磷酸化的影响

结果如图3所示，不同浓度E2处理1 h后，10-8，10-7mol/L浓度的E2显著促进了子宫内膜上皮细胞中Akt蛋白的磷酸化水平(P<0.05)，而10-9mol/L 的E2则对子宫内膜上皮细胞中Akt磷酸化水平无显著影响(P>0.05)。p38 MAPK蛋白的磷酸化与Akt相似，10-9mol/L的E2处理1 h后，p38 MAPK蛋白的磷酸化水平并无显著变化，而10-8,10-7mol/L E2显著提高了子宫内膜上皮细胞中p38 MAPK蛋白的磷酸化水平(P<0.05)。

2.4 E2和LY294002对奶牛子宫内膜上皮细胞COX-2表达和PGF2α分泌的影响

由图4可知，E2对奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2 mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌有显著促进作用(P<0.05)，虽然单独使用PI3K通路抑制剂LY294002对COX-2 mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌没有显著影响(P>0.05)，但LY294002与10-7mol/L的E2共同处理时，COX-2 mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌水平则显著低于10-7mol/L的E2处理组(P<0.05)。

2.5 E2和SB203580对奶牛子宫内膜上皮细胞COX-2表达和PGF2α分泌的影响

由图5可知，E2对奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌有显著促进作用(P<0.05)，虽然单独使用p38 MAPK通路抑制剂SB203580对COX-2mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌没有显著影响(P>0.05)，但SB203580与10-7mol/L的E2共同处理时，COX-2mRNA和蛋白的表达以及PGF2α的分泌水平则显著低于10-7mol/L的E2处理组(P<0.05)。

3 讨论与结论

E2是一种重要的生殖激素，主要由卵巢中的颗粒细胞合成，胎盘亦可合成E2。哺乳动物的各个器官和组织中都分布着雌激素，子宫和卵巢是雌激素的重要靶器官，雌激素广泛的参与了调节子宫的生殖和生理功能。PGF2α来源于子宫内膜，由COX-2催化不饱和脂肪酸形成，具有调节胚胎植入、子宫肌收缩和溶解黄体等功能[11]。先前的研究表明，类固醇激素具有调节各类细胞中COX-2的表达及PGF2α分泌的功能。在本试验中，发现10-8，10-7mol/L的E2能促进妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2mRNA和蛋白的表达，这与Membrive等[12]研究一致，然而Sobrino等[13]表明10-11～10-7mol/L的E2对HUVEC细胞中的COX-2mRNA表达无显著影响。此外，Xiao等[14]研究发现在牛发情晚期子宫内膜细胞中，E2则抑制了COX-2的表达及PGF2α的分泌。这提示E2对不同时期的奶牛子宫中COX-2的表达可能存在差异。

p38 MAPK信号通路是丝裂原活化蛋白激酶(Mitogen-activated proteinkinases，MAPKs)家族的重要成员。E2可通过激活细胞中的p38 MAPK信号通路，参与细胞增殖、分化和迁移的调节[15]。Akt称为蛋白激酶B，最初发现为小鼠自发性胸腺的转化逆转录病毒中v-akt致癌基因的同源物，该酶是PI3K的直接下游效应因子，Akt还能调节细胞增殖、凋亡、影响葡萄糖的使用和血管生成[16]。郭瑞霞等[17]研究发现E2能激活PI3K/Akt信号通路来促进人子宫内膜癌细胞的生长。E2可激活PI3K/Akt或p38 MAPK信号通路已在多种细胞中得到证实。本试验发现E2处理后激活了奶牛子宫内膜上皮细胞中PI3K/Akt及p38 MAPK信号通路，与在其他细胞上的发现一致。

研究显示，p38 MAPK参与介导人气道肌细胞中COX-2的表达[18]；同时，p38 MAPK还参与介导皮质酮对大鼠心肌细胞中COX-2mRNA的调控作用。Patterson等[19]研究发现，E2通过GPER非基因组效应反式激活EGFR，促进下游的PI3K/Akt磷酸化，进而调控大鼠输卵管上皮中COX-2的表达及PGF2α的分泌。PI3K/Akt[20]和p38 MAPK[21]信号通路是包括COX-2在内的多种炎性细胞因子的信号转导靶标。在本研究中，用E2与LY294002、SB203580单独或联合处理奶牛子宫内膜上皮细胞后发现，E2对COX-2的表达及PGF2α分泌的促进作用被抑制，PI3K/Akt及p38 MAPK信号通路可通过多种途径调控炎症或癌症的发生。而生理浓度的E2对调控发情周期、配子植入、胚胎发育和分娩方面具有重要意义。

综上所述，通过体外培养妊娠早期奶牛子宫内膜上皮细胞，发现E2可通过激活p38 MAPK及PI3K/Akt信号通路，从而促进COX-2的表达及PGF2α的分泌。本试验深入研究E2调控奶牛子宫内膜上皮细胞中COX-2的表达及PGF2α分泌的作用机制，为探究子宫源性不孕、异位妊娠、早产和其他子宫内膜疾病的原因提供了新思路。