张永红,李凤娟,刘 昀,张德信,李 维,吴媛媛,柯 蕊,孙秀珍
(西安交通大学第二附属医院呼吸与危重症医学科,西安 710004;*通讯作者,E-mail:doc-ly@sohu.com)
急性肺损伤(acute lung injury,ALI)/急性呼吸窘迫综合征(acute respiratory distress syndrome,ARDS)是常见的临床综合征,是指心源性以外因素,主要由严重感染、淹溺、重大创伤、吸入有毒气体和化学物质等导致急性、进行性、缺氧性急性呼吸衰竭。长期以来,国内外研究人员针对ALI/ARDS的主要发病机制炎症损伤、氧化应激损伤、气血屏障障碍进行了大量的研究,但是仍未找到行之有效的治疗措施,治疗上仍主要以对症治疗为主,ALI/ARDS患者的病死率高达30%-40%[1,2]。近20年来,可引起ALI/ARDS的新型病毒不断被发现,这些病毒严重影响人们的生活,已引起我国和世界卫生组织的高度重视,因此进一步明确ALI/ARDS发病的分子机制,寻找针对其发病机制的干预药物,对救治ALI/ARDS具有极其重要的意义[3]。研究表明,过度激活的炎症反应是ALI/ARDS发病的重要机制,炎症反应贯穿ALI/ARDS发病的整个过程[4],炎症因子在ALI/ARDS的发生以及发展中起着重要的作用,其中TNF-α,IL-1β和IL-6被认为是ALI/ARDS的治疗靶标[5]。Tristetraprolin(TTP)蛋白为内源性炎症抑制因子,能够结合含有ARE元件的mRNA并且靶向介导其快速降解,促进各种炎症因子mRNA衰减[6,7]。体内研究表明,β2肾上腺素受体激动剂能够抑制LPS诱导的肺部炎症反应,对急性肺损伤具有保护作用[8]。本研究拟探讨β2AR激动剂沙丁氨醇是否可以上调TTP蛋白的水平,从而抑制TNF-α、IL-1β、IL-6的表达,减轻ALI/ARDS炎症反应,从而为临床ALI/ARDS的治疗寻找新的有效治疗靶点。
LPS购自美国Sigma公司,沙丁氨醇购自于上海禾丰制药有限公司,兔抗小鼠Tristetraprolin一抗购自于美国Sigma公司,兔抗大鼠GAPDH购自于美国Sigma公司,HRP标记羊抗兔二抗购自于美国Sigma公司,ELISA测定试剂盒购自于美国R&D system。
36只6-8周雄性BALB/c小鼠随机分3组:对照组(Con)12只,无菌PBS持续雾化30 min;LPS组(LPS组)12只,浓度为2.5 mg/ml的LPS雾化液体持续雾化30 min;沙丁氨醇处理组(LPS+SALB组)12只,一次性腹腔注射5 mg/kg的沙丁氨醇,间隔30 min,再给予浓度为2.5 mg/ml的LPS溶液持续雾化30 min。
雾化结束后第24小时,腹腔注射10%水合氯醛(0.8 ml/100 g)处死BALB/c小鼠,右侧支气管插管支气管肺泡灌洗,用4 ℃预冷的无菌PBS溶液0.7 ml灌洗支气管肺泡,重复灌洗3次,并收集支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)。灌洗液的回收率约为80%。回收的支气管肺泡灌洗液在4 ℃,1 500 r/min离心10 min沉淀细胞,将分离后的BALF上清在-80 ℃保存。
用1 ml PBS溶液重悬支气管肺泡灌洗液离心后沉淀细胞,用细胞计数板进行细胞计数,并将细胞沉淀涂片,用Wright-Giemsa染色进行中性粒细胞分类计数。
取左肺下叶肺组织用4%中性缓冲甲醛液固定,石蜡包埋,切片(5 μm),苏木精-伊红(HE)染色,观察肺组织病理学变化。
将左肺上叶提取的总蛋白用BCA蛋白定量试剂盒定量。取含有等量总蛋白的蛋白样品加入到上样孔内,电泳后将凝胶上的蛋白转移至硝酸纤维素膜,封闭后分别加TTP及GAPDH一抗溶液,4 ℃孵育过夜。PBST洗膜,滴加二抗溶液,室温孵育2 h,PBST洗膜后加入发光液,曝光,显影,定影,用Quantity One 4.6.2(美国Bio-Rad公司)凝胶成像分析仪采集底片图像并进行定量分析。
实验数据应用SPSS13.0软件统计分析,正态分布的计量资料以均数±标准差表示,非正态分布资料经正态转换后再进行统计学分析,多组间比较应用单因素方差分析Tukey post hoc检验,以P<0.05认为组间差异具有统计学意义。
本实验HE结果显示,对照组小鼠肺组织内肺泡结构完整,未见炎性细胞浸润;LPS模型组小鼠肺组织内皮细胞和上皮细胞被严重破坏,肺水肿、肺出血及以中性粒细胞为主的炎症细胞在肺组织内大量浸润,肺部正常的组织形态结构消失;而沙丁氨醇预处理组LPS诱导的肺部炎症损伤被显著抑制(见图1)。
图1 β2AR激动剂沙丁氨醇对LPS诱导的ALI/ARDS小鼠肺部炎症反应的影响 (HE,×100)Figure 1 Effect of β2AR agonist salbutamol on LPS-induced lung inflammation in ALI/ARDS mice (HE,×100)
对照组小鼠支气管肺泡灌洗液细胞总数为(3.02±0.29)×106/ml、中性粒细胞计数为(1.73±0.16)×106/ml,LPS组小鼠支气管肺泡灌洗液细胞总数上升为(12.23±2.46)×106/ml、中性粒细胞计数升高为(7.84±1.16)×106/ml,与对照组比较均明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05,见图2);而沙丁氨醇预处理后,LPS+SALB组小鼠支气管肺泡灌洗液细胞总数为(6.13±1.26)×106/ml、中性粒细胞计数为(4.12±0.79)×106/ml,与LPS组比较差异具有统计学意义(P<0.05,见图2),提示β2AR激动剂沙丁氨醇能够抑制LPS诱导的小鼠肺部炎性细胞浸润。
与对照组比较,*P<0.05;与LPS组比较,#P<0.05图2 β2AR激动剂沙丁氨醇对LPS诱导ALI/ARDS小鼠支气管肺泡灌洗液细胞的影响 (n=12)Figure 2 Effect of β2AR agonist salbutamol on bronchoalveolar lavage fluid cells in LPS-induced ALI/ARDS mice (n=12)
炎症因子是ALI/ARDS炎症反应强度的关键指标。LPS组小鼠气管肺泡灌洗液TNF-α浓度为(513.23±75.11)pg/ml,较对照组[(19.53±2.61)pg/ml]明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05,见图3);应用沙丁氨醇预处理后,LPS+SALB组小鼠支气管肺泡灌洗液TNF-α浓度下降为(291±52.31)pg/ml,较LPS组明显减低(P<0.05)。LPS组小鼠气管肺泡灌洗液的IL-1β为(212.63±37.65)pg/ml,较对照组[(22.54±3.41)pg/ml]明显升高(P<0.05),LPS+SALB组小鼠支气管肺泡灌洗液的IL-1β水平为(83.24±21.34)pg/ml,较LPS组明显减低(P<0.05,见图3)。LPS组小鼠气管肺泡灌洗液的IL-6为(1 127.15±97.65)pg/ml,较对照组[(21.13±3.11)pg/ml]明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05),LPS+SALB组小鼠支气管肺泡灌洗液的IL-6水平为(614±45.24)pg/ml,较LPS组明显减低(P<0.05,见图3)。提示β2AR激动剂沙丁氨醇预处理可以降低LPS诱导小鼠支气管肺泡灌洗液中TNF-α,IL-1β和IL-6的水平。
与对照组比较,*P<0.05;与LPS组比较,#P<0.05图3 β2AR激动剂沙丁氨醇对LPS诱导的ALI/ARDS小鼠支气管肺泡灌洗液中TNF-α,IL-1β和IL-6的影响 (n=12)Figure 3 Effect of β2AR agonist salbutamol on TNF-α,IL-1β and IL-6 in bronchoalveolar lavage fluid in LPS-induced ALI/ARDS mice (n=12)
Western blot结果显示,对照组小鼠肺组织内的TTP蛋白表达水平非常低,LPS组小鼠肺组织内TTP蛋白水平明显增加,是对照组的1.81倍,与对照组比较差异具有统计学意义(P<0.05);沙丁氨醇预处理后,LPS+SALB组小鼠肺组织内TTP蛋白水平进一步升高,是对照组的3.37倍,与LPS组比较差异具有统计学意义(P<0.05,见图4),提示沙丁氨醇预处理后,可以增加LPS组小鼠肺组织内TTP蛋白水平。
与对照组比较,*P<0.05;与LPS组比较,#P<0.05图4 沙丁氨醇对LPS诱导ALI/ARDS小鼠肺组织TTP蛋白表达的影响 (n=3)Figure 4 Effect of salbutamol on TTP protein levels in lung tissue of LPS-induced ALI/ARDS mice (n=3)
本研究探讨了β2AR激动剂沙丁氨醇在LPS诱导的ALI/ARDS中的作用及其可能的分子机制。在LPS诱导的ALI/ARDS模型中,小鼠的肺组织内皮细胞和上皮细胞被严重破坏,肺水肿、渗出,以中性粒细胞为主的炎症细胞在肺组织内大量浸润,肺部正常的组织形态结构消失;BALF中细胞总数,中性粒细胞分类计数及支气管肺泡灌洗液中TNF-α、IL-1β、IL-6水平均显著升高;提示过度激活的炎症反应是ALI/ARDS发病的重要机制[4]。而应用β2AR激动剂沙丁氨醇预处理后,LPS+SALB组小鼠肺组织中TTP蛋白水平显著升高,伴随肺部炎症反应减弱,提示β2AR激动剂沙丁氨醇能通过增强TTP蛋白的表达,抑制LPS诱导的ALI/ARDS模型小鼠肺部炎症细胞的浸润和炎症因子的合成,减轻肺部炎症损伤。
ALI/ARDS表现为肺部炎症呈级联放大并继发弥漫性肺损害,炎症细胞和炎症因子在ALI/ARDS的发生以及发展中起着重要的作用[9]。肺泡巨噬细胞、中性粒细胞、气道上皮细胞源性TNF-α、IL-1β、IL-6被认为是ALI/ARDS的治疗靶点,阻止上述因子的表达对ALI/ARDS具有显著保护作用。研究表明转录后调节是炎症因子重要的调节方式,炎症因子转录后调节主要依赖其mRNA 3′UTR区的ARE特殊元件介导其降解,其决定着mRNA半衰期,进而负性调节蛋白的表达[10]。TTP蛋白是一种ARE结合蛋白,调节富含ARE mRNA的不稳定性,其促进许多炎症因子和趋化因子(TNF-α、GM-CSF、IL-2、IL-3、IL-6、CCL2、CCL3和COX2)mRNA的降解,从而抑制其表达[11,12]。研究发现TTP蛋白参与调节单核巨噬细胞炎症因子的表达,以及炎症细胞的活化,在炎症性疾病如结肠炎[13]、系统性红斑狼疮[14]、类风湿性关节炎[15]、动脉粥样硬化[16]、内毒素血症[17]、急性肺损伤[18]等起着重要的作用。
在LPS诱导的ALI模型中,吸入低剂量一氧化碳,可以上调TTP蛋白的表达,抑制炎症因子TNF-α、IL-1β和IL-6的表达,对LPS诱导的ALI/ARDS起显著的保护作用[18],提示TTP蛋白参与ALI/ARDS发生发展,可能是ALI/ARDS的治疗靶点。人类TTP蛋白的编码基因ZFP36位于染色体19q13.1,由2个外显子和1个内含子组成。人类ZFP36启动子区域含有多个高度保守的调节元件,与转录因子EGR-1(early growth response-1),TPE1(TTP promoter element 1),AP-2(activator protein-2)和SP-1(specificity protein-1)结合调节TTP基因的转录和表达[11]。研究表明β2肾上腺素受体(β2 adrenergic receptor,β2AR)激动剂、cAMP类似物、内毒素、TGF-β、糖皮质激素、绿茶和肉桂均可以上调TTP mRNA的转录以及表达[19]。体内研究表明,β2AR激动剂能够抑制LPS诱导的ALI/ARDS肺部炎症反应,对急性肺损伤具有保护作用[20]。体外研究表明β2AR激动剂以及cAMP类似物可能通过上调AP-2转录因子增加单核巨噬细胞TTP mRNA和蛋白表达[21];β2AR激动剂亦可以上调TTP蛋白表达,抑制脂肪细胞IL-6的表达[22]。本研究结果提示,在LPS诱导的ALI/ARDS小鼠模型中,BALF中性粒细胞和炎性因子TNF-α、IL-1β、IL-6升高,肺组织组织结构破坏,肺组织TTP蛋白水平升高,LPS在激活炎症炎症反应的同时,亦激活TTP蛋白的表达,提示TTP是一个广泛参与炎症因子转录后负性控制的调节因子[6],上调内源性TTP活性抑制炎症因子表达,可能对ALI/ARDS发挥保护作用。沙丁氨醇处理组小鼠肺组织中的TTP蛋白进一步升高伴随肺部炎症细胞和炎症因子下降,提示沙丁氨醇可能通过提高内源性TTP蛋白水平抑制LPS诱导的ALI/ARDS肺部炎症反应,从而发挥保护作用,其机制可能为沙丁氨醇上调AP-2转录因子增加TTP mRNA转录和TTP蛋白表达[21]。