温州市农产品检验测试中心 浙江 温州 325014
民以食为天,食以安为先。蔬菜作为人们生活中的必需品,近年来所形成的农药残留问题逐步凸显[1],并因经常食用而对人的身体健康构成威胁。因此,对蔬菜中农药残留情况的检测和分析显得尤为重要[2],且对检测工作者的工作效率以及准确度都提出了新的要求[3]。但进行农药残留检测前必须通过前处理进行提取和纯化[1],目前,国内农药残留检测的提取方法主要有索氏提取法、震荡提取法、匀浆提取法、超声波提取法、固相萃取法、超临界液体萃取法等。本文通过对匀浆提取法和超声波提取法的对比,以探索更适合当前实验环境下的农药残留检测前处理方法,为同行提供参考。
1.1.1 仪器 在实验过程中所使用的主要仪器:气相色谱仪(Agilent7890B)、匀桨机、超声波清洗器、离心机、氮吹仪等。
1.1.2 试剂 在实验过程中所使用的主要试剂:乙腈(分析纯)、丙酮(分析纯)、正已烷(分析纯)、氯化钠(分析纯)等。
1.1.3 耗材 在实验过程中所使用的主要耗材:固相萃取柱,弗罗里矽柱(Florisil®),容积6m L,填充物1000mg。
1.2.1 提取
方法一(匀浆提取法):称取已经处理好的蔬菜样品25.0g置于250m L烧杯中,加入50.0m L乙腈,在匀桨机中高速匀桨2min,用滤纸过滤,滤液收集到装有5-7g氯化钠的100m L具塞量筒中,收集滤液40m L-50m L,盖上塞子,剧烈震荡1min,在室温下静置30min,使乙腈相和水相分层。
方法二(超声波提取法):称取已经处理好的蔬菜样品25.0g置于100m L离心管中,加入50.0m L乙腈,将离心管固定于固定架上,放入超声波清洗器中超声提取10min,取出后加入5-7g氯化钠;剧烈振荡1min,放入离心机4000r/min离心5min,使乙腈相和水相分层。
1.2.2 净化
有机磷类农药:取10.00m L乙腈相溶液,放入10m L刻度试管中,将刻度试管放在60℃水浴锅内加热,通入氮气,蒸发近干,用丙酮定容到5.0m L,混匀待测。
有机氯、除虫菊酯类农药:取10.00m L乙腈相溶液,放入10m L刻度试管中,将刻度试管放在60℃水浴锅内加热,通入氮气,蒸发至干,立刻加入2.0m L正已烷,盖上盖子,待净化。将弗罗里矽柱依次用5.0m L丙酮+正乙烷(10+90)、5.0m L正乙烷预淋洗,当溶剂液面到达柱吸附层表面时,立刻倒入上述待净化液,用15m L刻度试管接收洗脱液,用5.0m L丙酮+正乙烷(10+90)冲洗10m L刻度试管后淋洗弗罗里矽柱,并重复一次。将盛有淋洗液的15m L刻度试管置于氮吹仪上,40℃氮吹蒸发至5m L以下,用正乙烷定容至5.0m L,混匀待测。
1.3.1 有机磷农药 进样口温度:220℃;检测器:FPD,温度:250℃;色谱柱:DB-17(30m×0.53mm×1.00μm);载气:氮气,恒流模式,流速为10m L/min;不分流进样;柱温:
1.3.2 有机氯、除虫菊酯类农药 进样口温度:200℃;检测器:ECD,温度:320℃;色谱柱:DB-17(30m×0.25mm×0.25μm);载气:氮气,恒流模式,流速为1m L/min;辅助气:氮气,流速为60m L/min;不分流进样;柱温:。
2.1 提取条件的选择 农药残留检测的提取方法有很多种。本试验主要比较了在其它条件全部相同的情况下,分别采用匀浆提取法和超声波提取法处理样品时,对农药残留检测的过程以及检测结果造成的影响。
2.2 提取速度的表现 根据本单位的实验条件,以超声波提取法和匀浆提取法分别对处理10组、25组、50组蔬菜样品的速度进行记录(见表1)。结果发现,超声波提取法只需1名实验人员即可独立完成提取步骤,而匀浆提取法则需3个实验人员一起配合才能较好地完成。随着样品数量的增加,超声波提取法因可以对大量样品同时进行超声波提取作业,故所消耗时长的增长幅度较小;而匀浆提取法的提取作业受人力、仪器数量的限制,消耗时间出现大幅延长。由此,两种提取方法在处理不同数量样品时,以超声波提取法所消耗人力少、且用时短。
2.3 回收率的差异性 用超声波提取法和匀浆提取法分别处理40种农药的加标样品(蒲瓜),所获得的回收率及F检验与t检验表现值见表2。结果发现,40种农药回收率的F检验数值均在F检验临界值F0.025(9,9)=4.03和 F0.975(9,9)=0.25之间,表明该两种前处理方法的总体方差无显著差异(显著性水平0.05),且可用t检验来比较两种提取方法之间是否存在差异;又对40种农药回收率的t检验结果都大于t检验临界值t0.025(18)=2.101,表明在0.05的显著性水平下,该两种回收率之间存在差异,且以匀浆提取法回收率较优。
表1 超声波提取法和匀浆提取法在处理不同数量样品时的表现
表2 超声波提取法和匀浆提取法分别处理40种农药的回收率及检验结果
甲 基 异 柳 磷 0.10 10 90.16 1.20 10 99.65 1.37 0.77 16.53丙 溴 磷 0.10 10 95.40 1.87 10 100.08 1.91 0.96 5.55三 唑 磷 0.10 10 97.20 1.86 10 99.93 2.45 0.57 2.81氧 乐 果 0.10 10 72.75 2.62 10 82.62 1.89 1.93 9.66乐 果 0.10 10 84.76 2.13 10 93.23 1.98 1.16 9.21杀 螟 硫 磷 0.10 10 85.86 1.42 10 97.58 1.30 1.20 19.23倍 硫 磷 0.10 10 83.12 1.86 10 95.38 1.32 1.98 16.99水 胺 硫 磷 0.10 10 86.31 2.02 10 97.49 1.73 1.36 13.31杀 扑 磷 0.10 10 85.50 1.51 10 94.50 1.50 1.02 13.37亚 胺 硫 磷 0.10 10 85.81 1.27 10 94.90 1.44 0.78 14.93百 菌 清 0.050 10 84.70 2.38 10 94.68 1.77 1.80 10.66联 苯 菊 酯 0.050 10 99.12 2.06 10 101.58 2.22 0.87 2.57氯 氟 氰 菊 酯 0.050 10 98.12 1.52 10 109.44 2.55 0.36 12.08氯 氰 菊 酯 0.050 10 92.94 1.81 10 97.32 1.61 1.26 5.71氰 戊 菊 酯 0.050 10 97.22 1.56 10 100.80 1.83 0.72 4.71溴 氰 菊 酯 0.050 10 103.60 1.78 10 111.04 1.77 1.01 9.39五 氯 硝 基 苯 0.050 10 81.48 2.28 10 89.88 2.23 1.05 8.33三 唑 酮 0.050 10 97.10 1.61 10 104.28 2.42 0.44 7.80腐 霉 利 0.050 10 91.30 2.45 10 101.12 1.78 1.90 10.26氟 氯 氰 菊 酯 0.050 10 96.88 2.20 10 109.50 1.74 1.59 14.24氟 氰 戊 菊 酯 0.050 10 99.84 2.18 10 108.72 2.27 0.92 8.93氟 胺 氰 菊 酯 0.050 10 95.34 1.82 10 103.62 2.10 0.76 9.43三 氯 杀 螨 醇 0.050 10 81.74 3.39 10 88.52 2.83 1.43 4.85甲 氰 菊 酯 0.050 10 92.44 1.80 10 97.60 2.27 0.63 5.63乙 烯 菌 核 利 0.050 10 82.86 2.99 10 100.02 1.80 2.77 15.56异 菌 脲 0.050 10 83.34 2.20 10 101.76 1.51 2.12 21.86氯 菊 酯 0.050 10 84.36 1.99 10 95.62 2.09 0.91 12.35
蔬菜中农药残留问题越来越引发人们的高度关注,因而其检测技术也越来越受到重视[2]。为了更好地保障上市蔬菜安全,各地对农药残留检测的工作量也与日俱增;而样品的前处理是农药残留检测的重要环节,对检测结果的准确性和可靠性起着至关重要的作用[1]。由于蔬菜、水果等样品基质复杂[4],故在农药残留分析过程中对样品的提取步骤十分重要,并直接影响到最后的检测结果;样品前处理要求尽可能完全提取样品中的待测组分[5],而且处理速度、人员要求和回收率也是选择前处理方法的重要指标。采用超声波提取法和匀浆提取法,分别用蒲瓜进行40种农药的回收实验,回收率都在71.91%-111.04%之间,说明该两种方法对农药的提取都具有良好的效果;但该两种方法之间也存在一定的差异,且都各有优点和不足。超声波提取法需要的实验人员少,操作简单,耗时短,可以同时处理大量样品,迅速出具大批量样品的检测结果,但准确度稍低;而匀浆提取法提取完全,准确度更高,但需要更多的实验人员配合操作,以及需要更长的前处理过程,而且前处理效率受到实验硬件条件的制约非常明显。所以,在选择提取方法之前,需要在对检测任务的具体要求进行充分分析研究后,再选择相对比较适合的方法对样品进行提取。如检测任务要求短期内完成大量样品检测工作时,选择超声波提取法比较容易满足检测要求;而对准确度要求较高的检测任务,则采用匀浆提取法会更加合适。只有根据实际需求选择合适的提取方法,才能更好地完成相关检测任务。