谷氨酸棒杆菌基因编辑的研究进展

杨娟娟，马晓雨，王晓蕊，张朝晖，王珊，秦慧民，毛淑红，路福平

天津科技大学 生物工程学院，天津 300451

谷氨酸棒状杆菌Corynebacterium glutamicum是从土壤中分离到的一种非致病性的兼性厌氧菌，是革兰氏阳性菌[1]。自Kinoshita等[2]在20世纪50年代研究发现谷氨酸棒状杆菌可以高产谷氨酸之后，利用复杂繁琐的化学合成法合成谷氨酸的技术逐渐被淘汰，新的微生物发酵生产技术成为氨基酸生产的主要技术，由此开启了谷氨酸工业生产的新纪元。除谷氨酸外，谷氨酸棒状杆菌还被用于赖氨酸、异亮氨酸和维生素D等的生产[3-6]，在食品、医药、农业等领域得到了广泛应用。随着分子生物学技术的发展，谷氨酸棒状杆菌在基因工程改造方面的研究逐渐深入。Ozaki等于1984年首次从谷氨酸棒状杆菌中分离得到质粒DNA并进行基因操作[7]。基于这些质粒，研究人员构建了大肠杆菌-谷氨酸棒状杆菌穿梭载体，并建立了高效的DNA转化技术。从此，谷氨酸棒杆菌中的基因操作技术得以开发，并成功地用于基因功能的分析及生产菌株的构建[8]。目前，已经对53株谷氨酸棒状杆菌进行了基因组测序，如谷氨酸棒杆菌ATCC13032[9]、谷氨酸棒状杆菌S9114[10]、谷氨酸棒状杆菌ATCC14067[11]等，为深入了解谷氨酸棒状杆菌的代谢机制、发掘其更多生产功能提供了依据。

基因编辑技术是对生物体内源基因进行DNA的插入、删除、修改或替换[12]。传统的基因编辑技术主要是以同源重组为基础进行基因组的定向修饰，随着基因工程技术的不断发展，基于核酸酶的基因编辑技术得以开发利用，其原理是通过核酸酶特异性地识别并切割靶DNA双链，激发细胞内源性的修复机制，从而实现基因定向改造[13-14]。本文主要是对谷氨酸棒状杆菌现有报道的基因编辑技术进行汇总、比较，以期为谷氨酸棒状杆菌基因编辑的研究提供参考。

1 传统基因编辑技术

传统基因编辑技术主要依赖于同源重组，将含有目的基因同源序列的外源基因导入宿主菌，然后通过核酸链间等位替换的方式对目的基因进行突变、缺失或插入[15]，主要包括自杀质粒介导的同源重组、Cre/loxP介导的位点特异性重组、RecT介导的单链重组等多种方式，在谷氨酸棒状杆菌中均有报道。

1.1 自杀质粒介导的同源重组

自杀质粒，也称非复制型质粒，其携带的复制元件可以在大肠杆菌中正常作用，但在待改造菌株中无法正常发挥其功能[16]。自杀质粒介导的同源重组又分为一次交换重组和双交换重组两种方式。一次交换重组主要是通过引入抗性标记的方法使外源基因插入宿主菌的基因组中，从而使目的基因失活。但是，抗性基因的引入可能造成极性效应，影响菌体的生长或其他功能性基因的表达。为了克服这一缺陷，双交换重组得到了应用，即在一次交换重组的基础上再进行一次等位替换，丢掉基因编辑过程中不需要的外源部分 (图1[17])。在谷氨酸棒状杆菌中，依赖于双交换重组的基因敲除系统主要是通过含有反向筛选标记的自杀性质粒来实现的，其中最常用的反向筛选标记为蔗糖致死基因sacB基因。早在1994年，Schäfer等[18]便将源于大肠杆菌的pK系列质粒如pK18、pK19与RP4质粒的转移机制相结合，再将来源于枯草芽孢杆菌的sacB基因扩增到具有转移性质的pK系列质粒中，基于同源重组的原理对谷氨酸棒状杆菌的基因组进行改造，敲除了其基因组上的thrB基因。在此基础上，Tan等[17]对sacB基因的启动子进行了更换、筛选，其中包括启动子PsacB、Pneo、PlacM以及PF104，实验结果显示启动子PlacM在谷氨酸棒状杆菌中的使用效果最好。随着研究的深入，一些新的反向筛选标记也逐渐被开发利用。2011年，Kim等[19]将链霉素抗性基因rpsL作为谷氨酸棒杆菌基因编辑过程的反向筛选标记，提高了谷氨酸棒杆菌的编辑效率；2014年，Ma等[20]开发了upp基因作为反向筛选标记，并结合Ⅰ-SceⅠ介导的重组系统，实现了突变体的高效筛选。此外，与自杀质粒具有相同作用的条件复制型质粒也经常出现在谷氨酸棒杆菌的基因编辑过程中。目前在谷氨酸棒状杆菌中有报道的主要是温度敏感型质粒，其在不同温度条件下，质粒拷贝数不同[21]。在谷氨酸棒状杆菌的基因敲除过程中，经常使用含有温敏型复制子的质粒有pBS5T[22]和pSFKT2[23]。Chinen等[22]利用质粒pBS5T对谷氨酸棒状杆菌的pfk基因和aceE基因进行了敲除。随着基因工程的发展，已经有研究尝试含有将sacB负筛选标记的自杀质粒与温度敏感型复制子相结合，来提高谷氨酸棒状杆菌基因敲除过程的筛选效率[23]。

图1 由自杀质粒介导的基因敲除的双交换重组机制[17]Fig.1 Thedouble-exchangeintegration mechanism of gene knockout mediated by suicide plasmid[17].

1.2 Cre/loxP介导的位点特异性重组

随着基因编辑技术的发展，为了进一步提高基因编辑过程中的重组效率，研究者在同源序列的两端加入两个能被序列特异性重组酶识别的位点，使得重组酶能够识别这两个位点并进行重组。在谷氨酸棒状杆菌中，基于Cre/loxP特异位点重组技术的基因敲除体系已经得到发展[24-27]。Cre/loxP重组系统是由Cre重组酶和其所识别的两个loxP位点共同组成，当两个loxP位点方向相同且位于同一条DNA链上，Cre酶介导两个loxP位点完成分子内重组，使loxP位点间的序列被剪切，并留下1个loxP位点。根据两个loxP位点之间序列及位置的不同，Cre酶能够实现两个loxP位点间的序列倒位或者丢失。通过自杀质粒在基因组中导入loxP位点，再利用Cre切除loxP位点中序列的方式实现目的基因的敲除[25,28-30]。2005年，Nobuakis等[25]便采用Cre/loxP将谷氨酸棒状杆菌中250 bp的片段成功敲除。随着谷氨酸棒状杆菌基因敲除技术研究的深入，Hu等[31]还将自杀性质粒介导的同源重组与Cre/loxP技术结合，开发了pDTW109基因敲除系统。其在pDTW-201和pDTW-202质粒中都存在连接有loxp、loxpLE和loxpRE重组位点的kan盒；pDTW109包含有重组酶Cre，通过连接目的基因上下游同源臂和带有loxP位点的kan盒实现目的基因的敲除，最终在Cre作用下通过基因重组去除loxP位点中的kan盒，提高了谷氨酸棒状杆菌基因敲除的筛选效率。

1.3 RecT介导的单链重组

RecT单链重组不依赖于菌体本身的RecA重组系统，而是依赖于来自原噬菌体Rac中的recT基因编码的RecT重组系统。相较于菌株本身的重组系统，该系统操作更为简单，且不受DNA序列及长度的影响。

1998年A.Francis Stewart课题组[32]通过突变大肠杆菌recBCsbcA菌株中的sbcA基因，激活了已经整合在基因组上的来源于原噬菌体Rac的RecT重组系统，并成功实现了目的基因的编辑，从此RecT介导的基因编辑系统得以建立。此后，RecT介导的基因编辑系统在沙门氏菌[33]、分枝杆菌[34]、枯草芽孢杆菌[35]等多种微生物中都得到应用。谷氨酸棒杆菌作为一种重要的工业生产菌株，RecT介导的单链重组系统由于其操作简单、筛选效率高的优势也逐渐得到应用，并不断优化。2013年，Binder等[36]受其他微生物研究过程中重组系统的启发，首次构建了谷氨酸棒杆菌的RecT重组体系，并将其与纳米传感器技术相结合，实现了基于荧光激发的单细胞水平检测，提高了突变体的分离效率。

2 CRISPR技术

CRISPR (Clustered regulatory interspaced short palindromic repeats)，即成簇的、有规律的、间隔短回文重复序列，是广泛存在于细菌和古菌中的特异性保护机制，用来抵御病毒、外源DNA等的入侵[37-40]。现阶段基于CRISPR的基因工程改造技术主要分为CRISPR干扰 (CRISPR interference,CRISPRi)调控目的基因表达[41]和CRISPR/Cas9蛋白[42]介导的基因敲除、插入，以及CRISPR介导的碱基编辑3个方面。其中，CRISPRi[43]调控系统是将CRISPR基因编辑体系中具有核酸内切酶活性的Cas9蛋白替换为失去核酸内切酶活性的dCas9蛋白，然后在导向RNA (Guide RNA，gRNA)的引导下与目的基因序列结合，产生空间位阻效应，从而干扰靶基因的转录。Cleto等[44]首次将CRISPRi应用于谷氨酸棒杆菌中，有效干扰了pgi、pck和pyk的转录。此后CRISPR/Cas9蛋白介导的基因敲除、插入，以及CRISPR介导的碱基编辑在谷氨酸棒杆菌中的研究不断深入。

2.1 基于双链断裂的CRISPR技术

CRISPR/Cas介导的基因编辑系统中研究最为成熟的是CRISPR/Cas9系统[45]，其最早被发现于酿脓链球菌，该系统结构简单，作用快速，被广泛用于动、植物以及微生物的基因功能研究[46-47]。Martin等于2012年报道了CRISPR/Cas9系统的结构，其仅包括一个Cas9蛋白以及crRNA和tracrRNA两个非编码的RNA，当有外源DNA进入细胞后，菌体自身的RNase Ⅲ催化crRNA成熟，然后与tracrRNA结合形成双链，从而引导Cas9蛋白与靶序列结合，并对双链DNA进行剪切，形成双链断裂 (Double strand breaks，DSB)，再通过非同源修复与同源修复两种机制来实现基因编辑，且成功实现了体外20 bp重复间隔序列区域双链的靶位点特异性切割[48](图2[49])。此外，为了简化操作流程，研究者还将crRNA (CRISPR RNA) 和tracrRNA (trans-acting CRISPR RNA) 两个非编码的RNA合二为一，除去中间不必要的区域，最终得到一段长为102 nt的RNA序列，称其为导向RNA，实验证明仅含有Cas9和gRNA的组合就可以实现对DNA的靶向切割[48]。该系统因其作用周期短、筛选容易等[50]优点已经被应用于谷氨酸棒状杆菌。Liu等[51]成功构建了CRISPR/Cas9盒，通过Cas9和gRNA表达质粒的共转化实现了谷氨酸棒杆菌ATCC 13032和ATCC 13869基因的敲除、插入 (编辑效率分别为60%和62.5%)。此外，研究者还将ssDNA重组技术与构建完成的CRISPR/Cas盒结合，将对谷氨酸基因组小片段的修饰和单碱基突变效率提高到80%，并且在谷氨酸棒杆菌中实现了双位点编辑。Peng等[52]构建了CRISPR/Cas9的双质粒系统，提供同源修复模板后，对C.glutamicumATCC 13032和C.glutamicumCGMCC1.15647中porb基因的敲除效率接近100%。Cho等[53]选择含有温敏型复制子pBL1的质粒pEKEx1作为携带Cas9基因的载体，在Cas9基因发挥其切割作用之后通过调节培养温度，使载体从菌株中丢失，以防其对菌体的生长产生影响；此外，由于谷氨酸棒状杆菌中缺乏非同源末端修复机制，产生的DSB只能通过同源修复机制进行修复，为了提高其同源修复效率，研究者将含有表达重组酶的recT基因的质粒同时转入谷氨酸棒状杆菌中，大大提高了谷氨酸棒状杆菌的单链重组效率[53-54]。而且，有研究者认为cas9基因在质粒上的表达具有不稳定性，且对谷氨酸棒杆菌进行双质粒的共转化时需要较高的转化效率，所以将cas9基因整合到基因组DNA上，构建了含有gRNA和同源修复模板的单质粒体系[54]。随着研究的进一步深入，关于CRISPR/Cas9系统在谷氨酸棒状杆菌的应用体系不断在更新、优化，Coates等[55]研究表明，并不是所有类型的复制子都能将CRISPR/Cas体系成功引入谷氨酸棒状杆菌，例如含有BL1、NG2或CC1复制源的质粒并不能在谷氨酸棒状杆菌NRRL-B11474中进行有效转化，且与含有CG1复制源的质粒相比，携带有CASE1复制子类型的质粒在将gRNA以及Cas9蛋白基因转入谷氨酸棒状杆菌NRRL-B11474时具有更高的转化效率，从而获得更高的基因编辑效率。但是也有很大一部分研究者认为来自于酿脓链球菌Streptococcuspyogenes的CRISPR/Cas蛋白在谷氨酸棒状杆菌中的使用效果并不理想[56]，Jiang等[57]开发了一种基于新弗朗西斯菌FrancisellanovicidaCRISPR-Cpf1的基因编辑系统，该系统通过RecT单链重组机制将谷氨酸棒状杆菌引入小片段的突变效率提高到100%，但敲除效率还有待提高。

图2 CRISPR/Cas9介导的基因编辑[49]Fig.2 Gene editing mediated by CRISPR/Cas9[49].

2.2 CRISPR碱基编辑

对于缺乏非同源末端修复 (Non-homologous end joining，NHEJ) 的菌株，为了克服基因编辑过程中双链断裂产生致死效应[58]，研究者对CRISPR编辑系统不断进行优化，除了在构建敲除体系时加入同源臂以外，一种更为简单的编辑工具——CRISPR碱基编辑系统得到了开发利用。CRISPR碱基编辑，顾名思义就是通过对碱基进行修饰实现基因的突变、失活等。David R.Liu课题组[59]将大鼠的胞嘧啶脱氨酶rAPOBEC1通过linker序列XTEN与失活CRISPR/Cas9与进行融合，由gRNA引导，在不引起DNA双链断裂情况下，直接实现胞嘧啶 (C) 到尿嘧啶 (U) 的转变。通过DNA复制，进一步使得U被T代替，从而实现C→T (或G→A) 的转换，实现了第一代碱基编辑。Nishida等[60]将来自海鳗的胞嘧啶脱氨酶AID(Activation-inducedcytidinedeaminase) 与Cas9结合构建了Cas9n-AID碱基编辑器，进一步提高了碱基编辑效率。而且，该技术在谷氨酸棒杆菌中成功应用，实现了谷氨酸棒杆菌的单位点、双位点以及三位点的碱基编辑，其效率分别达到100%、87.2%和23.3%，并通过碱基突变建立了谷氨酸生产过程中相关基因的失活库，发现谷氨酸棒杆菌pyk和ldhA基因双失活菌株可以很大程度上提高谷氨酸的产量[61]。但是该碱基编辑系统还存在很大的优化空间，Wang等[62]通过突变Cas9蛋白，将Cas9突变体用于基因编辑，降低了前间区序列邻近基序(Protospacer adjacent motif，PAM) 序列的限制性，扩大了碱基编辑技术的靶向范围，而且将编辑窗口由原来的5 bp增加到了7 bp，并开发了用于设计碱基编辑介导基因失活 (gBIG) 的gRNAs的在线工具；此外，还成功应用Cas9与腺苷脱氨酶融合蛋白实现了对腺嘌呤碱基的编辑，提高了碱基编辑的范围。为了实现编辑系统的更大价值，研究者在此基础上不断对现有碱基系统进行优化[63]，真正进入基因编辑时代指日可待。

3 谷氨酸棒杆菌基因编辑的发展趋势

在谷氨酸棒状杆菌基因工程技术发展过程中，由传统的基因编辑技术到以人工核酸酶介导的基因编辑技术，不断有旧的、有缺陷的编辑方法被淘汰，新的、简单的方法得到开发应用。

同源重组介导的基因编辑体系作为最早的基因工程改造系统，其使用范围非常广泛，且操作简单，对于新物种的基因功能研究仍然具有重要意义。开发新的反向筛选标记以提高同源重组介导的基因编辑效率是非常必要的。

CRISPR系统相较于其他编辑系统来说具有操作简单、易筛选等多个优点，被广泛应用于各种动植物、微生物等的基因编辑，为基因功能的研究作出了巨大贡献[63-65]。但在使用过程中发现，该技术仍存在一些需要改进的不足之处。首先，CRISPR碱基编辑技术的开发一定程度上提高了基因编辑的精确性，但是，该技术在使用过程中仍会存在一定的脱靶效应，已经不断有研究者对这个问题进行改进；其次，CRISPR系统在使用过程中存在物种特异性，所以需要通过寻找不同来源的Cas蛋白来扩大其适用范围。

4 结语

谷氨酸棒状杆菌的基因编辑手段在不断地更新和完善。但是，作为一种重要的工业生产菌株，谷氨酸棒状杆菌的遗传体系及其代谢规律的研究并不是很深入。为了得到更多新型高效的生产菌株，我们仍需要对基因编辑手段进行不断的改进和探索，使所获得的优良菌株更好地应用于工业化生产。