乌仁图雅,邓宇,荣迪,王岩,娜日娜,陈琪,赵剑平,正月
(内蒙古赤峰市农牧科学研究院,内蒙古赤峰 024031)
硝基呋喃类抗生素是用于治疗畜禽胃肠道疾病的药物或饲料添加剂。硝基呋喃类药物及其代谢产物具有一定毒性,可致癌、致突变的作用[1–3]。因此美国于1993 年禁止将呋喃唑酮用作兽药用于食品动物,欧盟也于1995 年全面禁止使用呋喃唑酮类抗菌药[4],而我国农业部193 号公告已明令禁止对食用动物使用呋喃唑酮等硝基呋喃类药物[5]。尽管如此,由于此类药物高效廉价,有些不法商贩仍在继续使用。
我国是畜牧业生产大国,畜牧业综合生产能力位居世界前列。据统计每年我国畜牧养殖业抗生素使用量约为9.7 万吨[6]。许多用于畜禽生产的抗生素很难被动物肠胃完全吸收,约30%~90%随着粪便和尿液排出动物体外[7]。因含有大量的有机质、氮、磷等营养元素,畜禽粪便常被作为有机肥用于生产粮食和蔬菜的农田,从而使抗生素在农田土壤、地表和地下水中不断富集[8–9],影响土壤中微生物种群、群落结构、耐药性等[10]。土壤中的抗生素通过根部进入植物体内,影响植物的根系发育、地上部分的生长及抑制叶绿体合成酶的活性[11]。还会造成抗生素在植物体内大量积累,通过食物链对动物和人体产生毒害风险,并对生态环境造成严重的 污染[7,12–13]。
目前,硝基呋喃类的检测对象主要针对饲料、水体、动物源性食品和蜂胶等,主要检测方法有微生物法、免疫分析法、薄层分析法、高效液相色谱法、高效液相色谱–串联质谱法等[14–20]。其中,高效液相色谱法具有效率高、快速、灵敏度高等优点,是目前采用最多的方法之一。笔者采用超高效液相色谱法建立了高效、快捷、准确、灵敏的土壤中硝基呋喃类的检测方法,并对样品前处理进行了优化。该方法能够完全实现土壤中硝基呋喃类药物残留量的检测,准确、可靠地测定土壤中硝基呋喃类药物残留。
超高效液相色谱仪:1290 型,配紫外检测器,美国安捷伦科技有限公司;
水浴恒温振荡器:SHY–A 型,金坛市成辉仪器厂;
数控超声波清洗器:KQ5200DE 型,昆山市超声仪器有限公司;
台式冷冻离心机:Multifuge X3R 型,赛默飞世尔科技(中国)有限公司;
甲醇、乙腈:色谱纯,美国Rimedco 化学公司;
乙酸铵:分析纯;
实验用水为超纯水;
呋喃西林(NFZ)、呋喃妥因(NFT)、呋喃唑酮(FZD)、呋喃它酮(FTD)标准品:纯度不小于99.9%,德国Dr.Ehrenstorfer 公司。
硝基呋喃类药物混合标准溶液:100 μg/mL,称取4种硝基呋喃类药物各10 mg(精确到0.000 1 g)于4 只100 mL 容量瓶中,用乙腈定容至标线,超声溶解,于4℃下可以保存6 个月。
硝基呋喃类药物混合标准贮备液:10 μg/mL, 精密量取100 μg/mL 的4 种硝基呋喃类药物标准贮备液各10 mL 于同一100 mL 容量瓶中,用乙腈定容至标线。4℃下可以保存6 个月。
硝基呋喃类药物混合标准工作液:分别移取适量10 μg/mL 混合标准贮备液于6 只10 mL 容量瓶中,用乙腈定容至标线,配制成硝基呋喃类药物含量均分别为0.1,0.2,0.5,1,2,4 μg/mL 的系列标准工作液。现用现配。
土壤样品于阴凉处风干后,四分法分取2 kg 样品,全部通过0.5 mm 样品筛,放入自封袋中避光保存,备用。
称取样品(2±0.02) g 于50 mL 离心管中,加入15 mL 乙腈–水(体积比为3∶2),振荡5 min,在35℃条件下超声提取15 min,离心10 min,重复提取3 次,上清液合并摇匀,置于50 mL 茄形瓶中,45℃旋转蒸发至近干,用含0.1%甲酸的乙腈–水充分溶解复溶至10 mL,作为样品溶液,待净化。
将HLB 柱安装与固相萃取装置上,依次用3 mL 甲醇、3 mL 水活化。将上述样品溶液通过固相萃取柱,用3 mL 水、3 mL 10%甲醇溶液淋洗、抽真空1 min,用甲醇洗脱,45℃旋转蒸发至近干,加10%乙腈水2 mL 溶解残余物,过0.2 μm 滤膜,供超高效液相色谱仪测定。
色谱柱:ZORBAX Eclipse Plus C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,4.6 μm,美国安捷伦科技有限公司);柱温:40℃;进样体积:20 μL;检测波长:365 nm;流量:1.0 mL/min;流动相:A 为0.05% 乙酸铵溶液(pH 值为4.8),B 为乙腈,A 与B 的体积比为80∶20,等度洗脱。
分别考察了磷酸、乙腈、水、甲醇、乙酸铵等单一或不同比例混合流动相体系下色谱分离效果。结果显示,流动相体系为0.05%乙酸铵水溶液–乙腈(体积比例80∶20),调节pH 值为4.8,等度洗脱条件下4 种化合物色谱峰的分离效果良好,峰形尖锐。色谱图如图1 所示。
图1 4 种硝基呋喃类药物的色谱图
据文献报道从基质中提取硝基呋喃类药物残留物通常使用乙酸乙酯[15–16]、乙腈[17–18]、甲醇和缓冲盐[19–20]等。乙腈相对于甲醇有较低的吸光度和较强的脱洗能力,并且在相同的流量下不会对色谱柱产生多余的压力。硝基呋喃类药物的性质各不相同,溶解性也各有差异。
试验考察了不同配比的乙腈水溶液对4 种硝基呋喃类药物的提取效果。试验表明,不同配比的乙腈水提取溶液回收率不同,结果见图2。
图2 不同比例乙腈水提取液对回收率的影响
由图2 分析得出,在乙腈–水的体积比为3∶2时,4 种硝基呋喃类药物的回收率均较高,因此选择乙腈–水的比例为3∶2。
2.3.1 超声时间对回收率的影响
当提取温度为45℃,提取次数为4 次时,设定超声时间分别为2,5,10,15,20 min 进行加标回收试验,结果见图3。
图3 超声时间对回收率的影响
由图3 分析得出,在超声时间为10 min 时,土壤中4 种硝基呋喃类药物的回收率均较高。
2.3.2 提取温度对回收率的影响
当超声时间10 min、提取次数4 次时,设定提取温度分别为25,35,45,55,65℃,进行加标回收试验,结果见图4。由图4 可知,在提取温度为45℃时,土壤中4 种硝基呋喃类药物的回收率均较高。
2.3.3 提取次数对回收率的影响
当超声时间10 min、提取温度为35℃时,设定提取次数分别为1,2,3,4,5 次,进行加标回收试验,结果见图5。
图4 提取温度对回收率的影响
图5 提取次数对回收率的影响
由图5 分析得出,在提取次数为4 次时,土壤中4 种硝基呋喃类药物的回收率均较高。
根据单因素试验结果,选取超声时间为5,10,15 min;提取温度25,35,45℃;提取次数2,3,4 次,进行正交试验,正交试验设计见表1。正交试验分析与结果见表2。
表1 正交设计表
表2 正交结果统计表
通过极差分析得出,对回收率的影响主次顺序为B >A >C,最优组合为A3B2C3,即超声时间为15 min,提取温度为35℃,提取次数为4 次。
按1.4 色谱条件测定1.2 配制的系列混合标准工作溶液,以色谱峰面积(Y)对浓度(X)绘制标准曲线,进行线性回归,线性方程、相关系数见表3。结果表明,硝基呋喃类药物的质量浓度在1~4 μg/mL 范围内线性良好,相关系数均大于0.999 9。以不含目标物的空白土壤样品为基准,添加硝基呋喃类药物混合标准溶液,按照1.4 方法处理,分别以3 倍和10 倍的信噪比计算出方法检出限和定量限。土壤样品中硝基呋喃类药物的检出限分别为NFZ 0.16 mg/kg,NFT 0.14 mg/kg,FZD 0.16 mg/kg,FTD 0.12 mg/kg;定量限分别为NFZ 0.34 mg/kg,NFT 0.30 mg/kg,FZD 0.34 mg/kg,FTD 0.27 mg/kg。
表3 线性方程、线性相关系数、检出限与定量限
以不含目标物的样品为空白样品,分别添加高、中、低3 个浓度的混合标准溶液,按1.4 进行处理,在1.5 色谱条件下测定,计算回收率及相对标准偏差,结果见表4。土壤空白样品和加标样品的色谱图见图6。由表4 可知,4 种硝基呋喃类药物的回收率为74.34%~102.52%,测定结果的相对标准偏差为0.91%~4.49%(n=6),说明该方法具有良好的精密度与准确度。
表4 方法的精密度和回收率(n=6)
图6 空白样品(A)和20.0 mg/kg 加标样品(B)的色谱图
对土壤样品中硝基呋喃类药物的提取方法进行了优化,采用超高效液相色谱法测定土壤中硝基呋喃类药物。该方法操作简单可靠、快速,可用于农产品产地环境健康风险评估,为进一步制定相关的标准提供参考。