1-甲基环丙烯处理对红富士苹果贮藏品质的影响

彭贞贞，叶旗慧，徐晓艳，傅达奇

（中国农业大学食品科学与营养工程学院，北京100083）

红富士苹果是我国主要的苹果栽培品种，其栽培面积和总产量均占世界的50%左右，2017年我国苹果产量达到历史最高，约4 140万t[1]；随着苹果鲜食消费量和加工消费量的逐年增长，我国苹果出口位居世界前列。目前，红富士苹果的保鲜方式主要是低温贮藏，而低温贮藏成本较高，且一旦苹果脱离低温进入市场，会迅速失去原有色泽，外观品质受到较大影响。随着人们生活水平的提高，鲜艳、个大、多汁、蜜脆可口的红富士苹果深受消费者喜爱[2]。但红富士苹果是典型的呼吸跃变型果实，在采后呼吸代谢旺盛，营养物质消耗快，如不及时采取有效措施，易造成采后损失，不利于经济发展和资源利用。

1-甲基环丙烯（1-methylcyclopropene,1-MCP）是一种结构简单、化学性质稳定的环状有机化合物[3]。它不可逆地与乙烯竞争乙烯受体上的金属铜离子，从而阻断乙烯信号传导，抑制与乙烯有关的一系列生理生化反应[4]。1-MCP与乙烯受体的亲和力高于乙烯，并且1-MCP 无色、无味、无毒副作用，使用时操作简单、廉价高效，是目前商业化生产中广泛运用的保鲜剂[5-6]。已有研究表明，1-MCP阻止了‘乔纳金’苹果贮藏后期黄酮类化合物的变化，且在早期和晚期均抑制了总酚含量的降低[7]。本研究以红富士苹果为研究对象，以1.0 μL/L 1-MCP为保鲜剂，探究红富士苹果在常温贮藏下硬度、花青素含量、总酚含量、类黄酮含量等主要品质的变化，旨在丰富果蔬采后贮藏保鲜理论，为1-MCP的合理化使用提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

材料：红富士苹果，于2018年11月3日购于山东省烟台市牟平区王格庄镇辉寨村，挑选无病虫害、无机械损伤、大小均匀、成熟度一致的果实，用网套套上后放入装有微孔袋的纸箱中，立即运回北京。

试剂：1-甲基环丙烯（1-MCP）、没食子酸和芦丁，购于上海源叶生物有限公司；福林酚，购于北京索莱宝科技有限公司；硝酸铝，购于上海Sigma-Aldrich公司；无水甲醇、氢氧化钠、酚酞、碳酸钠、盐酸、硝酸钠、乙酸钠、氯化钾、邻苯二甲酸氢钾（均为分析纯），购于国药集团化学试剂北京有限公司。

仪器：Multiskan FC 酶标分析仪[赛默飞世尔（上海）仪器有限公司]，5418R 高速台式冷冻离心机、5424 常温离心机（Eppendorf 公司，德国），A11 basic冷冻研磨机[艾卡（广州）仪器设备有限公司]，DT500E 电子天平（江苏省常熟市佳衡天平仪器有限公司），PAL-1 手持数显糖度计（日本ATAGO 公司），GY-1 果实硬度计（浙江省乐清市爱德堡仪器有限公司），PHS-3E pH计（上海仪电科学仪器股份有限公司），Bluepard 电热干燥箱（上海一恒仪器有限公司），－80 ℃超低温冰箱（合肥中科美菱低温科技股份有限公司），－20 ℃低温冰箱（山东省青岛海尔电冰箱有限公司），FM50 雪花制冰机（北京长流科学仪器公司），KQ-500DE 超声波发生器（江苏省昆山市超声仪器有限公司），GC-2014 气相色谱仪[岛津企业管理（中国）有限公司]，AG-1602 空气泵、HG-1803A高纯氢气发生器（北京科普生分析科技有限公司），700A高速多功能粉碎机（浙江省永康市速锋工贸有限公司）。

1.2 试验方法

1.2.1 1-MCP 保鲜剂的配制

在果实待处理时，称取3.5%的1-MCP粉末6.4 mg，置于玻璃培养皿中，加入5 mL蒸馏水以溶解1-MCP，并立即放入密闭容器中，即配制成终浓度为1.0 μL/L的1-MCP。

1.2.2 样品处理

将无病虫害、无机械损伤、大小均匀、成熟度一致的红富士苹果随机分为2 组，分别为处理组和对照组（CK），每组100个果实。试验在（20±5）℃条件下进行，将待处理的红富士苹果置于0.1 m3的容器中，并将1.2.1节中盛有终浓度为1.0 μL/L 1-MCP的培养皿放入容器内，迅速将容器密闭并熏蒸12 h；对照组直接密闭12 h。2 组果实的密闭容器一致，处理完毕通风0.5 h，并于室温条件下贮藏。分别以0、4、8、12、16、20、24 d的果实为样本，每次随机取9个果实，测定硬度后切成小块，用液氮速冻，并保存于－80 ℃超低温冰箱中，以备品质指标测定。对照组和处理组各随机选取6 个果实，定时测定其乙烯释放量和呼吸强度。

1.3 测定方法

1.3.1 硬度的测定

果实硬度采用GY-1型果实硬度计在果实赤道处测定。测定时削去果实果皮，手持硬度计垂直打入果肉，压到探头刻度线时停止压入，果实的硬度以kg/cm2[8]表示；每个样品重复测定3次。

1.3.2 可滴定酸含量的测定

混合均匀的果肉样品用研磨机磨碎后，准确称取10.0 g，于100 mL 容量瓶中定容，静置30 min 后于低温冷冻离心机上以7 500 r/min 离心15 min，取上清液，待测。测定时吸取20.0 mL 上清液于三角瓶内并加入2滴1%酚酞指示剂，用标定好的氢氧化钠溶液滴定，每个样品重复滴定3次；用蒸馏水代替上清液进行滴定，作为空白对照。果实可滴定酸含量以苹果酸计（折算系数为0.067 g/mmol）。根据氢氧化钠滴定液消耗量，计算果肉组织中可滴定酸含量，以质量分数表示[8]。计算公式如下：

式中：V 为样品提取液总体积，mL；c 为氢氧化钠滴定液浓度，mol/L；V1为滴定滤液消耗的氢氧化钠溶液体积，mL；V0为滴定蒸馏水消耗的氢氧化钠溶液体积，mL；f 为折算系数，0.067 g/mmol；Vs为滴定时所取滤液体积，mL；m为样品质量，g。

1.3.3 可溶性固形物含量的测定

采用PAL-1 手持数显糖度计测定可溶性固形物含量。先用蒸馏水调零，擦干水后，取一小块果肉，用双层纱布过滤出果汁并于糖度计上测定[8]；每个样品重复测定3次。

1.3.4 乙烯释放量和呼吸强度的测定

取2个准确称量的果实（3个生物学重复），置于经空气平衡的1.1 L顶部带有橡胶塞的密闭容器中，室温密闭2 h 后，用5 mL 一次性注射器先将密闭容器内的气体混匀，再用注射器吸取气体1 mL，于GC-2014 气相色谱仪上测定乙烯释放量和呼吸强度（3个生物学重复）。根据乙烯标准曲线和CO2标准曲线得出相应浓度，其中：乙烯释放量以每小时每千克果实释放的乙烯的体积表示，呼吸强度以每小时每千克果实在呼吸代谢过程中释放的CO2的质量表示[8]。计算公式如下：

式中：φ1为气相色谱测定的样品气体中乙烯的体积分数，μL/L；φ2为气相色谱测定的样品气体中CO2的体积分数，μL/L；V 为密闭容器空间体积，mL；m 为果实质量，kg；t为密闭时间，h。

1.3.5 总酚、类黄酮和花青素含量的测定

1.3.5.1 样品的提取

参考曹建康等[8]的提取方法，分别称取3.0 g 已粉碎的果肉和果皮组织于烧杯中，立即加入少许经预冷的1%盐酸-甲醇溶液，在冰浴条件下混匀。随后转入具塞刻度试管中，并用1%盐酸-甲醇溶液润洗烧杯，将润洗液一并转移至试管中，定容至15 mL，摇匀。冰浴超声15 min，于4 ℃冰箱中用锡箔纸覆盖试管，避光提取1 h，其间摇动数次。过滤，收集滤液待测。

1.3.5.2 总酚含量的测定

没食子酸标准曲线的制作：准确称取0.5 g没食子酸溶于蒸馏水中，定容至100 mL；取此原液2 mL稀释并定容至100 mL，即得质量浓度为100 μg/mL的没食子酸标准溶液；继续稀释得到质量浓度分别为10、8、6、4、2 μg/mL的没食子酸标准溶液；根据没食子酸的质量浓度与吸光度值绘制标准曲线，如图1所示。

图1 没食子酸的标准曲线Fig.1 Standard curve of gallic acid

参考HERNÁNDEZ-RUIZ 等[9]提出的福林酚比色法对总酚含量进行测定，略作修改：取提取液50 μL 于试管中，加入福林酚试剂200 μL，静置5 min后加入2 mL 6%的碳酸钠溶液，室温放置15 min；随后，以1%盐酸-甲醇溶液作空白参比，在Multiskan FC 酶标分析仪上725 nm 处测定吸光度值。总酚含量以没食子酸当量计，即总酚含量表示为每克样品鲜质量的没食子酸当量。计算公式如下：

式中：ms为从标准曲线上查得的没食子酸当量，μg；V1为样品提取液总体积，mL；V2为测定时所取样品提取液体积，mL；m为样品质量，g。

1.3.5.3 类黄酮含量的测定

芦丁标准曲线的制作：准确称取芦丁标准品0.02 g，用蒸馏水定容至100 mL；继续稀释得到质量浓度为150、100、50、20、10 μg/mL的芦丁标准溶液；根据芦丁的质量浓度与吸光度值绘制标准曲线，如图2所示。

图2 芦丁的标准曲线Fig.2 Standard curve of rutin

用硝酸铝比色法测定类黄酮含量[10]，略作修改：取1 mL提取液，加入0.3 mL 5%亚硝酸钠，摇匀，静置6 min；接着加入0.3 mL 10%硝酸铝，摇匀，静置6 min；再加入4 mL 1 mol/L 氢氧化钠，加水定容至10 mL，混匀，静置10 min；在510 nm处测定吸光度值。类黄酮含量按芦丁当量计，即类黄酮含量表示为每克样品鲜质量的芦丁当量。计算公式如下：

式中：m2为从标准曲线上查得的芦丁当量，μg；V3为样品提取液总体积，mL；V4为测定时所取样品提取液体积，mL；m1为样品质量，g。

1.3.5.4 花青素含量的测定

参考桑伟娜[11]的方法对花青素含量进行测定，略作修改：取1 mL提取液，分别用pH=1.0的氯化钾溶液和pH=4.5 的乙酸钠溶液稀释至4 mL，室温静置15 min；以1%盐酸-甲醇溶液作空白参比，在525和700 nm波长下，用Multiskan FC酶标分析仪测定吸光度值。按以下公式计算花青素含量：

式 中：D 为 吸 光 度 值，D=(D525nm－D700nm)pH=1.0－(D525nm－D700nm)pH=4.5；M为矢车菊素-3-葡萄糖苷的相对分子质量，449.2；FD为稀释因子；V 为最终体积，mL；m 为样品质量，g；ε 为矢车菊-3-葡萄糖苷的摩尔吸光系数，2.69×104L/(mol·cm)；L 为光径，1 cm（即比色皿厚度）。

1.4 数据分析

实验数据使用Excel 2010 进行处理，用SPSS 17.0 进行单因素方差分析（one-way analysis of variance,ANOVA）和邓肯多重比较。

2 结果与分析

2.1 1-MCP 对红富士苹果硬度的影响

从图3中可以看出，随着贮藏时间的延长，对照组和处理组苹果的硬度均呈先上升后下降的趋势，但在整个贮藏期间，经1-MCP处理的红富士苹果硬度大于未经1-MCP处理后的，果实硬度保持在较高水平。在贮藏20和24 d时，处理组红富士苹果的硬度与对照组相比分别升高9.23%和13.54%（P＜0.01）。说明1-MCP处理能有效延缓苹果硬度的降低，防止苹果后熟衰老导致的软化现象。这与WATKINS[12]的研究结果一致。

2.2 1-MCP 对红富士苹果可滴定酸含量的影响

可滴定酸含量与果实品种、成熟度、贮藏条件、处理条件等有关，张鹏等研究了1-MCP对不同成熟度红富士苹果品质的影响，发现经1-MCP处理后红富士苹果可滴定酸含量下降[13]。从图4中可以看出，经1-MCP处理后红富士苹果果肉的可滴定酸含量高于对照组，并且随着时间的延长可滴定酸含量呈下降趋势，贮藏8 d以后，对照组和处理组的可滴定酸含量差异明显（P＜0.05），贮藏结束时对照组和处理组可滴定酸含量分别为0.15%和0.20%，与贮藏0 d相比分别降低了39.76%和20.72%。表明1.0 μL/L 1-MCP处理可明显延缓可滴定酸含量的下降，使苹果后熟作用减慢。

图3 1-MCP处理对红富士苹果硬度的影响Fig.3 Effect of 1-MCP treatment on the firmness of red Fuji apple

图4 1-MCP处理对红富士苹果可滴定酸含量的影响Fig.4 Effect of 1-MCP treatment on the titratable acid content of red Fuji apple

2.3 1-MCP 对红富士苹果可溶性固形物含量的影响

可溶性固形物含量可直接反映果实的成熟度，从而确定果实采摘时间；另外，它也和苹果果实的品质状况有很大的关系[14]。一般果实中的可溶性固形物含量在采后成熟过程中呈上升的趋势，可为呼吸和物质代谢提供能量。从图5中可以看出，贮藏4 d后，对照组红富士苹果果肉可溶性固形物含量高于处理组，且随着时间的延长总体呈上升趋势，表明处理组的果实呼吸和物质代谢较对照组减弱，延缓了后熟衰老进程。对照组和处理组的可溶性固形物含量在贮藏24 d 后分别为15.37%和14.26%，比贮藏0 d 时分别升高17.95%和5.30%；在贮藏16、20 和24 d 时，对照组和处理组可溶性固形物含量之间差异显著。总之，经1.0 μL/L 1-MCP 处理后，果实的可溶性固形物形成在一定程度上受到了抑制。

图5 1-MCP处理对红富士苹果可溶性固形物含量的影响Fig.5 Effect of 1-MCP treatment on the content of soluble solids in red Fuji apple

2.4 1-MCP 对红富士苹果乙烯释放量的影响

乙烯在植物生命周期中起着重要的调节作用，其作用受到许多因素的影响，比如环丙烯类化合物1-MCP，其不可逆作用于乙烯受体，破坏乙烯信号转导，抑制乙烯生理效应[15]。从图6中可以看出，对照组的红富士苹果乙烯释放量呈上升趋势，而处理组则呈下降趋势。贮藏结束时，对照组比贮藏0 d时乙烯释放量升高了约97.08%，处理组则降低了26.99%。常温贮藏4 d后，对照组红富士苹果乙烯释放量与处理组间出现显著差异，且对照组乙烯释放量增长速度增大；在贮藏第20 天时，对照组红富士苹果乙烯释放量是0 d 的24 倍，而处理组的乙烯释放量和0 d 相比几乎没有差异。由此可知，1-MCP明显抑制了红富士苹果果实乙烯的产生。

2.5 1-MCP 对红富士苹果呼吸强度的影响

图6 1-MCP处理对红富士苹果乙烯释放量的影响Fig.6 Effect of 1-MCP treatment on the release amount of ethylene from red Fuji apple

如图7所示：在贮藏初期，0～4 d时对照组红富士苹果呼吸强度下降，之后上升到最大值后下降，再慢慢上升；而处理组整体上都呈现呼吸强度降低的趋势，并在第8 天时出现微弱的呼吸高峰。对照组红富士苹果呼吸强度从第4天开始到第8天时达到最大值，与图6 同时间段处理组红富士苹果乙烯释放量的突然增加有一定的关系，表明乙烯可增加呼吸强度，但随着时间的延长，呼吸强度降低。虽然在贮藏16 d后，对照组和处理组的呼吸强度由于采后呼吸作用加强而增加，但在贮藏24 d 后，对照组和处理组的呼吸强度相对贮藏0 d 时分别降低19.58%和51.39%，在处理组和对照组之间存在极显著差异（P＜0.001）。可见，经1-MCP处理后果实的呼吸强度受到抑制。

2.6 1-MCP 对红富士苹果总酚含量的影响

总酚是植物中主要的次生代谢物之一，它们的含量与果蔬的组织褐变、抗逆性和抗病性等联系紧密。如图8A 所示，经1-MCP 处理后的红富士苹果果皮中总酚含量高于对照组。而在整个贮藏期间，对照组和处理组果皮中总酚含量皆呈先上升后下降的趋势，对照组在第8 天时果皮中总酚含量达到最大值（2.36 mg/g），处理组在第12天时达到最大值（2.49 mg/g），说明对照组红富士苹果与处理组相比更早发挥清除自由基作用，而1-MCP处理可有效延缓红富士苹果果皮总酚含量降低。如图8B所示：处理组的红富士苹果果肉总酚含量呈现平稳上升的趋势，而对照组则呈先上升后下降的趋势，对照组苹果果肉总酚含量在第16 天时达到最大值（0.54 mg/g）；在贮藏结束时，对照组和处理组苹果果肉的总酚含量比贮藏0 d时分别高出0.028和0.090 mg/g；第4、8和24天时，对照组和处理组的果肉总酚含量存在显著差异。此外，果皮总酚含量随着时间的延长相较于贮藏起始时降低，而果肉总酚含量较起始时升高，可能是由于果皮是果肉与环境发生交换的屏障，容易受到外界的影响，激发果实的自我防卫作用，从而减少了果肉的总酚消耗。

图7 1-MCP处理对红富士苹果呼吸强度的影响Fig.7 Effect of 1-MCP treatment on the respiratory intensity of red Fuji apple

2.7 1-MCP 对红富士苹果类黄酮含量的影响

类黄酮也属于植物的次生代谢产物之一，它同时也具有抗氧化和清除自由基等功能。从图9A中可以看出，处理组红富士苹果果皮类黄酮含量从贮藏12 d后低于对照组，而对照组红富士苹果果皮类黄酮含量在第16 天时达到最大值（8.58 mg/g）后开始下降（在整个贮藏期间呈先上升后下降的趋势），这可能是因为在贮藏过程中，后熟衰老作用加剧，使果实产生应激反应，需要更多的类黄酮化合物清除自由基，发挥抗氧化作用。第24天时，经1-MCP处理的苹果果皮的类黄酮含量相较于贮藏起始时上升9.45%，而此时对照组的果皮类黄酮含量是处理组的4.26 倍。如图9B 所示，与果皮相比，红富士苹果果肉中的类黄酮含量约为果皮中的一半。在整个贮藏期，对照组红富士苹果果肉类黄酮含量整体呈先上升后下降的趋势，与果皮的类黄酮含量变化趋势基本一致；在第16天时达到最大值（2.24 mg/g）后迅速下降，表明在贮藏后期膜脂质过氧化严重，衰老加快。处理组的果肉类黄酮含量总体呈上升趋势，在贮藏后期比对照组类黄酮含量高，差异显著（P＜0.01）。

图8 1-MCP处理对红富士苹果果皮（A）和果肉（B）总酚含量的影响Fig.8 Effect of 1-MCP treatment on total phenolic contents in peel(A)and pulp(B)of red Fuji apple

2.8 1-MCP 对红富士苹果花青素含量的影响

果蔬中存在很多色素物质，比如花青素，它是植物中常见的次生代谢物之一。花青素在果实颜色形成上扮演重要的角色，对果实的外观品质具有重要的影响。花青素主要存在于果实的果皮中，果肉中含量较低。从图10可以看出，对照组和处理组红富士苹果果皮花青素含量皆呈短暂上升后下降的趋势，但对照组的下降速率快。在苹果后熟过程中，花青素含量先增加后下降，由于花青素存在于胞液中，是水溶性色素，并且在酸性条件下呈现出红色[16]，但伴随着水分的流失以及衰老时有机酸含量的减少，导致果实颜色暗沉。在贮藏结束时，对照组和处理组红富士苹果果皮花青素含量和贮藏0 d 相比分别降低了29.85%和20.06%，对照组降低幅度较大，各贮藏节点对照组和处理组红富士苹果果皮花青素含量差异非常显著（P＜0.01），第12 和24 天时对照组和处理组红富士苹果果皮花青素含量存在极显著差异（P＜0.001）。

图9 1-MCP处理对红富士苹果果皮（A）和果肉（B）类黄酮含量的影响Fig.9 Effect of 1-MCP treatment on flavonoid content in peel(A)and pulp(B)of red Fuji apple

3 讨论

苹果采后仍具有生命活动，其细胞进行呼吸代谢，消耗营养物质，果实后熟软化。近年来，1-MCP保鲜剂作为乙烯抑制剂而被广泛用于果蔬的保鲜，其具有操作简单、廉价高效等优点，是果蔬保鲜研究的热点。苹果1-MCP 保鲜剂广泛使用的浓度为1.0 μL/L，经该浓度处理后，可有效延缓苹果色泽变化。已有研究表明，1-MCP处理可显著保持红富士苹果的色泽[17]。

图10 1-MCP处理对红富士苹果花青素含量的影响Fig.10 Effect of 1-MCP treatment on anthocyanin content of red Fuji apple

果实硬度可反映其软化程度，随着贮藏时间的延长，果胶物质降解，造成细胞壁结构发生变化[18]。1-MCP 对果实硬度的保持是通过抑制细胞壁相关酶活性，从而抑制细胞壁成分纤维素、果胶等物质的分解来实现的。果实刚采摘时有机酸含量高，可溶性固形物含量较低，但当果实开始后熟时，呼吸作用加大，此时为了维持组织细胞生命活动的有序进行，果实中的有机酸通过柠檬酸回补反应和糖异生作用为细胞提供呼吸底物，有机酸含量降低，可溶性固形物含量升高。贮藏后，可溶性固形物含量增加还可能是由于淀粉转化为了可溶性固形物[19]。在本试验中，1-MCP处理可抑制可溶性固形物含量增加并延缓有机酸含量的降低，与颜廷才等[20]的研究结果相似。还有研究表明，1-MCP处理后的蜜脆苹果和富士苹果总体上酸味程度高，可较好地延迟果实的成熟[21-22]。KOLNIAK-OSTEK 等研究表明，经1-MCP处理的冠军苹果长期贮藏后，可溶性固形物含量高于未处理组，能很好地保持其含量[23]。

果实在后熟过程中产生乙烯，并在有氧代谢时产生CO2。1-MCP不仅起到了乙烯抑制剂的作用，也抑制了苹果果实的呼吸。王宝春等[24]的研究表明，1-MCP显著抑制贮藏期间花牛苹果乙烯释放速率和呼吸速率，推迟乙烯释放高峰和呼吸速率高峰的出现，且对贮藏期间花牛苹果香气生成有一定的抑制作用。这与本研究中经1-MCP处理后，苹果呼吸强度和乙烯释放量受到抑制的结果相似。据报道，1-MCP可通过降低乙烯释放速率并由此降低呼吸强度，从而延长贮藏期限并保持果实品质[25]。

另外，红富士苹果在采后成熟过程中产生许多次生代谢物，总酚和类黄酮均具有抗氧化能力，可清除细胞中的自由基。本研究表明，在贮藏过程中果皮总酚含量呈先上升后下降的趋势，后期果皮总酚含量下降主要是由于后熟过程伴随着自由基的清除。而在贮藏期间，前期伴随的总酚含量增加以及处理组类黄酮含量增加可能与乙烯有关。乙烯可刺激苯丙氨酸氨裂解酶的活化，而该酶是酚类化合物生物合成和酚类成分积累的关键酶[26]，已被证明可以提高苹果中黄酮类化合物的含量[27]。1-MCP可以减缓乙烯诱导的果实衰老，从而延缓衰老引起的酚类物质的降解[7]。本研究中果皮总酚和类黄酮含量高于果肉组织，与已有研究一致，即外果皮中的酚类化合物比苹果其他组织更丰富[28]，一些黄酮类化合物几乎全部存在于外果皮中[29]。

花青素作为红富士苹果中主要的色素物质，在采后阶段随着贮藏时间的增加而逐渐减少，而1-MCP 处理后可对贮藏前期花青素的积累起抑制作用并延缓其后期降低，这与李秀芳等[30]的研究结果一致；1-MCP还可使花青苷的合成相关酶活性降低。呼吸跃变型果实猕猴桃经1-MCP 处理后也能保持较高水平的花青素含量[31]。有研究表明，乙烯能促进某些果实着色和花青素的合成[32-33]，1-MCP作为乙烯抑制剂处理桑葚后，其花青素生物合成相关基因表达下调，从而抑制了花青素含量的积累[34]。1-MCP 处理还可抑制泰山早霞苹果果皮中花青苷合成结构基因的表达，使MdCHI、MdDFRl 和MdUFGT的表达量下降50%以上[35]。

总之，1-MCP 作为普遍运用的保鲜剂，其保鲜效果显著，在猕猴桃、梨、枣、香蕉、油桃、杏、杧果等果实中已有研究应用[36]。

4 结论

本研究主要探究了1-MCP 对红富士苹果品质的影响，结果发现：1-MCP处理对延缓果实软化、减缓可滴定酸含量下降、抑制可溶性固形物含量增加有重要作用，还可使苹果后熟作用减慢，降低乙烯释放量，从而抑制果实的呼吸作用；1-MCP 处理可以延缓红富士苹果果皮和果肉总酚含量下降，并延缓果皮花青素含量下降，与对照组红富士苹果果皮和果肉的类黄酮含量增加速度较快相比，1-MCP处理还可延缓果皮和果肉类黄酮含量增加。