叶惠荣, 吴丽华, 张玉娟, 高学忠, 王西跃, 曹茵
[关健词] 人乳腺癌MCF⁃7细胞;灵菌红素;细胞增殖;细胞凋亡
乳腺癌是女性常见恶性肿瘤,是女性第二大恶性肿瘤,发病年龄日趋年轻化,严重威胁女性身心健康[1]。约15%~20%的乳腺癌患者会发生骨、肺和脑转移,乳腺癌骨转移的5年生存率仅为20%[2]。研究与开创各类治疗乳腺癌的药物和方法具有十分重要的意义。
灵菌红素(prodigiosin,PG)是一类天然红色素家族的总称,由多种放线菌和细菌属产生的具有多种生物学活性的次级代谢产物,PG的生物学活性主要包括免疫抑制、抗肿瘤、抗细菌、抗真菌、抗疟疾等[3]。多项研究发现PG在治疗肿瘤方面具有重大潜力,美国癌症研究所Melvin等[4]研究发现PG浓度为2.1 μmol/L时对57中不同肿瘤细胞具有抗肿瘤活性、对正常细胞则无明显毒副作用,提示PG对肿瘤细胞作用具有靶向性。既往研究显示PG能够诱导肝癌细胞[5]、脑胶质母细胞瘤细胞[6]、口腔鳞癌细胞[7]、急性淋巴细胞白血病细胞[8]等。然而尚不清楚其对乳腺癌MCF⁃7细胞的凋亡调控作用和机制,因此本研究拟通过体外实验探讨PG调控人乳腺癌细胞增殖和凋亡中发挥的作用及分子机制。
人乳腺癌细胞系MCF⁃7购于中国科学院上海生命科学研究院生命化学与细胞生物学研究所。
灵菌红素Prodigiosin(CAS号 56144⁃17⁃3,Sig⁃ma公司),MEM培养基(Gibco公司),Bim抗体(#2933,CST公司),β⁃Tubulin Antibody抗体(#2146,CST公司),CCK8试剂盒(Catalog no.C0009,碧云天公司),TUNNEL试剂盒(Catalog no.12 156 792 910;Roche公司),慢病毒LV⁃sh Bim购自百恩维生物。
培养MCF⁃7细胞,使用不同浓度PG培养液处理(0、1、2、4、8、16 μg/mL),于24、48、及72小时收集细胞,MTT检测细胞增值率,流式细胞仪检测细胞周期和凋亡。RT⁃PCR及Western Blot检测Bim(Bcl⁃2⁃interacting mediator of cell death)表达情况。为了进一步明确灵菌红素通过Bim调控MCF⁃7细胞凋亡,构建Bim siRNA。采用实时荧光定量PCR方法检测MCF⁃7细胞中Bim表达情况以确保沉默效率;检测MCF⁃7细胞中Bim沉默后,PG对MCF⁃7细胞的凋亡诱导情况。
取对数生长期MCF⁃7细胞,重悬浮后调整细胞浓度为1×104个细胞/孔的密度铺于96孔板中。24小时后分别加入不同浓度的PG培养液处理(0、1、2、4、8、16 μg/mL),每个浓度组平行4孔。PG处理24、48、及72 h后每孔加入MTT 100 μL,置于培养箱中4 h。弃上清、加入DMSO 100 μL,避光震荡10 min后使用酶标仪在570 nm波长检测各孔吸光度值。细胞存活率=测试组OD平均值/对照组OD平均值×100%。
消化对数生长期细胞,依据说明书将MCF⁃7细胞1×105/mL加入96孔板,分别给予不同分组刺激后,移除上清液并无菌磷酸缓冲盐溶液(PBS)清洗,配置TUNEL孵育液并加入MCF⁃7细胞中孵育1 h,弃去TUNEL并PBS清洗一遍,加入DAPI(1 μg/mL)避光孵育15 min,加入抗荧光淬灭液,最后荧光显微镜下观察荧光并拍照。
依据说明书将MCF⁃7细胞以1×106/孔接种于6孔板,分别给予不同分组刺激后,移除上清液、PBS清洗、胰酶消化、血清终止,离心后重悬浮细胞,调整细胞密度为 5×105~1×106/mL。取100 μL细胞悬液至流式细胞管中,加入Annexin V⁃FITC 5 μL和10 mg/L碘化丙啶(PI)10 μL,混匀后室温避光孵育15 min,加入400 μL结合缓冲液,流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡率。增殖指数(PI)=(S+G2/M细胞数)/(G0/G1+S+G2/M细胞数)×100%;凋亡指数(AI)=凋亡细胞数/细胞总数。
收集处理好的各组细胞、PBS洗涤后提取RNA,使用逆转录试剂盒PrimeScriptTMRT reagent Kit将RNA逆转录为cDNA。罗氏Light⁃Cycler PCR仪进行扩增,程序为95℃预变性10 min,95℃变性 5 s,60℃退火34 s,40次循环后,95℃变性15 s,60℃退火1 min,95℃再变性 15 s,GAP⁃DH 作为内参。引物序列为:GAPDH⁃F:5′⁃CCA GAA CAT CAT CCC TGC CTC TAC T⁃3′,GAPDH⁃R:5′⁃GGT TTT TCT AGA CGG CAG GTC AGG T⁃3′;Bim⁃F:5′⁃CTG CAG ATA TGC GCC CAG AGA T⁃3′,Bim⁃R:5′⁃CACCAGGCGGACAATGTA ACG⁃3′。
采用SPSS 16.0软件进行统计学分析,数据以均数±标准差()表示;组间比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
MTT法检测PG处理后MCF⁃7细胞的生长情况,通过公式计算细胞存活率。实验结果显示PG对MCF⁃7细胞增殖具有显著抑制作用,抑制作用呈时间浓度依赖。PG对MCF⁃7细胞在不同时间点的半数抑制浓度(IC50)不尽相同,在24、48及 72 h的 IC50值分别为 11.8、6.2、3.9 μg/mL。见图1。
为了进一步检测PG对MCF⁃7细胞生长增殖的影响,我们采用流式细胞仪进行细胞周期分析。结果显示在PG处理下,处于S期的MCF⁃7细胞数目显著升高,作用效果呈浓度依赖性,结果提示PG能影响MCF⁃7细胞的增殖周期。PG处理后MCF⁃7细胞S期显著减少、增殖指数下降,G1期显著增加,提示PG通过抑制S期细胞DNA复制,从而抑制MCF⁃7细胞进一步分裂增殖。(图2)。
为检测PG对MCF⁃7细胞凋亡的影响,我们采用流式细胞仪检测。结果显示PG能促进MCF⁃7细胞凋亡,并呈剂量浓度依赖性。对照组MCF⁃7细胞凋亡率约 3.6%,1、2、4 μg/mL的 PG处理MCF⁃7细胞24小时后,其早期凋亡率呈浓度梯度上升趋势,此外PG促凋亡效果呈剂量依赖性(图 3)。
上面研究显示PG能够促进MCF⁃7细胞凋亡,然而其具体机制不清。Bim是重要的凋亡相关蛋白,因此我们检测PG是否通过Bim从而调控凋亡。RT⁃PCR及Western blot检测结果显示PG能够促进MCF⁃7细胞内Bim mRNA及蛋白的表达,并且呈浓度、时间依赖性(图4)。
鉴于PG能够上调MCF⁃7细胞中凋亡相关蛋白Bim的表达,我们推测PG可能通过促进Bim调控MCF⁃7细胞凋亡。为了验证这一假设,我们采用特异性Bim小干扰siRNA沉默MCF⁃7细胞内Bim表达,将Bim⁃siRNA及对照siRNA分别转染MCF⁃7细胞,24小时后加入PG处理。RT⁃PCR及Western Blot结果显示Bim⁃siRNA转染后,MCF⁃7细胞内Bim RNA和蛋白表达水平显著下降。流式细胞仪检测显示Bim⁃siRNA能抑制PG对MCF⁃7细胞凋亡促进作用,MCF⁃7细胞细胞早期凋亡率明显减少,提示PG通过促进Bim调控MCF⁃7细胞凋亡(图 5/6)。
乳腺癌是发生于乳腺上皮组织的恶性肿瘤,研究显示乳腺癌发病率已跃升至女性恶性肿瘤的第二位、并且具有年轻化趋势。乳腺癌的高发病率和高死亡率已经严重威胁着女性的身心健康,其预防和治疗已成为国际急需解决的难题。
PG一类由多种细菌、放线菌产生的具有多种生物活性的次级代谢产物,其分子结构特征是含有一个三吡咯环的大共轭体系骨架。PG具有抗肿瘤活性、免疫抑制活性和抗微生物活性,因而得到广泛的研究。1977年Fullan等[9]首次证实PG在体内具有抗肿瘤活性,进一步研究发现PG对多种肿瘤细胞均具有抗肿瘤活性。鉴于PG良好的抗肿瘤活性,药物学家已经合成了多种PG衍生物,如GX15⁃070具有更好的免疫抑制活性和更低的毒性,已经进入临床Ⅰ/Ⅱ试验[10]。既往研究显示PG能通过诱导凋亡发挥抗肿瘤活性,其能对包括结肠癌、胃癌、肝癌、淋巴细胞瘤等多种肿瘤细胞发挥促凋亡作用。Yenkejeh等[5]发现PG能抑制原发性肝癌细胞增殖、促进肝癌细胞凋亡、效果呈剂量依赖性,并且PG是通过抑制survivin蛋白从而发挥其促凋亡活性。Cheng等[6]发现胶质母细胞瘤细胞中PG通过激活JNK通路及抑制AKT/mTOR通路,从而促进自噬性细胞死亡。Campàs等[11]发现PG能诱导慢性B细胞淋巴瘤性白血病患者的B细胞凋亡,细胞半数抑制率IC50位116±25 nM。Cheng等[7]发现口腔鳞状上皮细胞癌细胞中PG通过P62/LC3⁃I/LC3⁃II通过促进细胞自噬性细胞死亡。此外PG还通过激活P38⁃MAPK磷酸化,从而诱导Jurkat细胞凋亡[12]。PG还具有拓扑异构酶的双重活性,能诱导单链和双链DNA裂解,从到引起细胞周期阻滞,此过程伴或不伴有细胞凋亡[13]。
本文研究了PG抗乳腺癌的药效作用,及其抗癌机制做了初步探讨。MTT结果显示PG能抑制肿瘤细胞增殖、且与药物浓度和作用时间呈正相关,作用24小时的IC50值为24 μg/mL。流式细胞仪检测发现PG能通过抑制S期MCF⁃7细胞DNA复制使其停滞与G2期,从而抑制其进一步分裂增殖。随后本研究采用流式细胞仪及TUNNEL实验检测PG调控MCF⁃7细胞凋亡的作用,流式检测发现低浓度的PG在短时间内诱导MCF⁃7细胞凋亡并不明显,但随着作用时间延长以及药物浓度升高,MCF⁃7细胞凋亡率呈上升趋势,提示PG诱导MCF⁃7细胞凋亡呈时间、药物浓度依赖性。
Bim的全称是Bcl2 interaction mediator of cell death,Bim接到凋亡刺激后就会与LC8一起从复合体上解离出来游离在胞浆中,并拮抗LC8和Bcl2的功能、从而诱导细胞凋亡[14]。既往研究显示Bim具有抗肿瘤活性,表达与多种恶性肿瘤,如乳腺癌、前列腺癌、胃癌及非小细胞肺癌等,Bim表达上调能引起肿瘤细胞凋亡[15]。为了研究Bim在PG诱导MCF⁃7细胞凋亡中的作用,本研究采用RT⁃PCR及Western Blot检测发现PG能诱导MCF⁃7细胞中Bim高表达,提示PG可能通过Bim发挥其促凋亡作用。进一步我们采用siRNA将MCF⁃7细胞中Bim沉默,流式细胞检测显示Bim沉默能抑制PG对MCF⁃7细胞的凋亡诱导作用。
综上所述,本研究通过干扰RNA等试验手段发现灵菌红素与MCF⁃7细胞增殖凋亡进程,并且灵菌红素能通过上调Bim,从而抑制人乳腺癌细胞增殖和促进其凋亡。研究提示灵菌红素作为新型抗肿瘤药物,具有一定的应用前景,其具体作用机制仍有待进一步研究。