刘雪红, 宋 平, 孙进健
(大连市兽药饲料监察所,辽宁大连 116037)
目前,饲料中喹乙醇与喹烯酮的检测方法主要有酶联免疫分析法(赵春保等,2008)、高效液相色谱法(刘发全等,2008)、高效液相色谱-串联质谱法 (2349号公告-6,2015;2086号公告-5,2014)。免疫分析法样品前处理简单、检测速度快,但容易产生假阳性或假阴性的结果;液相色谱法灵敏度较低,检出限较高;液相色谱—串联质谱法是应用较广泛的检测饲料中喹 啉类药物的方法。文献报道较多的是采用HLB固相萃取柱净化,样品前处理需配制多种试剂,操作步骤多,而且净化所用固相萃取柱使用前需活化,备用液过柱后,需淋洗。整个前处理过程较长,费时费力。本文采用PRiME HLB固相萃取柱净化,Atlantis T3色谱柱分离,仅需配制1种试剂,无需氮吹,且所用的固相萃取柱无需活化和淋洗,分析速度快、回收率高,能满足定性、定量的要求。
1.1 仪器与设备 电子天平RD-200,德国Sartorius公司;超声波清洗器 KQ-250B,昆山市超声仪器有限公司;立式低温高速离心机CF16RN,日立公司;数显强力涡旋混合器 MS3,德国 IKA公司;液相色谱质谱联用仪UPLC XEVO TQ-S,美国Waters公司;色谱柱 Atlantis T3(2.1 mm×150 mm 5μm),美国Waters公司;色谱柱 ACQUITY UPLC BEH C18 (2.1mm×50mm 1.7μm),美国Waters公司;固相萃取柱 Oasis PRiME(HLB 3 mL 60 mg)。
1.2 药品与试剂
1.2.1 标准品 喹乙醇批号H0061103,含量99.5%;喹烯酮 批号H0561305,含量99.6%,均来自中国兽医药品监察所。
1.2.2 供试品
1.2.2.1 空白样品 乳猪配合饲料:辽宁禾丰牧业股份有限公司,经检测不含喹乙醇和喹烯酮。
1.2.2.2 空白添加样品 分别按照0.2、0.4、2 mg/kg的比例在空白样品中添加喹乙醇和喹烯酮标准品,混匀。
1.2.3 试剂 甲醇、乙腈、甲酸色谱纯,水为符合GB/T 6682规定的一级水。
0.1%甲酸溶液:量取1.0 mL甲酸与1000 mL水,混匀。 0.1%甲酸-乙腈(2+8)溶液:量取200 mL 0.1%甲酸溶液与800 mL乙腈,混匀。0.1%甲酸-乙腈(8+2)溶液:量取 800 mL 0.1%甲酸中溶液与200 mL乙腈,混匀。
1.2.4 混合标准贮备液(1000 μg/mL) 分别准确称取喹乙醇和喹烯酮对照品各10 mg,于10 mL棕色容量瓶中,加2 mL二甲亚砜溶解,并用甲醇定容。-20℃密封避光保存,有效期为3个月。
1.2.5 混合标准工作液配制(10 μg/mL) 精密量取1.2.4项下混合标准贮备液1 mL用乙腈稀释定容100 mL。-20℃密封避光保存,有效期为3个月。
喹烯酮和喹乙醇均对光敏感,见光易分解,所以在整个实验过程中必须避光操作,所用的器皿应尽可能采用棕色。
1.3 样品检测
1.3.1 样品处理
1.3.1.1 提取 称取2.00 g试样 (精确至0.01 g),于聚丙烯离心管中,加入0.1%甲酸-乙腈溶液(2+8)20 mL, 涡动 1 min,40℃ 超声波清洗仪中超声10 min。9000 r/min下离心15 min,备用。
1.3.1.2 净化 精密量取1 mL上清液,直接过PRiME HLB固相萃取柱,收集全部流出液,精密量取3 mL水与之混匀,过0.22 μm滤膜供上机检测。
1.3.2 液相色谱条件 色谱柱:Atlantis T3,柱温:30℃,进样量:5 μL,梯度洗脱程序见表 1。
表1 梯度洗脱程序
1.3.3 质谱条件 离子扫描方式:正离子,检测方式:多反应监测,雾化器压力:7.0 Bar,干燥气流量:650 L/h,干燥气温度:400℃,毛细管电压:3000 V定性、定量离子对和锥孔电压及碰撞能量见表2。
表2 定性、定量离子对和锥孔电压及碰撞能量
1.3.4 标准曲线绘制 精密量取1.2.5混合标准工作液逐级稀释,以1.2.3.3稀释液定容配制成浓度分别为 5、20、80、200、500 ng/mL 标准曲线溶液,混匀后上机测定。
2.1 标准曲线 以特征离子质量色谱峰面积为纵坐标,标准溶液浓度(ng/mL)为横坐标,绘制标准曲线。2种药物在5~500 ng/mL时线性关系良好,相关系数均在0.996以上(表3)。
表3 2种药物的标准曲线及相关系数
2.2 检测限和定量限 添加适量混合标准工作液于空白饲料中,经提取后测定。根据特征质量色谱峰的信躁比S/N>3为检测限,信躁比S/N>10为定量限,检测到2种药物的检测限为0.06 mg/kg,定量限为0.2 mg/kg。空白饲料中添加0.2 mg/kg的2种药物特征离子质量色谱图见图1。
图1 空白饲料中添加0.2 mg/kg的2种药物特征离子质量色谱图
2.3 回收率及重复性实验 在空白饲料中添加3个不同浓度(0.2、0.4、2 mg/kg)2 种药物,进行回收率实验,每个添加浓度做5个平行,连续测定3批,其平均回收率、相对标准偏差见表4。从表中实验结果可以看出2种药物的添加回收率为80%~95.5%,批内批间相对标准偏差均小于10%。
3.1 选用Atlantis T3色谱柱分离,2种药物峰形均良好。见图1。采用C18色谱柱分离,喹烯酮峰形良好,喹乙醇受基质干扰,峰形很差,见图2。
3.2 采用目前的方法进行检测,与文献中报道的液相色谱质谱法比较,减少试剂的使用及操作步骤,节省试剂和时间,提高了检测效率。前处理方法比较见表5。
表4 2种药物回收率及重复性实验结果(n=5)
图2 2种药物(添加0.2 mg/kg)采用BEH C18色谱柱分离特征离子质量色谱图
3.3 基质效应研究 由于液相色谱-串联质谱存在基质效应,而且饲料样品基质复杂,因此对样品基质效应进行研究。比较3个不同条件下的信号峰面积:纯的标准品溶液,样品基质提取后添加,样品基质提取前添加。在优化实验条件下,用空白样品按“1.3.1”方法制作空白基质,加入一定量标准溶液,制成基质标准溶液;在空白样品中加入一定量标准溶液,按“1.3.1”方法制成基质匹配标准溶液;与相应浓度的纯标准溶液比较。实验结果发现,无明显基质效应,因此定量时采用纯的标准品曲线。
表5 2种前处理方法比较
该检测方法,定量限为0.2 mg/kg,在0.2、0.4、2 mg/kg添加水平下,喹乙醇和喹烯酮平均回收率为80%~95.5%,相对标准偏差均小于10%。实验流程更简单、更快速、更有效,适合大批量日常分析检测。