基于Ag/Si-NPA的DNA碱基高灵敏度SERS探测

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(1.郑州大学 物理工程学院 河南 郑州 450001； 2.材料物理教育部重点实验室 河南 郑州 450001)

0 引言

DNA是生物遗传信息的载体，而腺嘌呤(A)、鸟嘌呤(G)、胞嘧啶(C)和胸腺嘧啶(T)四种DNA碱基则是DNA的基本组成部分，在基因的表达和复制过程中扮演着重要角色.由于DNA碱基分子溶解度很低且散射截面较小，因此采用常规拉曼散射方法很难对其进行高灵敏度检测、分析和研究.表面增强拉曼散射(SERS)技术为低浓度生物分子的检测开辟了一个新的方向.在过去十余年中，有关生物分子SERS探测的研究被广泛报道，涉及的生物分子探测种类已经包括核苷酸分子、蛋白质、酶、DNA或RNA碱基等.通过对生物分子的SERS光谱进行分析，可以获得目标探测分子的大量信息，如分子的吸附取向、原子或功能基团的吸附行为、分子吸附于金属表面时的结构变化以及不同分子的共吸附状态等.SERS检测具有非常高的灵敏度，可实现对低浓度DNA碱基的有效探测，甚至可实现单分子检测.因此，通过对DNA碱基的检测和吸附行为的研究，有可能进一步实现对DNA分子的直接检测，并有望在未来用于对DNA的快速测序，因而具有重要的基础研究价值和应用前景.

在SERS探测中，目前最常用的活性基底是Ag的胶体和粗糙电极，二者通常采用化学液相法或电化学方法进行制备.由于胶体粒子易于团聚，而粗糙电极难于实现表面形貌和微观结构的大面积均匀性.因此，以其作为活性基底进行SERS探测时，测量的稳定性和重复性均不够理想.为改变这一状况，人们往往通过优化制备工艺或采用模板法制备颗粒均匀的金属纳米体系加以补偿.文献[1-2]采用水热腐蚀技术制备了一种硅的层次结构，即硅纳米孔柱阵列(Si-NPA).以Si-NPA作为衬底，采用简单的浸渍还原技术，在Si-NPA上制备了图案化的Ag纳米结构阵列.在此基础上，文献[3-4]以Ag/Si-NPA为活性基底，对低浓度的DNA碱基腺嘌呤和荧光生物指示剂罗丹明6G(R6G)进行了SERS检测.结果表明，Ag/Si-NPA是一种性能优异的SERS活性基底，具有灵敏度高、稳定性和可重复性好等优点.

本文以Ag/Si-NPA为活性基底，对腺嘌呤之外的其他三种DNA碱基(鸟嘌呤、胞嘧啶和胸腺嘧啶)在活性基底上的吸附行为和SERS增强效应进行研究.结果表明，Ag/Si-NPA能够对DNA碱基实现低浓度检测，对低浓度生物分子进行高灵敏度SERS检测具有很好的潜力.

1 实验方法

Si-NPA采用水热腐蚀法制备，其具体制备过程和结构表征见文献[1-2].制备完成后，将Si-NPA置于空气中20 h，通过自然氧化过程以改变Si-NPA的表面钝化状态，进而控制Ag纳米颗粒的沉积量和平均尺寸.随后，将经过自然氧化的Si-NPA在提前配制的浓度为0.01 mol/L的AgNO3溶液中浸渍沉积3 min，用去离子水充分清洗后在空气中自然晾干，得到Ag/Si-NPA活性基底[3].

配制具有不同浓度的鸟嘌呤、胞嘧啶和胸腺嘧啶的水溶液用于SERS检测.首先，将Ag/Si-NPA活性基底在0.1 mol/L的KCl溶液中预处理20 min，以去除Ag/Si-NPA表面可能吸附的杂质，而后用去离子水充分清洗干净.用微量进样器取4 μL配制好的碱基溶液滴于半干的Ag/Si-NPA表面，室温下自然干燥后进行SERS探测.

Ag/Si-NPA的结构、成分和表面形貌分别通过X射线衍射仪(Rigaku D/MAX-3B)和场发射扫描电子显微镜(JEOL JSM-6700F)进行表征.SERS光谱由显微拉曼光谱仪(Renishaw，RM2000)测得，激发波长为633 nm，光斑直径为1 μm，样品表面照射功率为0.3 mW，设备波数分辨率为1.5 cm-1，光谱收集时间均设定为10 s.

图1 Ag/Si-NPA的X射线衍射图Fig.1 The XRD pattern of Ag/Si-NPA

2 结果与讨论

2.1 Ag/Si-NPA的结构成分与形貌表征

图1给出了Ag/Si-NPA的X射线衍射图.图中观察到5个衍射峰，分别位于38.10°、 44.30°、64.40°、77.40°和81.60°.通过与Ag的标准XRD图谱进行比对可以确定，5个衍射峰分别对应于来自面心立方结构Ag晶体不同晶面族的衍射，表明通过浸渍沉积法成功实现了金属Ag在Si-NPA上的沉积生长.

通过扫描电镜得到Si-NPA和Ag/Si-NPA的表面形貌如图2所示.图2(a)给出了Si-NPA的表面形貌，可以观察到由近似等同、分离完好且垂直于样品表面规则排列的火山口状结构组成的阵列.根据文献[5]的研究结果，所观察到的火山口状结构为微米尺度的、高度多孔化的硅柱，孔的平均直径约为40 nm，孔壁由包裹二氧化硅的硅纳米晶粒组成，平均粒径约为3.4 nm.图2(b)为Ag/Si-NPA的表面形貌.可以看出，通过浸渍沉积在Si-NPA表面形成了两种Ag的结构：一种是连续覆盖于Si-NPA表面的Ag纳米晶粒；另一种则是亚微米量级较大的Ag颗粒.后者存在于硅柱之间的谷底，相互连接形成一种手链结构.根据文献[4]的表征结果，Ag纳米晶粒和较大颗粒的平均尺寸分别约为47.9 nm和587 nm，对于DNA碱基的SERS探测具有较好的效果.

图2 Si-NPA和Ag/Si-NPA的表面形貌Fig.2 Surface morphologies of Si-NPA and Ag/Si-NPA

2.2 鸟嘌呤、胞嘧啶和胸腺嘧啶的SERS探测

2.2.1鸟嘌呤、胞嘧啶和胸腺嘧啶的分子结构 鸟嘌呤为嘌呤类的有机化合物，其分子结构为由碳原子和氮原子组成的具有特征性的双环结构，在C2位带有一个氨基，C6位与氧原子形成羰基.胞嘧啶则是一种嘧啶碱基，与鸟嘌呤的双环结构不同，其分子仅由一个六元环组成，在C4位带有一个氨基，C3位与氧原子形成羰基.胸腺嘧啶为组成DNA的另一种嘧啶碱基，和胞嘧啶的结构相似，也是仅由一个六元环构成，在C5位带有一个甲基，C2和C4位与氧原子形成羰基.

2.2.2鸟嘌呤的SERS探测 图3为不同浓度鸟嘌呤溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱.图3(a)给出了鸟嘌呤固体粉末的常规拉曼光谱作为参比，图3(b)和图3(c)分别为浓度为10-5mol/L、10-6mol/L的鸟嘌呤溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱.可以看出，所测得的SERS光谱与常规拉曼光谱的谱结构基本一致，表明采用SERS光谱技术可以对低浓度鸟嘌呤溶液进行有效探测.

根据SERS表面选择定则[7]，垂直于金属表面的拉曼振动模式将会得到显著增强，而平行于金属表面的拉曼振动模式则增强效果较弱.在SERS光谱中观察到强度明显增加的、对应于面内振动模式的拉曼峰，说明鸟嘌呤分子吸附取向应为垂直于Ag颗粒表面；而位于380 cm-1的拉曼峰经比对，指认为来自于C2N3C4C5和N7C8N9C4的环面扭转振动，表明鸟嘌呤分子并非完全地垂直吸附于基底表面，而是略有倾斜.

(a)鸟嘌呤固体粉末;(b) 10-5 mol/L鸟嘌呤溶液; (c) 10-6 mol/L鸟嘌呤溶液图3 不同浓度鸟嘌呤溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱Fig.3 The SERS spectra of guanine solutions with different concentrations adsorbed on Ag/Si-NPA

图4(c)为鸟嘌呤溶液浓度降低至10-6mol/L时的SERS光谱.可以看出，随着鸟嘌呤溶液浓度的降低，SERS光谱的强度降低，但其峰形和峰位未发生明显变化.值得注意的是，归属于环呼吸振动模式的拉曼峰的相对强度降低，表明随着溶液浓度的降低，鸟嘌呤更趋向于平行吸附于基底表面.

(a) 胞嘧啶固体粉末;(b) 10-2 mol/L胞嘧啶溶液; (c) 10-6 mol/L胞嘧啶溶液图4 不同浓度胞嘧啶溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱Fig.4 The SERS spectra of cytosine solutions with different concentrations adsorbed on Ag/Si-NPA

图4(c)为胞嘧啶溶液浓度降低至10-6mol/L时的SERS光谱.可以看出，随着胞嘧啶溶液浓度的降低，环呼吸振动模式对应的拉曼峰的相对强度降低.另外，较低浓度时在972 cm-1处出现了归属于面外摇摆振动的峰，表明当溶液浓度降低时，胞嘧啶分子的吸附角度将会有所倾斜.

2.2.4胸腺嘧啶的SERS探测 图5为不同浓度胸腺嘧啶溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱.图5(a)给出了作为参比的胸腺嘧啶固体粉末的常规拉曼光谱，图5(b)和图5(c)则分别对应于浓度为10-2mol/L、10-6mol/L 的胸腺嘧啶溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱.根据文献[11-12]的理论计算结果，对SERS光谱中出现的主要拉曼峰进行了指认.与鸟嘌呤和胞嘧啶不同，胸腺嘧啶的环呼吸振动模式对应的拉曼峰位有较大的频移，由740 cm-1频移至781 cm-1.文献[13]研究结果表明，与环有关的振动频移归因于金属表面与π键之间的相互作用.因此，环呼吸振动较大的频移表明胸腺嘧啶的嘧啶环与Ag颗粒之间存在着一定的相互作用.

(a) 胸腺嘧啶固体粉末;(b) 10-2 mol/L胸腺嘧啶溶液; (c) 10-6 mol/L胸腺嘧啶溶液图5 不同浓度胸腺嘧啶溶液吸附于Ag/Si-NPA的SERS光谱Fig.5 The SERS spectra of thymine solutions with different concentrations adsorbed on Ag/Si-NPA

通过对比不同浓度胸腺嘧啶溶液的SERS光谱，可以看出，随着胸腺嘧啶溶液浓度的降低，环呼吸振动峰的强度下降，表明随着溶液浓度的降低，胸腺嘧啶分子的吸附角度将会有所倾斜.

2.3 DNA碱基SERS探测的普遍规律

通过以上分析可以看出，吸附于Ag/Si-NPA表面的碱基在SERS探测中有几个普遍的规律.鸟嘌呤、胞嘧啶、胸腺嘧啶吸附于Ag/Si-NPA活性基底后，虽然收集到的SERS光谱中大多数拉曼峰位都有明显的频移，但光谱结构与其固体粉末的常规拉曼光谱相比表现出明显的一致性.在SERS光谱中最强的拉曼峰虽然峰位频移略有不同，但均归属于面内环呼吸振动，鸟嘌呤和胞嘧啶拉曼峰的频移较小，胸腺嘧啶的峰位频移较大，与环有关的振动频移归因于金属表面与π键之间的相互作用.因此，环呼吸振动拉曼峰的频移表明三种碱基均是略有倾斜地吸附于基底表面，与胞嘧啶和鸟嘌呤相比，胸腺嘧啶的倾斜角度更小.

图6 鸟嘌呤(G)、胞嘧啶(C)和胸腺嘧啶(T)的几何结构以及吸附于Ag/Si-NPA上最可能的空间结构和取向Fig.6 The geometric construction of guanine(G), cytosine(C), thymine(T), and the most probable space configuration and orientation of the molecules adsorbed on Ag/Si-NPA

3 结论

通过SERS的方法研究了三种DNA碱基(鸟嘌呤、胞嘧啶和胸腺嘧啶)在低浓度时的吸附行为.以Ag/Si-NPA为SERS的活性基底，对不同浓度的DNA碱基进行了SERS探测，并与碱基固体粉末的常规拉曼光谱进行了对比分析.通过对比发现，三种DNA碱基均是略微倾斜地吸附于基底表面，但倾斜角度不同，胸腺嘧啶的倾斜角度要小于鸟嘌呤和胞嘧啶的倾斜角度.不同碱基的吸附位点相似，都是通过羰基和氮原子吸附于Ag原子表面.另外，随着溶液浓度的降低，碱基分子更趋向平行吸附于基底表面.研究结果表明，Ag/Si-NPA是一种具有潜力的SERS活性基底，可实现对低浓度生物分子的探测，有望应用于DNA快速测序工程.