昆虫共生菌介导的抗药性研究进展

段入心 孟雷 王宁新

（1. 山东农业大学植物保护学院，泰安 271000；2. 山东农业大学生命科学学院，泰安 271000）

自1908年美国的Melander［1]首次发现美国加利福尼亚州梨圆蚧（Quadrspidiotus pernicious）对石硫合剂有抗药性以来，昆虫产生抗药性的事例逐年增加，抗药性增长的速度也呈上升趋势。据不完全统计，目前已有600多种害虫对一种或多种杀虫剂产生了一定的抗性，其中以鳞翅目和双翅目昆虫种类最多［2-3]。1957年世界卫生组织（WHO）将昆虫的抗药性定义为：昆虫具有耐受杀死正常种群大部分个体的药量的能力，并在其群体内发展起来的现象［4]。昆虫抗药性表现为连续多年在同一地区固定使用同一种农药，经过一段时间后，当再次使用该农药时，防治效果下降。当前，昆虫的抗药性治理有多种方式，其中生物防治手段以其能够有效控制害虫、减少环境污染、低成本等优势已逐渐受到广泛关注［5]。生物防治可利用天敌昆虫、昆虫信息素等，最近很多研究发现昆虫共生菌与抗药性有一定关系，这为昆虫抗药性治理及农药降解提供了新方向。

存在于昆虫体内的共生菌是与昆虫在进化过程中长期共存、互惠互利的微生物，在昆虫体内扮演着重要角色。近年来，国内外学者对昆虫体内共生菌的研究越来越重视。目前报道的昆虫内共生菌具有协助宿主营养代谢、调节宿主生殖能力、调节寄主适应性和增强宿主抗药性等功能。根据昆虫与共生菌长期的进化关系，可将昆虫体内的共生菌分为两大类：初生共生菌和次生共生菌［6]。昆虫体内的初生共生菌是必需的，它们为昆虫宿主提供氨基酸、维生素等营养物质［7]；而次生共生菌对昆虫来说不是必需的，一些研究表明次生共生菌与宿主的生殖能力、抗药性等有一定的关联［8]。如Wolbachia和杀雄菌属Arsenophonus等共生菌除了被认为与昆虫宿主的生殖调控有关［9-11]，也有研究表明Wolbachia可以增强宿主的抗药性［12]。Pang等［13]用一种Arsenophonussp.代替褐飞虱肠内的常驻菌Arsenophonus后显著降低了宿主对杀虫剂的抗性，从而证明了褐飞虱肠道常驻菌Arsenophonus可以提高褐飞虱对杀虫剂的抗性。

化学杀虫剂的广泛和不合理使用导致昆虫产生抗药性的现象日益增多。本文针对昆虫共生菌介导的抗药性研究，从昆虫抗药性机制、与昆虫抗药性相关的共生菌类群和相关研究进展方面进行了论述，并对其研究前景进行展望。

1 昆虫抗药性机制

大多数研究认为昆虫抗药性机理主要有2种：一种是代谢抗性，改变了靶标处杀虫剂的有效剂量，即生理抗性、生化抗性和行为抗性，与代谢抗性关系最大的解毒酶包括：非专一性的酯酶如羧酸酯酶等、细胞色素P450介导的多功能氧化酶系、谷胱甘肽S-转移酶［14]和醛氧化酶［15]。另一种是靶标抗性，通过变异改变靶标的结构或者降低靶标对杀虫剂的敏感性，进而提高了昆虫对杀虫剂的耐受能力［16-18]，主要的靶标有乙酰胆碱酯酶（Acetylcholinesterase，AChE）、神经轴突钠离子通道（Sodium channel，SC） 和 γ-氨 基 丁 酸（Gamma-amino butyric acid，GABA）受体氯离子通道复合体等［19]。

目前多项研究指出，昆虫体内的共生菌对昆虫的抗药性也有一定的影响［20-22]。关于昆虫体内共生菌对昆虫产生抗药性的原因主要有3种：一种是昆虫体内共生的微生物能够降解农药从而使昆虫获得降解农药的能力和抗药性，如在点蜂缘蝽（Riptortus pedestris）上证明内共生菌伯克霍尔德菌（Burkholderia）可降解有机磷农药杀螟松的毒害，使宿主的抗药性增强［23-24]，Ramya等［25]证明小菜蛾（Plutella xylostella）肠道内的共生菌蜡样芽孢杆菌（Bacillus cereus）有降解茹虫威的作用；第二种是昆虫肠道微生物通过改变菌落结构来激活宿主免疫系统，使宿主的抗药性增强，刘浩［26]采用PCR-DGGE分子生物学技术对抗高效氯氰菊酯品系和敏感品系的德国小蠊（Blattella germanica）的肠道菌群进行分析，结果表明，抗性品系和敏感品系的德国小蠊的肠道菌的图谱存在差异，每个电泳条带的数量和迁移率各不相同，说明两种品系的德国小蠊肠道菌群存在差异，推测昆虫体内微生物群落变化与其抗药性有关。Xia等［27]发现小菜蛾（P.xylostella）中肠细菌在抗性品系与敏感品系存在差别，推测肠道细菌菌群在抗药性上发挥着重要作用；第三种是昆虫内共生菌体内解毒酶的活性升高从而使昆虫抗药性增强，如李娜等［28]研究发现褐飞虱（Nilaparvata lugens）共生菌抗吡虫啉菌株体内羧酸酯酶、多功能氧化酶活性明显高于敏感菌株，之后将抗感吡虫啉褐飞虱共生菌菌株接种在含不同浓度吡虫啉的培养基中，对褐飞虱抗吡虫啉菌株和敏感性菌株的活性进行比较，发现抗性菌株的解毒酶（超氧化物歧化酶和过氧化物酶）活性提高，推测褐飞虱对吡虫啉的抗药性与其体内共生菌的解毒酶和抗氧化酶活性增强有关［29]。

2 与昆虫抗药性相关的共生菌类群

与昆虫体内抗药性密切相关的共生菌大致分为3类：立克次氏体、细菌和酵母菌。立克次氏体的细菌中最常见是在昆虫和节肢动物体内发现的Wolbachia，研究发现全球范围内有70%左右的昆虫感染了此类的细菌［30]。Wolbachia被认为是昆虫共生菌中丰度最高、分布最广的类群［31]。研究发现烟粉虱（Bemisia tabaci）中共生菌立克次氏体Rickettsia与抗药性也有一定关系［32]；与昆虫抗药性有关的细菌如Burkholderia、Arsenophonus、肠球菌（Enterococcus）、沙雷氏菌（Serratia）及肠杆菌（Enterobacter）等则多数的存在于半翅目、蜚镰目、鳞翅目和鞘翅目等某些昆虫的体内［13，23，26-27]；类酵母则主要存在于半翅目如灰飞虱、褐飞虱等昆虫的体内［29-33]。

3 昆虫共生菌抗药性研究进展

昆虫体内的一些共生菌具有降解杀虫剂的能力［34-35]和提高昆虫对外源物质的解毒能力［36-37]。最早是在苹果实蝇（Rhagoletis pomonella）上发现共生菌与抗药性之间存在一定的关系，苹果食蝇体内一种专性共生菌假单胞菌Pseudomona能够降解敌敌畏、对硫磷、狄氏剂、二嗪农和西维因，使其在苹果实蝇上的防治效率降低［38]。昆虫共生菌抗药性的研究主要集中在鳞翅目、半翅目、鞘翅目、蜚蠊目、双翅目的昆虫。

周文慧等［39]采用胚胎显微注射技术，将一种高致病性共生菌一种高毒的Wolbachia品系wPopcorn注射到二化螟（Chilo suppressalis）的早期胚胎内并使其表达活性，研究了Wolbachia与二化螟的抗药性之间的关系。结果表明感染Wolbachia后二化螟增强了其抗药性。Wolbachia的相对含量与二化螟抗药性之间也存在着正相关关系，即Wolbachia密度越高，二化螟的抗药性就越强。Xia［40]用从小菜蛾肠道内获得的肠球菌、肠杆菌、沙雷氏菌对清除了肠道微生物的小菜蛾进行饲喂，同时将这几种菌进行毒死蜱降解实验，实验结果表明这几种菌均能对毒死蜱产生降解作用，但是只有饲喂肠球菌的小菜蛾抗性得到了提升，他认为肠道微生物可能存在除直接参与宿主昆虫体内毒素降解之外的其他方式。

目前从飞虱体内成功分离培养并鉴定的类酵母共生菌有4种，包括由张环锋等［41]利用卵块离体培养法分离得到嗜盐梗孢酵母（Sterigmatomyces halophilus）、 解 脂 假 丝 酵 母（Yarrowia lipolytica），Hughes等［42]在YM培养基上培养的假丝酵母属酵母Candidasp.和Pang等［43]在YM培养基上分离培养的类假丝酵母（Candida-like），前3种都是从褐飞虱体内分离得到的，后一种是在甘蔗扁角飞虱体内中分离的。褐飞虱体内的内共生菌主要是类酵母菌，李娜等［28]通过前期利用“卵块离体培养法”成功地培养出褐飞虱类酵母共生菌进行抗吡虫啉解脂酶活性实验，研究发现褐飞虱体内解脂假丝酵母共生菌对吡虫啉的抗药性与其体内羧酸酯酶、多功能氧化酶活性增强有关。灰飞虱（Laodelphax striatellus）体内也存在着多种共生菌，如共生菌Wolbachia和类酵母菌等［44-45]，Wolbachia可提高灰飞虱宿主的生殖能力，使其子代数显著增多，类酵母共生菌可以为灰飞虱提供氨基酸和固醇类等营养物质［46]。曹伟等［33]检测出灰飞虱对不同杀虫剂的敏感性不同，首次从灰飞虱体内发现P. anomala（异常毕赤酵母）并成功离体培养，通过对P. anomala不同杀菌剂敏感性分析，研究了不同杀菌剂对灰飞虱及其类酵母共生菌的影响，并将抑制效果显著的杀菌剂与杀虫剂复配，降低了杀虫剂的使用浓度，同时提高了灰飞虱的防治效果，为灰飞虱的防治提供新思路。同时qPCR检测结果表明，灰飞虱体内3种共生菌Hypomyces chrysospermus，季也蒙毕赤酵母（Pichia guilliennondii）和异常毕赤酵母（P. anomala）的数量在使用杀菌剂后显著降低，灰飞虱的死亡率与体内类酵母共生菌的数量呈现负相关性，进一步说明了内共生菌在其抗药性方面发挥一定作用。也有研究发现高温处理灰飞虱，其体内的共生菌会减少，最终会导致其耐药性减弱［47]。Li等［48]发现Wolbachia和Rickettsia与昆虫的抗药性有关。通过研究小型褐飞虱（Ladellphax striatellus，SBPH）噻嗪酮抗性品系（BR）与易感品系（BS）接触噻嗪酮之后内共生菌感染发生率还研究了BR的Wolbachia被清除后，其对噻嗪酮的敏感性。结果表明，BR和BS的Wolbachia感染发生率均为100%，但Wolbachia密度BR明显高于BS，BR的沙雷氏菌感染发生率和沙雷氏菌与Wolbachia的双重感染发生率明显高于BS。当BR的Wolbachia被清除后，其对噻嗪酮的敏感性增加。结果表明，沙雷氏菌和Wolbachia感染可能改善SBPH对噻嗪酮的耐药性。

根据陈露等［32]的研究报道，内共生菌Rickettsia、Candidatus Portiera、Candidatus Hamiltonella、Prevotella等在烟粉虱Bemisia tabaci的新烟碱类杀虫剂吡虫啉抗性品系中明显多于敏感品系，这可能与烟粉虱对吡虫啉的抗性有关；在对保幼激素类似物杀虫剂吡丙醚的抗性品系中，Candidatus Hamiltonella-OTU7、Candidatus Portiera-OTU5、Candidatus Portiera-OTU190、Rickettsia-OTU4、Rickettsia-OTU2的数量明显多于敏感品系，这些内共生菌可能与烟粉虱对该类药物的抗性有关。Kontsedalov等［49]的研究也表明烟粉虱体内的共生菌Rickettsia可以有效地减弱吡丙醚对烟粉虱的毒杀效果。杨义婷［50]研究发现Rickettsia bellii也可以提高烟粉虱的抗药性。

黄彦娜［51]通过16S rDNA测序及荧光定量PCR分析，表明抗性禾谷缘管蚜种群中布赫纳氏菌属Buchner的表达量显著高于敏感品系，推断禾谷缘管蚜体内的初生共生菌Buchnera与禾谷缘管蚜的抗药性可能存在某种关联。Kikuchiy等［23]研究发现内共生菌伯霍尔德杆菌Burkholderia可以使点蜂缘蝽对杀螟松的抗药性增强，当土壤中杀螟松含量上升时，具有分解能力的Burkholderia便在土壤中富集，且在富集土壤中生长的点蜂缘蝽能够与具有抗性的Burkholderia建立共生关系，使宿主获得对杀螟松的抗性。Xu等［52]研究表明南部长蝽Blissus insularis对杀虫剂的抗药性与肠道内共生菌有一定关系。烟草甲Lasioderma serricorne体内的类酵母共生菌可以直接分解烟碱［53]，并且可以产生水解酶，对食物中的有毒物质进行代谢［46]，也可以产生多种解毒酶如乙酰胆碱酯酶，对广谱性的杀虫剂具有解毒作用［54]。刘浩［26]选用不同种类杀虫剂通过药膜法对德国小蠊进行抗药性分析，研究发现去除肠道菌的德国小蠊的抗药性低，说明肠道微生物对德国小蠊的抗药性产生了一定的影响。有研究表明感染Wolbachia可以显著提高果蝇对噻嗪酮等杀虫剂的抗药性［8]。Cheng等［55]从桔小实蝇（Bactrocera dorsalis）抗性品系体内分离培养得到柠檬酸杆菌（Citrobactersp.，CF-BD），并通过比较基因组学分析发现，CF-BD中的磷酸水解酶基因在敌百虫存在时高表达，从而证明CF-BD在B. dorsalis产生杀虫剂抗性过程中起到关键作用。洪善超等［56]通过实时定量PCR技术（qRT-PCR）测定并比较淡色库蚊（Culex pipiens pallens）溴氰菊酯抗性和敏感品系中Wolbachia表达差异，结果显示抗性品系比敏感品系Wolbachia表达量高，研究发现Wolbachia表达水平和淡色库蚊溴氰菊酯抗性间存在相关性。还有研究发现肠道细菌参与了斯氏按蚊Anopheles stephensi对有机磷杀虫剂的降解［57]。

4 展望

研究表明，昆虫共生菌不仅可以为宿主提供食物中缺乏的必需营养物质，协助宿主的营养代谢，而且也可以增强宿主的抗逆性、抗药性等。昆虫体内共生菌介导的宿主抗药性产生的细菌类群、抗性机理等呈现出多样性和复杂性。由于许多共生菌无法体外培养，某种程度上限制了其功能和互作机理的研究，但随着分子生物学技术特别是宏基因组测序技术的快速发展，昆虫共生菌的功能研究将会有明显突破。以果蝇、家蚕为代表的模式昆虫的基因组测序相继完成，使昆虫抗药性研究进入了组学时代。今后更需要众多学科领域的交叉渗透研究，使昆虫抗药性的分子机制得到更深入阐释，为病虫害的监测防治、新型杀虫剂的研制以资源昆虫抗性品系选育提供科学有效的理论指导。昆虫共生菌介导的抗药性治理对于农产及品质量控制以及环境保护等具有重要意义，也为生物防治提供了新方法新思路。目前，对于昆虫内共生菌抗药性机制没有很明确的阐释，昆虫体内存在多种酶，而抗药性与解毒酶的活性有关，共生菌的存在是否会导致酶活改变，共生菌是否会影响昆虫体内抗药基因的表达水平等都需要进一步探究。随着研究的深入，昆虫共生菌是如何介导对不同类型杀虫剂抗性的产生，以及如何利用这些共生菌达到防治害虫、保护益虫的目的会是未来研究的重点内容，同时研究结果也会为研究昆虫-微生物的互作奠定研究基础。