(深圳市宝安区人民医院,消化内科,广东 深圳 518101)
胃癌是一种常见的恶性肿瘤且发病率非常高。近些年,我国每年新发胃癌人数达40万左右,发病率占全世界41%左右[1],同时具有年轻化的趋势。胃癌细胞的侵袭过程中有多种信号通路参与,如NF-κB、Wnt和Hippo信号通路[2-3]。随着Hippo-YAP信号通路与胃癌发生发展之间研究增加,发现Hippo-YAP通路能够调控细胞增殖和凋亡,在肿瘤细胞侵袭进程中发挥重要的作用[4-6],可能成为靶向治疗的新靶点[7]。研究发现[8-10],YAP蛋白在胃癌、大肠癌和肺癌等肿瘤中高表达,YAP蛋白是Hippo通路主要下游效应蛋白。CUL4是一类泛素连接酶,属于Cullin基因家族[11],在食管癌、胃癌、结肠癌等多种肿瘤中表达升高,在肿瘤细胞形成过程中通过不同的分子调控机制发挥着重要作用[12]。但对于CUL4在调节胃癌细胞的侵袭过程中的作用报道较少。FAT4被称为Fat-J,在2004年被首次报道[13]。吴建林等[14]研究发现FAT4可能是胃癌发生、发展相关的抑癌基因,但FAT4胃癌细胞发生、发展中的具体机制研究较少。本研究针对性地研究FAT4及CUL4在调控Hippo通路对胃癌细胞侵袭过程中的作用和机制。
经深圳市宝安区人民医院伦理委员会的批准,并经过患者的知情同意之后选取就诊于本院并住院行胃癌切除术的160例胃癌患者标本。其中,男性84例,女性76例;年龄(58±3)岁。所有入组患者临床病理资料完整,同时收集50例经2位经验丰富的病理科医师确定的正常胃黏膜组织标本作为对照。
1.1.1 纳入标准 在本院行胃癌手术的患者;术后病理诊断明确为胃腺癌。
1.1.2 排除标准 术后病理学诊断含有鳞癌、间质瘤等成分;术前接受过新辅助治疗;标本留取不符合标准;标本储存过程中有过冻融。
包埋机(美国Thermo公司),自动切片机(LEICA,型号RM2135),显微镜(日本Olympus CX21),载玻片(江苏世泰实验器材有限公司),恒温水浴箱(上海精宏实验设备有限公司),全自动显微照相系统(日本Olympus公司),电泳装置(美国Bio-RAD公司),ECL化学发光检测系统(美国Santa Cruz公司)。
甘氨酸、矾酸钠、Tris碱、十二烷基磺酸钠、Tris-C1、叠氮钠(美国Sigma公司),蛋白定量试剂盒(Pierce公司),硝酸纤维素膜(S&S公司),抗鼠及抗兔二抗(上海华舜公司),FAT 4、β-actin、YAP、CUL4(美国 Santa Cruz公司),FAT4抗体(美国Novus Biologicals公司),DAB显色试剂盒(武汉博士德生物工程有限公司),YAP抗体(美国Cell Signaling公司),CUL4抗体(美国Abcam公司)。
1.3.1 免疫组织化学法 ①切片:将石蜡包埋组织作4μm厚连续切片;②烤片:切片置于60℃温箱内过夜;③脱蜡:常规3级二甲苯脱蜡5 min,5级梯度酒精脱水1 min,蒸馏水冲洗3 min,冲洗3次;④阻断:3%过氧化氢H2O2甲醇溶液,室温孵育15 min,PBS冲洗3 min/次,冲洗3次;⑤抗原修复(高温高压加热法):将修复液置于不锈钢高压锅中煮开,将水化好的组织片浸没在修复液中,煮沸1~2 min后,冷却;⑥封闭:切片加1滴正常非免疫动物血清,室温下孵育10 min;⑦加一抗和二抗:切片加1滴一抗置于湿盒中4℃电冰箱中过夜,PBS冲洗3 min,冲洗3次;加1滴生物素标记的二抗体,置于湿盒中4℃孵育30 min,PBS冲洗3 min,冲洗3次;加一滴链霉素抗生物素一过氧化物酶溶液,置于湿盒中4℃孵育30 min,PBS冲洗3 min,冲洗3次;⑧显色:切片1滴加新鲜配置的DAB溶液,显微镜下观察显色情况,适时终止反应;⑨复染、封片:切片苏木素复染4 min,清水冲洗,酒精脱水,二甲苯透明,干燥,中性树脂封片,显微镜下观察并进行判定。判定标准:按照染色强度,不着色为1分,浅黄色为2分,棕黄色为3分,棕褐色为4分;着色肿瘤细胞占计数细胞百分比例计分,无肿瘤细胞染色为0分,>10%为1分,10%~35%为2分,35%~75%为3分,>75%为4分;染色细胞百分比得分乘以着色程度得分为免疫组织化学最后评分,0到6分为阴性,8到16分为阳性。
1.3.2 Western blot ①上样和电泳:每组加相同量的蛋白,40 V恒流电泳,当嗅酚蓝带将要移出至胶底时终止电泳。②转膜:将电转移垫、滤纸、目的凝胶、PVDF膜、滤纸、电转移垫,放入转膜电泳槽中,加满新鲜的转膜缓冲液,低温条件转膜90 min左右(电流为200 mA)。③封闭:转膜结束后,将PVDF膜浸于脱脂奶粉封闭液中封闭1 h。④抗体孵育:PVDF膜用封闭后,加入1∶1 000一抗4℃孵育过夜,用PBS洗膜(10 min/次,3次),加入二抗,室温孵育1 h,再用PBS洗膜(10 min/次,5次)。⑤化学发光:按1∶1加入AB显影液(与二抗HRP结合),在ECL化学发光检测系统上显影。
数据分析采用SPSS 19.0统计软件,计量资料以均数±标准差(±s)表示,比较采用t检验,计数资料用例表示,比较采用χ2检验,指标相关性比较采用线性相关性分析,P<0.05为差异有统计学意义。
胃癌细胞中FAT4、CUL4和YAP在性别、病理类型阳性表达率比较,差异无统计学意义(P>0.05),在胃癌的分化程度及淋巴结转移之间差异有统计学意义(P<0.05),且淋巴结无转移、分化程度较高的FAT4、CUL4和YAP阳性表达率高。见表1。
表1 胃癌组织中FAT4、CUL4和YAP的表达与性别、分化程度、病理类型及淋巴结转移的关系
免疫组织化学结果发现,胃癌组织中CUL4和YAP表达量较正常胃组织增多,胃癌组织中FAT4表达量较正常胃组织减少,且FAT4、CUL4和YAP主要在细胞核、胞浆中表达,见图1。
Western blot检测,胃癌组织中CUL4及YAP蛋白表达量(1.18±0.19)和(0.89±0.21)高于正常胃组织(0.58±0.15)、(0.37±0.12),且差异有统计学意义(t=17.563和17.549,均P=0.001);胃癌组织中FAT4蛋白表达量(0.42±0.11)低于正常胃组织(0.94±0.12),且差异有统计学意义(t=17.561,P=0.001)。见图2、3。
胃癌组织中FAT4与YAP的表达呈负相关(r=-0.931,P=0.012);胃癌组织中CUL4与YAP的表达呈正相关(r=0.897,P=0.008)。见表2。
图1 胃癌组织及正常胃组织中FAT4、CUL4及YAP的表达 (×200)
图2 胃癌组织及正常胃组织中FAT4、CUL4及YAP蛋白表达
表2 胃癌组织中FAT4、CUL4及YAP蛋白表达相关性研究
图3 胃癌组织及正常胃组织中FAT4、CUL4及YAP蛋白表达比较
Hippo-YAP信号通路可通过一系列的信号转导及磷酸化激酶调节YAP的活性,从而影响肿瘤的发生及发展情况[15-16]。研究发现,胃癌细胞的增殖、侵袭与许多信号通路具有密切的关系,如Wnt/β-catenin、Hippo-YAP及AKT/mTOR等[17-20]。研究发现,在胃癌细胞中Hippo信号通路的效应分子YAP可以作为治疗靶点被VGLL4竞争性抑制[18],同时造成胃癌细胞的生长停滞。因此,Hippo-YAP信号通路与胃癌的发生、发展具有密切的关系。
研究发现,FAT4蛋白在食管癌[21-22]、肝癌[23]中表达量降低。在胃癌组织中,FAT4低表达能够导致胃癌细胞增殖能力增强[24]。本研究发现,胃癌细胞中FAT4、CUL4和YAP在性别、病理类型阳性表达率差异无统计学意义,在胃癌的分化程度及淋巴结转移之间差异有统计学意义,且淋巴结无转移、分化程度较高的FAT4、CUL4和YAP阳性表达率高。研究发现[25],YAP是Hippo信号通路的主要转录因子,且能够在胞浆与胞核之间穿梭。YAP的表达量在胃癌组织胃高于正常胃组织[26-27]。本研究发现胃癌组织中YAP蛋白的表达量高于正常胃组织,且胃癌组织中FAT4与YAP的表达呈负相关。同时MURPHY等[28]发现FAT4的缺失会造成YAP的核转位增加并导致胚胎恶性转化及肿瘤的发生。AZZOLIN等[29]研究发现,FAT4低表达能够增加细胞内的非磷酸化的YAP的表达量。研究表明[30],FAT4低表达能够通过Hippo通路增加胞浆中YAP蛋白表达水平。因此,在胃癌中FAT4的低表达导致YAP蛋白表达量增加,这可能与Hippo信号通路的调节有关,说明FAT4可能通过调控Hippo-YAP信号通路抑制胃癌细胞侵袭过程。
胃癌组织中CUL4表达量高于正常胃组织[31]。QIAO等[32]研究发现CUL4能促进胃癌细胞恶性增殖和转移,本研究发现CUL4表达量在胃癌组织中高于正常胃组织,与以往研究结果相符[31]。CUL4高表达可以促进YAP进入细胞核,同时胃癌组织中CUL4与YAP表达呈正相关[33]。本研究发现胃癌组织中YAP与CUL4表达呈正相关,与以往研究结果一致。说明CUL4可能通过调控Hippo-YAP信号通路促进胃癌细胞侵袭过程。
综上所述,FAT4通过调控Hippo-YAP信号通路抑制胃癌细胞侵袭过程,CUL4通过调控Hippo-YAP信号通路促进胃癌细胞侵袭过程。