王伟琦 郑亚冰 李昌 刘春燕 汤俊怡 常晓天
【摘要】 目的 探索雌激素刺激乳腺癌病变过程中染色体缩合调控子2(RCC2)的作用及机制。方法 收集乳腺标本,用蛋白免疫印迹法检测RCC2蛋白表达水平;分别用雌激素(雌二醇)、RCC2 小干扰RNA(siRNA),雌激素联合RCC2 siRNA处理MCF-7细胞,检测细胞增殖与凋亡。结果 与乳腺纤维瘤组织相比,RCC2在雌激素受体阳性(ER+)乳腺癌组织中的表达水平升高(P=0.001),在ER-乳腺癌组织中无升高(P=0.404)。抑制RCC2后ER+乳腺癌细胞系MCF-7增殖无变化(F处理=0.003,P=0.957),但凋亡比例比Allstars siRNA组高(t=2.679,P=0.037);雌二醇处理MCF-7后增殖能力增强(F=110.323,P
【关键词】 染色体缩合调控子2;雌激素;乳腺癌;细胞凋亡;细胞增殖
【Abstract】 Objective To explore the role of chromosomal condensation regulator 2 (RCC2) during the process of estrogen promoting the progression of breast cancer. Methods Human breast tissues were collected. Western blot was utilized to quantitatively detect the expression level of RCC2 protein. MCF-7 cells were treated with estrogen or RCC2 siRNA and combined use of estrogen and RCC2 siRNA. The cell apoptosis and cell proliferation were detected. Results Compared with the breast fibroma tissues, the expression level of RCC2 in the ER+breast cancer tissues was significantly up-regulated (P=0.001), but there was no significant change in the ER-breast cancer tissues (P=0.404). After inhibiting the expression of RCC2, the proliferation of MCF-7 cells did not significantly change (F=0.003, P=0.957), whereas the apoptosis ratio of MCF-7 cells was significantly higher than that in the Allstars siRNA group (t=2.679, P=0.037). After treated with E2, the proliferation of MCF-7 cells was evidently enhanced (F=110.323, P
【Key words】 Chromosomal condensation regulator 2; Estrogen; Breast cancer;
Cell apoptosis; Cell proliferation
乳腺癌是全球妇女最常见的恶性肿瘤,雌激素受体阳性(ER+)的乳腺癌患者占总比约70%[1]。目前乳腺癌早期诊断方法主要为影像学检查,寻找诊断及判断乳腺癌预后的明星基因十分必要[2]。染色体缩合调控子2(RCC2)也被称作TD60,位于染色体1p36位点[3]。其在胃癌组织中显著上调,可筛选结直肠癌高危人群,同时也是黑色素瘤复发及生存率的决定因素[4-6]。最近有学者发现RCC2可通过诱导上皮细胞-间充质转化(EMT)促进肺腺癌的转移[7]。尽管RCC2与众多肿瘤的发生相关,但RCC2是否参与乳腺癌的致病至今尚未明确。在本研究中,笔者探究了RCC2是否在乳腺癌的致病过程中发挥作用,以及雌激素是否参与其中,从而为更有效治疗乳腺癌、提高患者生存率提供参考依据。
材料与方法
一、材 料
1.乳腺组织的获取
收集2014年6月至2016年12月滕州市中心人民医院保存的18例患者的乳腺组织,其中乳腺癌组织13例(ER+组织8例、ER-组织5例),乳腺纤维瘤组织5例。18例患者的年龄为41(20~70 )岁。本研究计划经山东省千佛山医院及滕州市中心人民医院医学伦理委员会批准。
2.细胞株
乳腺癌细胞株MCF-7购于中国科学院上海生命科学研究院细胞资源中心。
3.主要试剂
MEM培养基购于美国Corning公司;无酚红DMEM购于北京迈晨科技有限公司;葡聚糖-活性炭吸附血清购于以色列BI公司;胎牛血清购于浙江天杭生物科技股份有限公司;兔抗人RCC2单克隆抗体购于美国Cell Signaling Technology公司;Cell Counting Kit-8细胞增殖试剂购于日本同仁公司;Annexin V-FITC/PI凋亡试剂盒购于美国BioLegend公司;雌激素(雌二醇)纯度>99%购于Sigma公司。
二、方 法
1.乳腺癌细胞培养
乳腺癌细胞株MCF-7用含10%胎牛血清+0.01 mg/ml牛胰岛素的MEM培养基在恒溫培养箱37℃、5%二氧化碳条件下培养。做雌激素相关实验之前,在含5%葡聚糖-活性炭吸附血清的无酚红DMEM中培养MCF-7共3 d。
2.蛋白免疫印迹法检测RCC2的蛋白表达
包括以下步骤:①组织蛋白提取,称量乳腺组织50 mg,加入裂解液充分研磨,冰上裂解30 min,于4℃ 12 000转/分离心30 min。取上清,于95℃变性15 min,于-80℃保存备用。②细胞蛋白提取,转染72 h后收集细胞,操作步骤同上。③蛋白免疫印迹法,取50 μg蛋白进行SDS-PAGE凝胶电泳,将蛋白恒流转至PVDF膜上,RCC2单克隆抗体(1∶ 1 000)4℃过夜,二抗(1∶ 5 000)37℃孵育2 h。用ECL发光液在荧光成像仪检测蛋白表达情况。
3.小干扰RNA(siRNA)转染
将MCF-7铺于6孔板,待细胞贴壁后进行转染。实验分为Allstars siRNA组和RCC2 siRNA组,转染步骤根据HiPerFect Transfection Reagent说明书进行。
4.实时荧光定量PCR
转染48 h后收集细胞,提取RNA。按TOYOBO逆转录试剂盒操作说明书将RNA逆转录为cDNA,采用实时荧光定量PCR检测RCC2的mRNA表达水平。反应体系为SYBR Green 5 μl,ddH2O 2 μl,上下游引物各1 μl,cDNA 1 μl。反应条件为95℃预变性10 min,(95℃ 15 s,60℃ 34 s,72℃ 30 s)×45 cycle,72℃延伸3 min。
5.Cell Counting Kit-8试剂盒检测细胞增殖
转染24 h后收集细胞铺于96孔板。分别于转染0、24、48、72 h向相应孔加入10 μl Cell Counting Kit-8溶液,培养箱孵育3 h。采用酶标仪测定吸光度(OD450),将数值进行相应统计。
6.Annexin V-FITC/PI流式分析检测细胞凋亡
轉染48 h后取20×104~50×104个细胞离心,磷酸盐缓冲液(PBS)清洗细胞3遍,加入100 μl binding buffer 重悬,加入FITC 5 μl、PI 10 μl,混匀后室温避光孵育15 min。每管加入400 μl binding buffer,重悬后上机检测。
7.雌激素刺激实验
包括以下步骤:①雌激素的配制,以无水乙醇为溶剂,将雌二醇配制成浓度为10-2 mol/L的储存液。用无酚红DMEM加5%葡聚糖-活性炭吸附处理过的胎牛血清为溶剂配制不同浓度的雌二醇(10-12、10-10、10-8、10-6、10-4 mol/L)以及含0.1%无水乙醇的对照组。②用Cell Counting Kit-8试剂盒检测细胞增殖,方法同上。③用Annexin V-FITC/PI流式分析检测细胞凋亡,方法同上。
三、统计学处理
采用SPSS 17.0进行统计分析,正态分布计量资料用±s表示。完全随机设计的2组样本均数比较采用独立样本t检验;多组相互独立的样本均数比较采用单因素方差分析,差异有统计学意义者使用LSD-t检验进行两两比较;同一受试对象不同处理在不同时间点上变化情况的比较采用重复测量资料方差分析,差异有统计学意义者使用LSD-t检验进行两两比较;采用2×2析因设计的方差分析了解2种处理因素的效应及因素间交互作用。P<0.05为差异有统计学意义。
结 果
一、RCC2在乳腺癌组织中的表达
各组间RCC2蛋白表达水平差异有统计学意义(F=10.851,P=0.001)。在此之后多重比较中,乳腺纤维瘤组织(0.242±0.054)与ER+乳腺癌组织(0.736±0.280)相比RCC2蛋白表达水平低(P=0.001);而与ER-乳腺癌组织(0.352±0.115)相比RCC2蛋白表达水平差异无统计学意义(P=0.404),见图1。
二、RCC2 siRNA对RCC2 mRNA水平和蛋白表达的作用
与Allstars siRNA组相比,RCC2 siRNA组中RCC2的mRNA水平降低约75%,差异有统计学意义(t=3.177,P=0.019),见图2A; 与Allstars siRNA组RCC2的蛋白水平(0.951±0.150)相比,RCC2 siRNA组(0.504±0.313)较其降低约45%,分子量为56 kDa,差异有统计学意义(t=3.251,P=0.017),见图2B、C。提示本实验所用si-RCC2能成功抑制MCF-7中RCC2 mRNA及蛋白水平的表达。
三、 RCC2 siRNA对MCF-7细胞增殖的影响
RCC2 siRNA组与Allstars siRNA组的细胞增殖比较差异无统计学意义(F处理=0.003,P=0.957),且处理与时间的交互作用的方差分析结果显示两者的交互作用无统计学意义(F时间*处理=0.03,P=0.992),见图3。提示抑制RCC2的表达对MCF-7的细胞增殖无明显影响。
四、RCC2 siRNA对MCF-7细胞凋亡的影响
转染48 h后,RCC2 siRNA组细胞凋亡比例为(16.87±2.00)%,较Allstars siRNA组的(11.63±3.37)%高,比较差异有统计学意义(t=2.679,P=0.037),见图4。提示抑制RCC2的表达可促进
五、雌二醇对MCF-7细胞增殖和凋亡的影响
不同浓度雌二醇处理组的MCF-7细胞增殖随时间的变化趋势不同,处理与时间的交互作用的方差分析结果显示其交互作用有统计学意义(F时间*处理=110.323,P<0.001,P-10<0.001,P-8<0.001,P-6<0.001,P- 六、雌二醇在MCF-7中对RCC2表达的影响
加入10-8 mol/L雌二醇处理MCF-7,分别在0、2、8、48 h收集细胞,检测RCC2的表达。与0 h相比,RCC2的表达量随时间的增加而增加,量化后的RCC2相对蛋白表达量作单因素方差分析在0 h(0.562±0.106)、2 h(0.818±0.676)、8 h(0.806±0.119)、48 h(1.235±0.304)之间差异有统计学意义(F=7.653,P=0.010)。与0 h相比,48 h的RCC2蛋白表达升高,差异有统计学意义(P=0.002),见图6。提示雌二醇在MCF-7中可促进RCC2的表达。
七、雌二醇与RCC2 siRNA共同对MCF-7细胞增殖和凋亡的影响
MCF-7转染24 h后,加入含0.1%乙醇的无酚红DMEM或10-8mol/L雌二醇处理48 h,观察2种因素对细胞增殖和凋亡的影响,见图7。析因分析结果显示,雌二醇与RCC2 siRNA 2种因素在MCF-7细胞增殖方面交互效应无统计学意义(F=0.281,P=0.604),在MCF-7细胞凋亡方面交互效应有统计学意义(F=18.897,P=0.002)。其中加入雌二醇可抑制细胞凋亡(F=108.599,P<0.001)。提示雌二醇促进细胞增殖不是通过调控RCC2实现的,而雌二醇抑制细胞凋亡可能通过调控RCC2实现。
讨 论
乳腺癌是女性常见癌症死亡原因之一,ER+乳腺癌是中老年乳腺癌的主要类型,雌激素在其致病过程中发挥重大作用[8]。RCC2是染色体乘客复合体(CPC)的一员,目前已知其在胃癌组织、黑色素瘤、肺腺癌、皮肤基底细胞癌患者及结直肠癌高危人群体内显著上调[4-7,9-10]。在本实验中,笔者通过检测不同类型乳腺组织RCC2蛋白表达情况,发现与乳腺纤维瘤组织相比,ER+乳腺癌组织RCC2表达量更高,而ER-乳腺癌组织与乳腺纤维瘤组织之间RCC2的表达量无明显差异,提示RCC2可能通过提高表达水平参与ER+乳腺癌的发展。
为了探究RCC2在ER+乳腺癌中的生物學功能,笔者选择ER+乳腺癌细胞系MCF-7进行一系列体外细胞功能学实验。结果显示,抑制RCC2在MCF-7中的表达可促进细胞凋亡,但对细胞增殖无明显影响,说明抑制RCC2可影响乳腺癌细胞系MCF-7的凋亡。有研究显示,RCC2参与细胞有丝分裂和纺锤体的组装[9, 11]。此外,RCC2作为纤维蛋白依赖的黏附信号通路调控者参与调控Rac1和Arf6,从而影响细胞扩散与定向迁移[12-15]。关于RCC2是通过何种途径调控细胞凋亡,Bruun等[5]认为抑制RCC2促进细胞凋亡这一现象可能与细胞有丝分裂有关,而RCC2作为CPC的一员与凋亡抑制基因Survivin等共同参与细胞有丝分裂和纺锤体的组装,因此设想RCC2与Survivin共同参与有丝分裂,并通过影响细胞有丝分裂而调控细胞凋亡[9,11,16]。但具体通过何种通路调控尚需作进一步探索。
鉴于ER+乳腺癌细胞ER+的特征,用最佳浓度的雌激素(雌二醇=10-8mol/L)刺激MCF-7,细胞的增殖能力明显增强,凋亡能力明显减弱,提示雌激素能够影响ER+乳腺癌细胞的增殖和凋亡。为了探究雌激素是否通过RCC2影响ER+乳腺癌细胞生物学功能,笔者用最佳浓度的雌激素作用于MCF-7,发现MCF-7中RCC2的表达量随加入雌激素时间的增加而增加,说明雌激素可在MCF-7中调控RCC2,促进RCC2的表达。在抑制RCC2的基础上加入雌激素刺激MCF-7,观察2种因素共同作用于MCF-7时细胞增殖和凋亡的变化,结果提示雌二醇抑制细胞凋亡可能通过调控RCC2实现,而雌二醇促进细胞增殖并非通过调控RCC2实现。
综上所述,本研究结果显示了RCC2在ER+乳腺癌细胞中高表达,并影响ER+乳腺癌细胞凋亡,雌激素可能通过调控RCC2表达来抑制细胞凋亡从而促进ER+乳腺癌的癌变进程。
参考文献
[1] Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer Statistics,2017. CA Cancer J Clin,2017,67(1):7-30.
[2] 李天忠,段全红. 乳腺癌的早期诊断和治疗. 新医学,2011,42(11):759-760.
[3] Andreassen PR, Palmer DK, Wener MH, Margolis RL. Telophase disc: a new mammalian mitotic organelle that bisects telophase cells with a possible function in cytokinesis. J Cell Sci,1991,99 (3):523-534.
[4] Matsuo M, Nakada C, Tsukamoto Y, Noguchi T, Uchida T, Hijiya N, Matsuura K, Moriyama M. MiR-29c is downregulated in gastric carcinomas and regulates cell proliferation by targeting RCC2. Mol Cancer,2013,12:15.
[5] Bruun J, Kolberg M, Ahlquist TC, Royrvik EC, Nome T, Leithe E, Lind GE, Merok MA, Rognum TO, Bjorkoy G, Johansen T, Lindblom A, Sun XF, Svindland A, Liestol K, Nesbakken A, Skotheim RI, Lothe RA. Regulator of chromosome condensation 2 identifies high-risk patients within both major phenotypes of colorectal cancer. Clin Cancer Res, 2015,21(16):3759-3770.
[6] Rendleman J, Shang S, Dominianni C, Shields JF, Scanlon P, Adaniel C, Desrichard A, Ma M, Shapiro R, Berman R, Pavlick A, Polsky D, Shao Y, Osman I, Kirchhoff T. Melanoma risk loci as determinants of melanoma recurrence and survival. J Transl Med,2013,11:279.
[7] Pang B, Wu N, Guan R, Pang L, Li X, Li S, Tang L, Guo Y, Chen J, Sun D, Sun H, Dai J, Bai J, Ji G, Liu P, Liu A, Wang Q, Xiao S, Fu S, Jin Y. Overexpression of RCC2 enhances cell motility and promotes tumor metastasis in lung adenocarcinoma by inducing epithelial-mesenchymal transition. Clin Cancer Res,2017,23(18):5598-5610.
[8] 黄冬凌,叶长生,姚广裕. 106例青年乳腺癌患者的临床病理分析. 新医学,2013,44(3):162-165.
[9] Mollinari C, Reynaud C, Martineau-Thuillier S, Monier S, Kieffer S, Garin J, Andreassen PR, Boulet A, Goud B, Kleman JP, Margolis RL. The mammalian passenger protein TD-60 is an RCC1 family member with an essential role in prometaphase to metaphase progression. Dev Cell,2003,5(2):295-307.
[10] Stacey SN, Gudbjartsson DF, Sulem P, Bergthorsson JT, Kumar R, Thorleifsson G, Sigurdsson A, Jakobsdottir M, Sigurgeirsson B, Benediktsdottir KR, Thorisdottir K, Ragnarsson R, Scherer D, Rudnai P, Gurzau E, Koppova K, Hiom V, Botella-Estrada R, Soriano V, Juberías P, Grasa M, Carapeto FJ, Tabuenca P, Gilaberte Y, Gudmundsson J, Thorlacius S, Helgason A, Thorlacius T, Jonasdottir A, Blondal T, Gudjonsson SA, Jonsson GF, Saemundsdottir J, Kristjansson K, Bjornsdottir G, Sveinsdottir SG, Mouy M, Geller F, Nagore E, Mayordomo JI, Hansson J, Rafnar T, Kong A, Olafsson JH, Thorsteinsdottir U, Stefansson K. Common variants on 1p36 and 1q42 are associated with cutaneous basal cell carcinoma but not with melanoma or pigmentation traits. Nat Genet,2008,40(11):1313-1318.
[11] Papini D, Langemeyer L, Abad MA, Kerr A, Samejima I, Eyers PA, Jeyaprakash AA, Higgins JM, Barr FA, Earnshaw WC. TD-60 links RalA GTPase function to the CPC in mitosis. Nat Commun,2015,6:7678.
[12] Humphries JD, Byron A, Bass MD, Craig SE, Pinney JW, Knight D, Humphries MJ. Proteomic analysis of integrin-associated complexes identifies RCC2 as a dual regulator of Rac1 and Arf6. Sci Signal,2009,2(87):ra51.
[13] Li M, Wang J, Ng SS, Chan CY, He ML, Yu F, Lai L, Shi C, Chen Y, Yew DT, Kung HF, Lin MC. Adenosine diphosphate-ribosylation factor 6 is required for epidermal growth factor-induced glioblastoma cell proliferation. Cancer, 2009, 115(21):4959-4972.
[14] Xu XZ, Garcia MV, Li T Y, Khor LY, Gajapathy RS, Spittle C, Weed S, Lessin SR, Wu H. Cytoskeleton alterations in melanoma: aberrant expression of cortactin, an actin-binding adapter protein, correlates with melanocytic tumor progression. Mod Pathol,2010,23(2):187-196.
[15] Hashimoto S, Onodera Y, Hashimoto A, Tanaka M, Hamaguchi M, Yamada A, Sabe H. Requirement for Arf6 in breast cancer invasive activities. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004, 101(17):6647-6652.
[16] Gassmann R, Carvalho A, Henzing AJ, Ruchaud S, Hudson DF, Honda R, Nigg EA, Gerloff DL, Earnshaw WC. Borealin: a novel chromosomal passenger required for stability of the bipolar mitotic spindle. J Cell Biol,2004,166(2):179-191.
(收稿日期:2017-11-30)
(本文編辑:洪悦民)