艾素芬,黄 龙,丁剑午
(南昌大学第二附属医院肿瘤科,江西省肿瘤临床转化重点实验室,南昌 330006)
核糖核苷酸还原酶(ribonucleotide reductase,RR)是细胞内DNA合成的唯一限速酶,在核酸代谢过程中具有重要作用。RR能催化核苷二磷酸还原为脱氧核糖核苷二磷酸,这一步是脱氧核糖核苷三磷酸生物合成的限速步骤[1]。RR包括M1和M2 2个亚基,两者均为二聚体结构,RRM1具有与底物及变构效应物结合的部位,且含有直接供给电子的巯基,控制着底物的特异性及酶活性的开关,是肿瘤抑制基因。RRM2是一铁硫蛋白,通过酪氨酸残基的苯环形成特异的自由基而参加催化反应,既是负责底物转化的催化区,又是携带接触抑制区,是RR活性的主要调控元件[2]。
RRM2参与脱氧核糖核苷三磷酸(dNTP)的生物合成,是DNA合成及修复过程中一种不可缺少的关键酶。近年来,RRM2被逐渐发现在脑胶质母细胞瘤、胆管细胞癌、胰腺癌、乳腺癌、非小细胞肺癌、卵巢癌、膀胱癌、结直肠癌等多种恶性肿瘤中均过表达[3-6]。因此,对RRM2异常表达与恶性肿瘤的生存预后、增殖、化疗耐药及转移的影响等相关方面的研究,将为临床恶性肿瘤的诊断、治疗、预后提供新的理论依据。
Wang等[7]研究表明RRM2是HRV-E7的下游靶点,通过与E7-pRb相互作用及转导E2F至RRM2基因启动子结合区的方式,在转录水平上介导RRM2的表达上调。近年来,多项研究[8-11]证实RRM2在多种恶性肿瘤中异常表达。田华等[8]收集了原发性肝细胞癌组织197例,通过免疫组织化学法发现RRM2和RRM2B蛋白在肝细胞癌组织中表达上调,而且发现阳性染色的RRM2和RRM2B主要定位于肝癌细胞质中。闫大勇等[9]分别收集了非霍奇金淋巴瘤(NHL)及慢性淋巴结炎患者各42例,用Western印迹检测2组患者冰冻组织中RRM2蛋白的表达水平,最终结果证实2组患者RRM2表达均上调,且NHL患者明显高于慢性淋巴结炎患者。Li等[10]研究发现RRM2均高度表达在胶质母细胞瘤(GBM)细胞周期的G1晚期和S期的早期阶段。Itoi等[11]在不可切除的胰腺癌患者组织中运用qRT-PCR与免疫印迹技术检测到RRM2 mRNA和蛋白质的明显高表达。RRM2在恶性肿瘤的过表达对肿瘤生物学行为具有重要影响,如影响预后,耐药,增殖转移等。
RRM2过表达被发现与许多恶性肿瘤生存及不良预后相关。Zhang等[12]收集了159例20~85岁的ER阴性乳腺癌患者,设定RRM2的均值,分出低于中介平均值的RRM2低表达水平组及高于平均值的RRM2高表达水平组,汇总分析的危险比HR值分别为OS和PFS的2.19(95%CI1.28~3.49)和2.34(95%CI1.62~3.41),RRM2 mRNA水平与差的OS和PFS显着相关,对于PFS,RRM2可预测ER阴性和ER阳性乳腺癌患者的生存率,但对于ER阴性乳腺癌曲线变化更为显著。Su等[13]的研究发现,103例宫颈癌组织中,RRM2免疫反应阳性的癌组织5年生存率明显低于RRM2免疫反应阴性的癌组织(5年生存率:76.4% vs 95.5%;HR:7.94,95%CI:1.07~58.82;P=0.016)。另一项研究中,Huang等[14]采用免疫组化的方法检测了164例前列腺癌患者样本中RRM2表达水平,分层分析证实RRM2与低风险前列腺癌患者的预后不良相关,且RRM2的预后表现优于包括边缘/胶囊状态和T分期在内的病理因素,而在Gleason评分4~7分的患者中,复发风险与RRM2蛋白水平成正比。Itoi等[11]检测了35个不可切除的胰腺癌患者预处理活组织标本中的31个,18例患者(64.5%)RRM2水平低,13例患者(35.5%)RRM2水平高,截止值为0.1;RRM2水平低的患者的中位生存期为8.8个月,高水平患者的中位生存期为5.0个月(P<0.05);同时还发现在低RRM2表达组中,1例患者完全应答(CR),8例患者部分应答(PR),相反,在高RRM2表达组中,在1例患者中观察到PR,并且未观察到CR,高表达组与低表达组之间的总体应答率有显着差异(50.0%比7.7%,P<0.05)。RRM2过表达与ER阴性乳腺癌、前列腺癌、不可切除的胰腺癌等肿瘤预后差呈正相关。
化疗药物的耐药一直是部分肿瘤患者治疗失败的主要原因,目前普遍认为耐药是多基因共同参与与多种机制综合作用的结果,如何解决耐药问题,寻求更高的疗效一直是热点及难点问题。目前越来越多的证据[15-19]表明RRM2表达异常调节与某些肿瘤(胰腺癌,卵巢癌)化疗耐药有关。Nakono等[20]研究了在获得的人胰腺癌细胞株中,吉西他滨耐药性发生期间,与转运和代谢有关的RRM2表达的变化,实时荧光定量PCR检测显示,RRM2的表达水平在吉西他滨耐药性发展过程中逐渐增加。最近的一项研究[21]表明,Vasohibin 2通过JUN原癌基因依赖的转录激活RRM2来降低吉西他滨对胰腺癌患者化疗的敏感性。RNAi技术可有效抑制RRM2在卵巢癌中的转录和翻译水平,增加DDP耐药细胞的药物敏感性,并促进DDP诱导的卵巢癌耐药细胞凋亡,在一定程度上逆转DDP耐药性[22]。
核糖核苷酸还原酶作为DNA合成唯一的限速酶,对细胞的分裂、增殖及分化有着重要的调控作用。Wang等[7]的研究中利用小鼠异种移植模型证实RRM2通过ROS激活ERK1/2通路,促进宫颈癌细胞血管形成,提高微血管密度,促进肿瘤细胞的增殖。另一项研究则利用MTT及EdU检测技术表明过表达富集AT序列的特异性结合蛋白1(SATB1)后NHL(非霍奇金淋巴瘤)细胞生长增殖能力增加,而同时干扰RRM2使得NHL细胞生长增殖能力受到抑制[9]。Lu等[23]在使用微阵列分析和RT-PCR在转移性结直肠癌组织标本中观察到RRM2表达基本上调,同时RRM2过表达与分化增殖显着相关,临床组织标本还显示RRM2的表达水平可能与肿瘤分期有关。
远处转移是恶性肿瘤的最关键特征。有研究[24]表明,过表达的RRM2通过增强MMP-9的表达来增加胰腺癌的侵袭能力。Rasmussen等[25]研究表明RRM2通过影响上游的抑癌基因BRCA1形成BRCA1-RRM2轴,使得胶质母细胞瘤(GBM)细胞免受来自致癌基因及DNA损伤等内源性凋亡因子的干扰,从而使得胶质母细胞瘤侵袭转移。Li等[10]研究发现,RRM2与GBM细胞实验中,细胞划痕试验证实在24 h内,RRM2高表达使肿瘤细胞迁移率快,沉默RRM2抑制了GBM的迁移,此外,Transwell实验还表明,敲除RRM2显著抑制了胶质瘤细胞的侵袭,进一步的机制研究还发现沉默的RRM2伴随着MMP-2、MP-9和磷酸化p38的表达减少,而对于ERK1/2、JNK没有观察到大的变化,结果表明RRM2异常高表达通过增强MMP-2、MMP-9的表达,导致GBM迁移和侵袭性增加。大量的研究[26-29]亦表明RRM2调节其他恶性肿瘤转移。
恶性肿瘤的发生、发展及生长侵袭是一个相当复杂及多因素综合作用的结果。RRM2在脑胶质母细胞瘤、胆管细胞癌、胰腺癌、乳腺癌、非小细胞肺癌、卵巢癌、膀胱癌、结直肠癌等多种恶性肿瘤中过表达;RRM2异常表达对恶性肿瘤的生存预后、增殖、化疗耐药及转移均产生影响。RRM2从转录及翻译水平干扰化疗耐药细胞,可能与Jun原癌基因有关,但具体机制仍不明确[21]。Li等[10]研究发现RRM2通过介导P38MAPK信号通路促进恶性肿瘤的转移。然而最新的研究发现缺氧状态下RRM2将切换亚基来维持DNA的复制[30],关于RRM2是否与肿瘤的抗辐射及放疗敏感性有关,期待相关研究能进一步证实。