不动杆菌属中aidE基因编码高丝氨酸内酯酶

刘春妍，郭松，艾力·吐热克，张俊威，张力群

中国农业大学 植物病理系，北京 100193

·农业生物技术·

不动杆菌属中aidE基因编码高丝氨酸内酯酶

刘春妍*，郭松*，艾力·吐热克，张俊威，张力群

中国农业大学 植物病理系，北京 100193

群体感应(Quorum sensing，QS)是细菌在进化过程中形成的依赖于群体密度的细菌间交流方式。许多革兰氏阴性细菌以N-酰基高丝氨酸内酯(AHL)为信号分子，感应自身群体密度并调控致病基因表达。因此，淬灭AHLs信号分子可防治此类细菌引起的植物病害。本实验室前期已筛选得到了一株具有AHLs信号降解能力的不动杆菌菌株Acinetobactersp.77，本研究通过基因组文库筛选，自菌株77中克隆得到具有AHLs降解活性的基因aidE。该基因编码268个氨基酸。序列一致性比较发现aidE的氨基酸序列与吉伦伯不动杆菌Acinetobacter gyllenbergiiCIP110306中β-内酰胺酶一致性高达95%，但与已知的AHLs降解酶序列一致性较低，最高为缓黄分支杆菌Mycobacterium lentiflavum中AHL内酯酶AttM/AiiB家族蛋白(CQD23908.1)，一致性仅为33%。通过高压液相色谱(HPLC)分析AidE蛋白处理N-己酰基高丝氨酸内酯(C6-HSL)的反应产物，证明aidE为AHL内酯酶。序列比对研究发现，aidE基因在不动杆菌属中并不保守，其在菌株77基因组中的上下游的基因排列存在菌株水平的特异性，且aidE基因下游存在疑似 IS 插入序列，上述证据表明aidE基因有可能是通过水平转移进入Acinetobactersp.77基因组中，或其在基因组中的位置发生过重排。表达aidE的软腐果胶杆菌Z3-3中完全检测不到AHLs信号产生，且致病力明显降低。综上所述，aidE为新发现的AHL内酯酶。在防治依赖QS系统表达致病性的细菌病害中具有应用潜力。

群体感应，酰基高丝氨酸内酯，不动杆菌，aidE

群体感应(Quorum sensing，QS)是细菌间典型的群体密度依赖型交流方式。具有QS系统的细菌能够合成并向胞外分泌小分子信号。信号分子在胞外环境中积累并被细菌识别，用来检测自身群体密度。当细菌的群体密度达到一定阈值时，信号分子和相应受体蛋白结合，启动下游相关基因的表达[1]。

QS系统在革兰氏阴性细菌中广泛存在，植物病原细菌中绝大多数以N-酰基高丝氨酸内酯(AHL)为信号分子，调控致病性的表达，如：胡萝卜软腐果胶杆菌Pectobacterium carotovorum中植物细胞壁降解酶等毒力因子的表达[2]；根癌土壤杆菌Agrobacterium tumefaciens中Ti质粒的转移[3]；西瓜食酸菌Acidovorax citrulli的游动性和在甜瓜植株及果实上的致病力[4]；丁香假单胞菌Pseudomonas syringaepv.syringae在宿主植物上的定殖及致病性[5]等。因此，淬灭 AHL信号分子以破坏细菌QS调控功能是防治此类病害的可行策略。

目前已发现的AHLs信号降解酶包括内酯酶(AHL-lactonase)、酰基转移酶(AHL-acylase)和氧化还原酶(Oxidoreductases)三大类[6-8]。AHL内酯酶通过水解 AHLs的内酯键产生脂酰高丝氨酸，破坏信号分子结构。已报道的AHL内酯酶根据其蛋白结构及金属离子依赖性的差异可分为不同类群，包括以蜡样芽胞杆菌Bacillus cereus240B1中AiiA240B1为代表的金属-β-内酰胺类降解酶[9]，苍白杆菌Ochrobactriumsp.T63中 AidH[10]所属的α/β-水解酶家族降解酶，红串红球菌Rhodococcus erythropolis中磷酸三脂酶家族的QsdA[11]，根瘤菌Rhizobiumsp.strain NGR234中双烯内酯水解酶家族的DhlR[8]等。近年来利用宏基因组学方法的研究增加了AHLs降解酶的多样性。2008年Riaz等从宏基因组文库中筛选到编码AHL-内酯酶活性的qlcA基因。2009年Schipper等通过宏基因组学筛选到4个AHL-内酯酶：BpiB01、BpiB04、BpiB07和BpiB05，其中BpiB07与已知的内酯酶具有一致性，为双烯内酯水解酶家族蛋白，BpiB04为糖基水解酶家族蛋白，而BpiB01和BpiB05则与已报道的AHL-内酯酶没有明显的同源性[12-13]。表达aiiA基因的软腐果胶杆菌P.carotovorumAHLs产量明显减少，在马铃薯、白菜、茄子、胡萝卜和芹菜上造成的软腐症状明显减弱[9]。表达AiiA内酯酶的转基因植物马铃薯、烟草、拟南芥等提高了对软腐病菌的侵染抗性，植物不发病或发病时间延后[14-17]。

本实验室在新疆阿瓦提县植物根围土壤中筛选到了一株具有 AHLs信号分子降解能力的菌株77，经16S rRNA基因序列分析鉴定为不动杆菌属Acinetobacter细菌。本文通过基因组文库筛选和亚克隆分析，得到具有AHL信号降解功能的基因aidE，明确了AidE降解AHL信号的机制，并初步研究了其生物学及生物防治功能，为植物病害生防提供新的资源。

1 材料与方法

1.1 细菌菌株、质粒及生长条件

本实验中所用菌株和质粒分别列于表1。不动杆菌77、荧光假单胞菌2P24和软腐果胶杆菌Z3-3在LB(Luria-Bertani)培养基(蛋白胨10 g/L，酵母提取物5 g/L，NaCl5 g/L)中28℃培养；大肠杆菌DH5α、BL21及其衍生菌株在LB培养基中37℃培养；土壤杆菌 NTL4(pZLR4)在ABM 基本培养基(每100mL中含20×盐溶液5mL、20×缓冲液5mL、10%甘露醇2mL和无菌水88mL。其中20×盐溶液：NH4Cl20 g/L、KCl3 g/L、MgSO4·7H2O6 g/L、CaCl2·2H2O0.2 g/L、FeSO4·7H2O0.06 g/L，调节 pH 为7.2；20×缓冲液：NaH2PO423 g/L、K2HPO460 g/L，调节 pH为7.0；储存液分别高压灭菌保存)中28℃培养。抗生素使用终浓度分别为：氨苄青霉素(Ap)50μg/mL，卡那霉素(Km)50μg/mL，氯霉素(Cm)20μg/mL，庆大霉素(Gm)30μg/mL。5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-Gal)使用终浓度40μg/mL。

1.2 方法

1.2.1 DNA试验操作

细菌染色体及质粒DNA的提取、限制性内切酶酶切分析和PCR 参见分子克隆实验技术手册。核苷酸测序由北京三博远志生物技术有限责任公司完成。核苷酸及其编码的氨基酸序列通过NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)中的软件分析。

1.2.2 aidE基因的筛选与克隆

Acinetobactersp.77基因组文库的构建参照文献[22]。随机挑取菌株77基因组文库转化子，接种到180 µL液体LB培养基中，于28℃、140 r/min振荡培养12 h；随后加入15 µL(10 µmol/L)N-3-氧代辛酰基高丝氨酸内酯(C8-oxo-HSL)信号分子，混匀后置于摇床上140 r/min、28℃振荡培养6 h，分别用信号纯品及纯水作对照；取3 µL培养液滴于预先制备的报告菌平板上(见1.2.5)，选取阳性克隆并提取质粒，经过限制性内切酶酶切分析后确定目的片段，将其连接至质粒pMD18并测序(北京三博远志生物技术有限责任公司)。

1.2.3 aidE基因缺失突变体构建及AHL信号降解功能检测

根据aidE基因及侧翼序列的测序结果，设计两对引物77-a、77-b和77-c和77-d(表2)，分别以pQ30为模板，PCR扩增得到aidE基因上下两段侧翼序列。PCR扩增条件为：94℃变性5min；94℃变性40，55℃复性40，72℃延伸1min，循环数为35；72℃充分延伸10min。两条 PCR产物经相应限制性内切酶酶切后连接同一载体pSR47s，得到重组自杀载体pSR47ΔaidE(图1)。将 pSR47ΔaidE转化 DH5α(λ-pir)，

利用三亲交配将pSR47ΔaidE转入Acinetobactersp.77，筛选二次重组突变体，并用检测引物AidE-F、AidE-R(表2)进行PCR验证，最终得到aidE基因缺失菌株。为检测相关菌株AHL信号降解功能，利用Agrobacterium tumefaciensNTL4(pZLR4)信号检测系统，在野生型Acinetobactersp.77和aidE基因缺失突变体Acinetobactersp.77 ΔaidE发酵液中分别加入4μL100μmol/L的C8-oxo-HSL信号分子纯品共培养4 h，设置dd H2O处理的信号纯品作对照。

表1 菌株和质粒Table1 Strains and plasmids

表2 引物序列Table2 Primer sequences

图1 质粒pQ30(ORF2为aidE)功能片段的物理图谱及aidE基因的缺失结构Fig.1 Physical map of the functional fragment in pQ30(the ORF2 represents foraidE)and the structure ofaidEgene deletion mutant.

1.2.4 生长曲线的测定

软腐果胶杆菌Z3-3及其相应衍生菌接种于5mL的LB培养液中，28℃、140 r/min 水浴摇培至稳定生长期；按1∶1000(V∶V)的比例接于50mL的LB培养液中，28℃，130 r/min气浴摇培培养；培养8 h后开始取样，测定其在600 nm处的吸光值(OD600)，每3 h取样1次，重复3次。

1.2.5 AHLs信号检测

AHL信号检测平板的制备：将报告菌根癌土壤杆菌Agrobacterium tumefaciensNTL4(pZLR4)接种于含有30μg/mL庆大霉素(Gm)的液体ABM培养基中，28℃培养16–24 h后待用；100mL的ABM基本培养基冷却至50℃左右，加入5mLA.tumefaciensNTL4培养液、终浓度为30μg/mL的Gm 和40μg/mL的X-Gal，混匀后制备报告菌平板[18]。

AHL信号分子测定：取0.5mL软腐果胶杆菌Z3-3及其衍生菌培养液，加入等体积的乙酸乙酯充分混匀萃取信号分子，12000 r/min离心15min，吸取上清液，萃取3次。循环水式真空泵真空抽干，加入100μL甲醇溶解；取2μL上述所得信号提取液，加入400μLA.tumefaciensNTL4(pZLR4)培养液(OD600=0.8)，28℃、130 r/min培养4 h；12000 r/min离心1min，弃上清，加100μL dd H2O悬浮细胞；检测A.tumefaciensNTL4(pZLR4)中β-半乳糖苷酶活性[10]，以酶活强弱表示AHLs信号分子浓度高低。

1.2.6 致病性的检测

将软腐果胶杆菌Z3-3及其衍生菌接种于LB培养基，在28℃条件下130 r/min培养至OD600=1.0；萝卜和马铃薯清水洗净后晾干，用70%的酒精对表面进行消毒处理后切成厚度一致的组织切块。在培养皿中铺一层灭菌吸水纸保湿，喷洒无菌水后将组织切块置于中央，组织切块中央针刺接种5μL细菌培养液，28℃培养箱培养；大白菜去掉外层叶片，将内层大小一致的健康叶片置于塑料培养盒中(盒底部铺两层灭菌纱布)，表面消毒后针刺接种5μL细菌培养液于叶柄中央，盒子四角放置吸水棉球，28℃培养箱密封培养。方差分析应用DPS分析软件，95%置信区间。

1.2.7 AidE降解机制分析

通过Ni-NTA亲和层析和AKTA-Purifier(GE Healthcare)层析系统得到精细纯化的AidE蛋白。200μL精细纯化的AidE蛋白溶液(0.3 mg/mL)与30μL(0.05 mol/L)信号分子C6-HSL在1mL反应缓冲液(50mmol/L Tris-Cl，400mmol/L NaCl，pH7.0)中于37℃反应2 h；200μL二甲基亚砜(DMSO)和200μL1 mol/L NaOH 混合，加入30μL(0.05 mol/L)信号分子C6-HSL，37℃反应30min，利用NaOH溶液破坏AHLs信号分子的内酯环结构形成降解产物N-酰基高丝氨酸，作为产物对照；设不加信号分子的蛋白溶液及未处理的C6-HSL信号纯品作空白对照；上述反应溶液分别用等体积的乙酸乙酯萃取3次，取上清，真空抽干后用100μL甲醇溶解；用高压液相色谱(HPLC)分析反应产物。HPLC 使用 C18反向色谱柱(4.6mm×150mm；Agilent TC-18)，扫描波长210mm；进样体积5μL；流动相为：甲醇∶水(V/V)=40∶60，0.1%磷酸；流量：0.25mL/min。

1.2.8 aidE基因序列在不动杆菌中特异性分析

pQ30中aidE上下游基因位置关系与已知不动杆菌中基因的排列均不相同。为检测上述特异性基因排列关系是否是由于建库过程中Sau3AⅠ酶切后的片段拼接错误，设计引物pQ30-2335、pQ30-3556(表2)分别以 pQ30、菌株77基因组和单菌落为模板进行 PCR反应。PCR扩增条件为：94℃变性5min；94℃变性40 s，55℃复性40 s，72℃延伸1min，循环数为30；72℃充分延伸10min。

2 结果与分析

2.1 aidE基因的克隆与序列分析

Acinetobactersp.77分离自新疆阿瓦提县的植物根围土壤，能够降解AHLs信号分子。利用Agrobacterium tumefaciensNTL4(pZLR4)信号检测系统，通过对Acinetobactersp.77基因组文库的筛选，从2000个转化子中筛选到1个具有AHL信号降解功能的粘粒克隆 pF38。对 pF38进一步的EcoRⅠ亚克隆筛选得到具有AHLs信号降解功能的阳性克隆 pQ30，该质粒克隆了约8 kb的外源片段，该序列已提交至GenBank(登录号为MF074213)。

测序分析表明8 kb片段(图1)编码6个开放阅读框(ORF)。ORF1为编码490个氨基酸的琥珀酸半醛脱氢酶(Succinate-semialdehyde dehydrogenase)；ORF2为编码268个氨基酸的内酰胺酶家族蛋白(Beta-lactamase)；ORF3编码一个含有191个氨基酸的假定蛋白；ORF4、ORF5、ORF6编码的分别为含有575个氨基酸的转录调控因子(Transcriptional regulator)、含有331个氨基酸的苯酚羟化酶(Phenol hydroxylase)P1蛋白和酚-2-单氧酶(Phenol-2-monooxygenase)的部分序列，三者同为酚合成基因簇的组成部分。

用Hind Ⅲ对pQ30进一步亚克隆，得到包含约1.2 kb有信号降解功能片段的阳性克隆pCH6，序列分析表明，pCH6中仅含有一个完整的开放阅读框，即上述 ORF2。据此确定orf2即为编码AHL信号降解酶的基因，命名为aidE(Autoinducers degrading)。

aidE基因共807 bp，编码268个氨基酸，推测分子量为29.48 kDa。序列一致性比较发现，aidE的氨基酸序列与已知的AHLs降解酶的氨基酸序列一致性较低，最高为AttM/AiiB家族蛋白(Mycobacterium lentiflavum，CQD23908.1)，一致性仅为33%。然而该蛋白与β-内酰胺酶类家族蛋白高度一致，与Acinetobacter gyllenbergiiCIP110306中的β-内酰胺酶类家族蛋白(EPF70788.1)一致性高达95%，与恶臭假单胞菌Pseudomonas putida中的β-内酰胺酶类家族蛋白(KEX94407.1)一致性为93%，与海单胞菌Marinomonassp.MWYL1中的β-内酰胺酶类结构域蛋白(ABR69113.1)一致性为90%。AidE中具有β-内酰胺酶类蛋白的特征序列105-HLHFDHAG-112以及与金属水解酶特征序列一致的177-HTPGHOSL-184。将AidE与已报道的AHL内酯酶进行氨基酸序列比对(图2)，AidE与β-内酰胺酶蛋白家族类的AHL内酯酶一致性较高。

图2 aidE与已发表AHL内酯酶氨基酸序列的系统进化分析Fig.2 Phylogenetic analysis of theaidEand other published AHL-lactonases.The dendrogram was constructed after ClustalW alignment using Neighbor-Joining and and Kimura two-parameter methods subjected to1000 bootstrap trials with MEGA5.05.[9-11,12,13,22-40].

为进一步验证aidE基因是否为菌株77中唯一发挥信号降解功能的基因，本实验构建了aidE基因缺失471 bp片段的突变体(图3A)。实验结果发现，aidE基因缺失后，菌株77失去信号降解功能(图3 B)。由此可见，aidE基因的正常表达是菌株77具有信号降解能力的决定性因素。

图3 aidE基因缺失突变体的构建及其功能验证Fig.3 In-frame deletion of theaidEgene(A)and determining the AHL-inactivating function(B)of wild-typeAcinetobactersp.77(1)and theaidEgene deletion mutantAcinetobactersp.77 ΔaidE(2).M:marker; dd H2O as negative control(CK).

2.2 aidE蛋白降解机制解析

利用表达载体 pETAidE 表达并精细纯化得到融合的AidE-His6蛋白(图4)，分子量与预测结果相同，约30 kDa。用精细纯化的AidE蛋白处理信号分子C6-HSL，以NaOH处理C6-HSL作为对照[41]，通过高压液相色谱(HPLC)对反应产物进行检测分析。结果显示，在本实验条件下，信号分子 C6-HSL的保留时间(Retention time)为26.0min(图5 A)，C6-HSL 经 NaOH 处理的降解产物N-己酰基-高丝氨酸(C6-HS)保留时间为21.9min(图5 C)。用纯化的AidE蛋白与 C6-HSL信号分子反应后，出现保留时间为22.0min和25.9min的两种化合物(图5 D)。比对分析可知二者分别为 AidE蛋白作用于C6-HSL的降解产物C6-HS(图5 D)，与未反应的C6-HSL信号分子(图5 D)。通过降解产物分析可知，AidE为 AHL-内酯酶。AidE蛋白作用于AHLs信号分子的内酯键，形成降解产物C6-HS。

除C6-HSL信号外，AidE对C10-HSL、N-3-氧代己酰基高丝氨酸内酯(3-oxo-C6-HSL)、3-oxo-C8-HSL和提取自荧光假单胞2-79的N-羟基高丝氨酸内酯类信号分子混合物具有降解活性，表明其AHL降解活性没有明显的底物特异性(数据未显示)。

图4 aidE蛋白的表达与纯化Fig.4 Expression and purification ofaidE.1:E.coliBL21(pET-22b)(+);2:E.coliBL21(pETAidE)without induction;3:E.coliBL21(pETAidE)after induction by IPTG for4 h in37℃;4: purified AidE protein; M:marker.

2.3 aidE基因表达对软腐果胶杆菌Z3-3生物学性状及致病性影响

胡萝卜软腐欧文氏菌 Z3-3能够引起胡萝卜、白菜、马铃薯等多种作物的软腐病。其毒力因子植物细胞壁降解酶等的合成受到QS系统严格调控[42]。将携带有aidE基因的载体pB77E导入菌株 Z3-3中，检测其生长趋势、AHLs信号的产生以及对致病性的影响。

结果显示，表达aidE基因的菌株 Z3-3(pB77E)的生长趋势与野生型菌株 Z3-3及空载体对照菌株 Z3-3(pBBR1MCS-2)在各个阶段均无明显差异(图6 A)，说明aidE基因的表达对菌株 Z3-3的生长没有影响。菌株 Z3-3和 Z3-3(pBBR1MCS-2)在培养前期信号产量较大，培养18–21 h时信号产量达到最大值，而后随着培养时间的增加信号产量逐步降低，而在菌株 Z3-3(pB77E)中始终未检测到信号产生(图6 B)。说明aidE基因的表达能够完全降解菌株Z3-3合成的信号分子。以上菌株针刺接种白萝卜、马铃薯和大白菜，结果显示接种菌株 Z3-3和 Z3-3(pBBR1MCS-2)后能够在上述植物组织上形成明显的软腐症状，而aidE基因的表达能显著降低病原菌Z3-3的致病能力(图6 C，表3)。综上，aidE基因能够通过降解细菌产生的AHLs信号分子影响其群体感应系统，从而抑制群体感应系统调控的致病性。

图5 HPLC分析AidE降解C6-HSL机制Fig.5 HPLC analysis of the AidE-degraded product ofN-hexanoyl-L-homoserine lactone(C6-HSL).(A)Reaction buffer containing C6-HSL.(B)Reaction buffer containing pure AidE protein.(C)C6-HSL degraded by NaOH.(D)C6-HSL degraded by AidE, the solid and dotted arrows represent for C6-HSL and its degraded productN-hexanoyl-L-homoserine(C6-HS), respectively.

图6 aidE对软腐果胶杆菌Z3-3生长、AHL产量和致病性的影响Fig.6 Effect ofaidEon bacterial growth(A), extracellular AHLs accumulation(B)and pathogenicity(C)inP.carotovorumsubsp.carotovorumZ3-3.

表3 果胶杆菌对植物组织致病性分析Table3 Pathogenicity assay ofP.carotovorumsubsp.carotovorumstrains on plant tissues

2.4 aidE基因序列在不动杆菌中特异性分析

通过对AidE氨基酸序列一致性比对发现，aidE基因在不动杆菌属中并不保守。在已知不动杆菌基因组中，仅在Acinetobacter gyllenbergii和鲍氏不动杆菌A.baumannii144107中找到一致性较高的编码基因。与其他属细菌对比发现，P.putida与Marinomonassp.MWYL1中也含有一致性较高的aidE同源基因。

对pQ30中aidE上下游基因结构进行一致性比对分析发现，上游琥珀酸半醛脱氢酶(ORF1)基因在不动杆菌属中不保守，虽然在A.gyllenbergii中发现该基因的存在，但不动杆菌其他种中并未发现该基因。下游假定蛋白(ORF3)基因在不动杆菌属中不保守，只在A.baumannii144107和A.gyllenbergii种的一些菌株中发现该基因。下游转录调控因子(ORF4)、苯酚羟化P1蛋白(ORF5)和酚-2-单氧酶(ORF6)组成的酚合成基因簇在不动杆菌中却是保守存在的。虽然在A.gyllenbergii和A.baumannii144107中未发现酚合成基因簇相关基因，但在不动杆菌其他种中，酚合成基因簇下游基因高度保守，上游基因在种间存在差异，但均未发现AidE一致性高的蛋白及其他β-内酰胺酶类蛋白。

pQ30中 AidE上下游基因位置关系与已知不动杆菌中基因的排列均不相同。为了检测上述特异性基因排列关系是否是由于文库构建过程中Sau3AⅠ酶切后拼接错误，利用引物pQ30-2335和pQ30-3556分别以pQ30、菌株77基因组和单菌落为模板进行 PCR反应。结果显示，pQ30、菌株77基因组和单菌落中均能扩增出相同条带(图7B)，说明aidE基因在菌株77基因组中的上下游的基因排列与pQ30中的亚克隆片段分析结果相同，菌株77基因组中存在一段与其他已知不动杆菌不同的特异性序列。

图7 aidE基因的特异性分析Fig.7 The specificity analysis of theaidEgene.A: Localization of theaidEand its neighboring genes in genomes of different bacterial species.B: The specificity detection of the fragment which has the function of AHL signal degradation in pQ30.C: Nucleotide consistency of the suspected IS sequence in pQ30 with its homologous inA.baumannii1461402, insertion sequence IS17 TnpA(tnpA)gene(EU850412.1)inA.baumanniiand insertion sequence IS17 putative transposase gene(U95013.1)inA.haemolyticus.

对 pQ30中的亚克隆片段核苷酸序列进一步分析发现，在aidE基因(pQ30：1624-2431)下游919 bp(pQ30-3350)处存在一段107 bp的疑似IS插入序列(图7C)，与A.baumannii中的IS插入序列基因ISAba9 TnpA(tnpA)、IS17 TnpA(tnpA)(EU850412.1)和溶血不动杆菌(A.haemolyticus)中的IS插入序列 IS17假定转座酶基因(U95013.1)一致性高达97%。在A.baumannii1461402中，在酚合成基因簇下游同样发现了两段与pQ30中疑似IS插入序列一致性高达97%的同向重复序列，二者间隔约20 kb，且一致性高的片段附近基因编码转座酶家族蛋白增变(Mutator)家族转座酶蛋白(EXB34237.1)等。而P.putidaH8234中AidE一致性较高蛋白上下游存在多个转座酶基因，推测在P.putidaH8234基因组中此位置可能来源于基因的水平转移。aidE基因在不动杆菌属中的不保守存在，可能是水平转移或基因组重排的结果。

3 讨论

病原细菌的群体感应系统调控多种与致病性密切相关的生物学功能。应用AHL信号降解酶防治植物细菌病害的策略主要包括两个方面：1)构建转基因植物，降解病原菌的AHL，从而抑制病原菌侵染[43]；2)以AHL降解细菌为生防菌防治植物病害[8,44]。

序列相似性比较发现，aidE的氨基酸序列与已知AHLs降解酶的氨基酸序列相似性较低(小于33%)，但与金属依赖性水解酶(β-内酰胺类家族蛋白)相似度高达95%，并具有β-内酰胺类蛋白的特征序列105-HLHFDHAG-112以及与金属水解酶特征序列相似的177-HTPGHTPGH-185[45]。2004年Wang等研究表明，AiiA为典型的Zn2+依赖型降解酶，能够降解10种不同侧链长度和C3取代基不同的信号分子[46]。AidH是本实验室前期研究得到的具有 AHLs降解活性的Mn2+依赖性内酯酶，对多种类型的AHLs信号分子具有降解活性；与之相比，AidE对于金属离子的依赖性较低，外源添加 Zn2+和 Mg2+，其降解活性增强幅度较小(数据未显示)。然而，表达aidE基因的胡萝卜软腐欧文氏菌株Z3-3的致病性明显下降，表明利用AidE降解信号分子进而降低病原菌致病性具有潜在的应用价值。

aidE基因不是不动杆菌属中的保守基因，aidE基因的上下游的基因排列与已测序不动杆菌均不相同。aidE基因下游保守的酚合成基因簇序列比对表明，在波西米亚不动杆菌Acinetobacter bohemicus、抗辐射不动杆菌A.radioresistens和A.baumannii中该基因簇上游基因在不动杆菌中保守性较低，可能在进化过程中较为活跃，在不同属细菌间水平转移概率较大。此外在P.putidaH8234中与aidE一致性高的蛋白编码基因上下游存在多个转座酶基因，也说明基因有可能是通过水平转移的方式进入P.putidaH8234中的。与此同时，在aidE基因下游919 bp(pQ30-3350)处发现的一段107 bp的IS插入序列，虽然在其基因附近未发现明确的转座酶基因，但不排除该区域基因发生过水平转移的可能性。信号降解酶基因通过基因水平转移的方式进入细菌基因组并非无迹可寻，在Acinetobactersp.Ooi2中发现的AHL酰基转移酶AmiE上游存在转座酶家族蛋白，表明该基因可能通过水平转移而来[47]。综上，aidE基因可能是通过水平转移进入菌株77基因组中，或是aidE基因在基因组中的位置发生过重排。菌株77自身并未检测到AHL信号产生，外源获得具有信号降解功能的基因可能有利于增强其在环境中的生存优势。

针对群体感应系统的植物细菌性病害防治是近些年的研究热点。对群体感应淬灭的研究近年来更倾向于小分子抑制物的筛选和利用，但AHLs信号降解酶仍具有开发和应用潜力。AidE的发现丰富了信号降解酶的来源和种类，为生物防治提供了新资源。

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(本文责编 郝丽芳)

AidEencodes anN-acyl homoserine lactonase inAcinetobacter

Chunyan Liu*, Song Guo*, Ali Turak, Junwei Zhang, and Liqun Zhang
Department of Plant Pathology,China Agricultural University,Beijing100193,China

Quorum sensing(QS)is a cell-cell communication mechanism that allows bacterial populations to coordinategene expression in response to cell density.N-acylhomoserine lactones(AHL)are used as quorum-sensing signal molecules by many Gram negative bacteria.Acinetobactersp.77, an AHL-degrading bacterium, was isolated in our previous work.The geneaidEfor AHL inactivation was cloned in this study by screening a genomic DNA library.The deduced protein AidE is268 amino acids in length and shares a high identity(95%)with the beta-lactamase family protein inAcinetobacter gyllenbergiiCIP110306, but low identities with known AHL-degrading enzymes.HPLC analysis of the AidE-degraded C6-HSL products revealed that AidE functioned as an AHL lactonase.Sequences alignment suggested that theaidEgene is not conserved inAcinetobacterspecies, flanking sequences ofaidEand their arrangement are specific inAcinetobactersp.77 genome, and some IS insertion sequences were found downstream of theaidEgene.These evidences indicated that theaidEgene might be foreign DNA taken up via horizontal gene transferring or had changed its relative location due to the genome rear-arrangement.Expression of theaidEgene inPectobacterium carotovorumsubsp.carotovorumZ3-3 significantly reduced its AHL production as well as the pathogenicity on host plants, indicating that AidE was able to effectively quench quorum sensing-dependent functions in bacteria.In conclusion,aidEis a newfound AHL-lactonase with a potential for suppression of bacterial infections.

quorum sensing(QS),N-acylhomoserine lactones(AHL),Acinetobactersp.,aidE

April12,2017;Accepted:July14,2017

Liqun Zhang.Tel: +86-10-62731464; E-mail: zhanglq@cau.edu.cn

刘春妍, 郭松, 艾力·吐热克, 等.不动杆菌属中aidE基因编码高丝氨酸内酯酶.生物工程学报,2017,33(9):1625–1639.

Liu CY, Guo S, Turak A, et al.AidEencodes anN-acyl homoserine lactonase inAcinetobacter. Chin J Biotech,2017,33(9):1625–1639.

Supported by:National Natural Science Foundation of China(Nos.31272082,31572045), National Basic Research Program of China(973 Program)(No.2015CB150605), National Key Research and Development Program(No.2017YFD0201108).

*These authors contribute equally to this study.

国家自然科学基金(Nos.31272082,31572045)，国家重点基础研究发展计划(973计划)(No.2015CB150605)，国家重点研发计划重点专项(No.2017YFD0201108)资助。

张力群 2001年毕业于日本神户大学，获得博士学位。现任中国农业大学植物保护学院植物病理系教授，博士生导师。主要研究方向为植物病害生物防治和植物相关细菌分子遗传，主要研究领域包括假单胞菌Pseudomonas抗生素的合成与调控、抗逆信号传导和病害生物防治机制；植物病原细菌Ⅲ型分泌系统和群体感应系统抑制剂的筛选和抑制机制。主持国家自然科学基金课题7项，发表 SCI论文20余篇。