抗结核药物性肝损伤大鼠肝组织TUG1、NEAT1、Gas5的表达观察

2016-12-27 03:09田慎谦王悦牛琛李玉红朱凌妍任琦郑国颖冯福民
山东医药 2016年39期
关键词:异烟肼药物性灌胃

田慎谦,王悦,牛琛,李玉红,朱凌妍,任琦,郑国颖,冯福民

(华北理工大学公共卫生学院,河北省煤矿卫生与安全重点实验室, 河北唐山 063000)



抗结核药物性肝损伤大鼠肝组织TUG1、NEAT1、Gas5的表达观察

田慎谦,王悦,牛琛,李玉红,朱凌妍,任琦,郑国颖,冯福民

(华北理工大学公共卫生学院,河北省煤矿卫生与安全重点实验室, 河北唐山 063000)

目的 观察抗结核药物性肝损伤(ADLI)大鼠肝组织长链非编码RNA(lncRNA)TUG1、NEAT1、Gas5的表达变化。方法 56只SPF级SD大鼠随机分为A、B、C、D、E、F组和对照组各8只,A、B、C、D、E、F组大鼠予异烟肼55 mg/kg灌胃,1 次/d,分别于给药3、7、10、14、21、28 d时处死,对照组大鼠予等容积蒸馏水灌胃,于灌胃28 d处死。采用荧光定量PCR法检测各组肝组织TUG1、NEAT1和Gas5,并检测TUG1上游分子SP1及下游分子HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA。结果 各实验组和对照组中NEAT1、Gas5比较,P均>0.05。A、B、C、D、F组TUG1相对表达量与对照组比较,P均<0.05。B、C组SP1 mRNA的相对表达量与对照组比较,P均<0.05;A、C、D组HOXB7 mRNA相对表达量与对照组比较,P均<0.05;E、F组KLF2 mRNA相对表达量与对照组比较,P均<0.05;C、D、E、F组Bcl-2 mRNA的相对表达量与对照组比较,P均<0.05;B、C、E组Caspase-3 mRNA的相对表达量与对照组比较,P均<0.05。结论 ADLI大鼠肝组织TUG1低表达,其可能通过调控HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA表达参与ADLI的发生、发展。

抗结核药物性肝损伤;长链非编码RNA;TUG1;NEAT1;Gas5

异烟肼是目前常用的一线抗结核药物,但使用不当其易导致抗结核药物性肝损伤(ADLI)[1],最终导致结核化疗方案改变、中断,患者出现肝衰竭等不良反应,严重影响结核的治疗及患者预后。目前ADLI的具体发病机制尚不明确[2]。长链非编码RNA(lncRNA)在基因印记、细胞周期调控、转录的抑制和激活等各种生物生理活动起重要作用[3]。研究[4]发现lncRNA中的 TUG1、NEAT1、Gas5在人、大鼠、小鼠肝组织中均可表达,且在肝癌的细胞增殖、细胞凋亡、侵袭、迁移中起重要作用。病毒性肝炎、药物性肝损伤等肝脏疾病中往往也伴随着异常的细胞凋亡和增殖,但TUG1、NEAT1、Gas5 与ADLI的关系尚不明确。2014年9月~2016年3月,我们观察异烟肼导致的ADLI大鼠肝脏组织中TUG1、NEAT1和Gas5变化。现将结果报告如下。

1 材料与方法

1.1 实验动物、试剂及仪器 56只SPF级SD大鼠[北京华阜康生物科技公司,动物许可证号:SCXK(京)2009-0004],8~9周龄,体质量258~365 g,雌雄各半。异烟肼(沈阳红旗制药有限公司,批号:1404022),TRIpure Reagent(北京百泰克生物技术有限公司,批号:0020141224),PrimeScriptTMRT Master Mix试剂盒(大连TaKaRa公司),SYBR®Premix Ex TaqTMⅡ试剂盒(大连TaKaRa公司),MDA、SOD试剂盒(南京建成生物工程研究所)。HITACHI 7600-020全自动生化分析仪(日本日立公司);Heraeus高速冷冻离心机(德国Thermo Scientific公司);C1000PCR扩增仪(美国BIO-RAD公司);荧光定量PCR仪(美国Applied Biosystems公司)。

1.2 大鼠分组及ADLI模型制备方法 56只大鼠随机分为A、B、C、D、E、F组和对照组各8只,A、B、C、D、E、F组每天异烟肼55 mg/kg灌胃,1次/d,对照组予等容积蒸馏水灌胃,制作ADLI模型。A、B、C、D、E、F组分别于给药第3、7、10、14、21、28天时处死大鼠,对照组于第28 天处死大鼠,取肝组织50~100 mg备用。

1.3 各组大鼠肝组织TUG1、NEAT1、Gas5检测 采用荧光定量PCR法。取大鼠肝组织,常规TRIzol法提取总RNA,反转录和实时荧光定量PCR严格按照试剂盒说明书进行操作。以GAPDH为内参,用 2-ΔΔCt来表示各RNA的相对表达量。引物均由上海生工合成,其序列如下:TUG1上游引物5′-TACGTCCCGTGCCTCCTGAT-3′,下游引物5′-AGGGCTGTGCTGAATCTGGG-3′; NEAT1上游引物5′-ACTGCTTGACACCCCATGCC-3′,下游引物5′-CGGTGATGACCACGGCTACC-3′;Gas5上游引物5′-AGCCAGAAAATGGGATGGTGGA-3′,下游引物5′-TGTGGAGCTTGCCATGCCTT-3′; GAPDH上游引物5′-CAATGACCCCTTCATTGACC-3′,下游引物5′-GACAAGCTTCCCGTTCTCAG-3′。反转录反应条件:37 ℃15 min,85 ℃5 s,4 ℃1 min;定量PCR反应条件:95 ℃30 s,95 ℃5 s,60 ℃30 s,40个循环。

1.4 TUG1上游分子SP1及下游分子HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 的mRNA检测 采用荧光定量PCR法检测方法“1.3”中存在统计学差异的TUG1的上游分子SP1及其下游分子HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3、p15、p16、p27和p57 mRNA表达,所有操作均同“1.3”。引物序列如下。SP1上游引物5′-TGCAGCAGAATTGAGTCACC-3′,下游引物5′-CACAACATACTGCCCACCAG-3′;HOXB7上游引物5′-CACTACAATCGCTACCTGACTCG-3′,下游引物5′-TTCCTCCTCTTCCTCCTCGT-3′;KLF2上游引物5′-TCGCACCTAAAGGCGCATC-3′,下游引物5′-TAGTGGCGGGTAAGCTCGTC-3′;Bcl-2上游引物5′-GGGATGCCTTTGTGGAACTAT-3′,下游引物5′-AGGTATGCACCCAGAGTGATG-3′;Caspase-3上游引物5′-GGTATTGAGACAGACAGTGG-3′,下游引物5′-CATGGGATCTGTTTCTTTGC-3′。反转录反应条件:37 ℃15 min,85 ℃5 s,4 ℃1 min;定量PCR反应条件:95 ℃30 s ,95 ℃5 s,60 ℃30 s,40个循环。用 2-ΔΔCt来表示各mRNA相对表达量。

1.5 统计学方法 采用SPSS17.0统计软件。计量资料表示,组间比较采用单因素方差分析,相关性分析采用Pearson相关分析。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组大鼠肝组织TUG1、NEAT1及Gas5表达比较 各组大鼠肝组织TUG1、NEAT1及Gas5表达比较见表1。

表1 各组大鼠肝组织TUG1、NEAT1和Gas5表达比较

2.2 各组大鼠肝组织SP1、HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA相对表达量 各组SP1、HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA相对表达量比较见表2。

表2 各组大鼠肝组织SP1、HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA相对表达量比较

3 讨论

异烟肼毒性代谢产物主要通过与肝细胞大分子物质共价结合[5]引起肝细胞坏死和脂肪变性导致ADLI,除此之外过氧化应激反应、人体乙酰化速率、以及药物代谢酶等均与ADLI有关。最新研究发现表观遗传学在ADLI的发生、发展中起重要作用。

NEAT1、Gas5 和TUG1均具有重要的调控功能。Gas5可通过负调控microRNA-21的表达,促进肝癌细胞的侵袭和转移[4],还可通过调控波形蛋白的表达促进细胞增殖[5]。NEAT1表达改变影响肝癌的发生和转移,其高表达与MDTH、NM23和MALAT1有关[6]。TUG1能够影响细胞增殖和凋亡,在很多疾病中都发挥着重要的调控功能,如肝癌[7]、胃癌[8]、肺癌[9]、骨肉瘤[10]、动脉粥样硬化[11]以及低温导致的肝细胞损伤[12]等。本研究中NEAT1、Gas5在对照组和各实验组大鼠肝组织中的表达差异无统计学意义,说明二者在异烟肼所致的ADLI中作用较弱。而TUG1在ADLI大鼠中表达呈下降趋势,表明TUG1在ADLI的发生和发展中起重要作用。为进一步探讨TUG1在ADLI发生、发展中的作用机制,本研究对TUG1的上游分子SP1和下游分子HOXB7、KLF2、Caspase-3、Bcl-2 mRNA进行了检测和分析。转录因子SP1是TUG1的上游分子,它可以通过TUG1启动子区域的5个结合位点直接与TUG1结合,进而调控TUG1的转录[7]。本研究结果显示,与对照组相比,实验组SP1 mRNA与TUG1表达水平均呈下降趋势,在下降至最低点后都略有回升,二者变化趋势一致且SP1属于TUG1上游分子,说明在异烟肼引发肝损伤过程中,SP1可能调控了TUG1的表达,其表达量降低进一步导致了TUG1表达下降。

许多lncRNA能够将蛋白家族以多梳抑制复合物2(PRC2)招募到特定的基因位点[13],使该基因启动子区发生改变,进而抑制其表达。TUG1也是其中一员,它可以通过与PRC2结合来调控其下游分子p15、p16、p27、p57、HOXB7和KLF2基因的表达,从而影响细胞的增殖和凋亡[7,9,14,15]。

HOXB7参与调控多种信号通路,在癌细胞的增殖、分化、侵袭、迁移、黏附等活动中都扮演着重要的角色[16]。本研究中,随ADLI时间延长,HOXB7 mRNA的相对表达量先升高后降低,而TUG1的相对表达量在给药第10天降至最低,给药第14天有所回升。虽然HOXB7 mRNA变化趋势与lncRNA TUG1相反,但HOXB7 mRNA发生变化的转折点早于TUG1,这说明HOXB7可能只是部分受TUG1的调控。

KLF2为锌指Kruppel样转录因子家族中的一员,肝癌细胞中过表达KLF2可导致G0/G1期阻滞[8],诱导细胞凋亡[17]。此外,KLF2还可调控c-Myc基因的表达[18],c-Myc广泛参与细胞的增殖、凋亡、细胞周期等进程[19]。由此可见,KLF2在细胞的增殖和凋亡过程中同样发挥着重要的作用。KLF2 mRNA的表达总体呈上升趋势,给药第21天升高,与TUG1总体变化趋势相反,但其改变滞后于TUG1,提示TUG1可能通过抑制KLF2的表达调控ADLI的发生、发展。研究[15]发现,在小鼠胰岛瘤细胞中干扰TUG1表达,细胞凋亡蛋白Caspase-3表达升高,而抗凋亡因子Bcl-2表达降低,细胞凋亡率升高。本研究结果显示,各实验组大鼠肝细胞Bcl-2表达下降,与TUG1变化一致,而Caspase-3表达逐渐升高,表明TUG1与肝细胞凋亡有关。但TUG1究竟如何影响Caspase-3和Bcl-2基因的表达还有待进一步研究。

综上所述,ADLI大鼠肝组织TUG1低表达,其可能通过调控HOXB7、KLF2、Bcl-2、Caspase-3 mRNA表达参与ADLI的发生、发展,但其具体作用机制尚有待于进一步研究。

[1] Schaberg T, Rebhan K, Lode H. Risk factors for side-effects of isoniazid, rifampin and pyrazinomide in patients hospitalized for pulmonary tuberculosis[J]. Eur Respir J, 1996,75(9):2026-2030.

[2] Miyazawa S, Matsuoka S, Hamana S, et al. Isoniazid-induced acute liver failure during preventive therapy for latent tuberculosis infection[J].Intern Med, 2015,54(6):591-595.

[3] Villegas VE, Zaphiropoulos PG. Neighboring gene regulation by antisense long non-coding RNAs[J]. Int J Mol Sci, 2015,16(2):3251-3266.

[4] Hu L, Ye H, Huang G, et al. Long noncoding RNA GAS5 suppresses the migration and invasion of hepatocellular carcinoma cells via miR-21[J].Tumour Biol, 2016,37(2):2691-2702.

[5] Chang L, Li C, Lan T, et al. Decreased expression of long non-coding RNA GAS5 indicates a poor prognosis and promotes cell proliferation and invasion in hepatocellular carcinoma by regulating vimentin[J]. Mol Med Rep, 2016,13(2):1541-1550.

[6] Guo S, Chen W, Luo Y, et al. Clinical implication of long non-coding RNA NEAT1 expression in hepatocellular carcinoma patients[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015,8(5):5395-5402.

[7] Huang MD, Chen WM, Qi FZ, et al. Long non-coding RNA TUG1 is up-regulated in hepatocellular carcinoma and promotes cell growth and apoptosis by epigenetically silencing of KLF2[J]. Molecular Cancer, 2015,14:165.

[8] Ji TT, Huang X, Jin J, et al. Inhibition of long non-coding RNA TUG1 on gastric cancer cell transference and invasion through regulating and controlling the expression of miR-144/c-Met axis[J]. Asian Pac J Trop Med, 2016,9(5):508-512.

[9] Zhang EB, Yin DD, Sun M, et al. p53-regulated long non-coding RNA TUG1 affects cell proliferation in human non-small cell lung cancer, partly through epigenetically regulating HOXB7 expression[J]. Cell Death Dis, 2014,5(5):1243.

[10] Ma B, Li M, Zhang L, et al. Upregulation of long non-coding RNA TUG1 correlates with poor prognosis and disease status in osteosarcoma[J]. Tumour Biol, 2016,37(4):4445-4455.

[11] Chen C, Cheng G, Yang X, et al. Tanshinol suppresses endothelial cells apoptosis in mice with atherosclerosis via lncRNA TUG1 up-regulating the expression of miR-26a[J]. Am J Transl Res, 2016,8(7):2981-2991.

[12] Su S, Liu J, He K, et al. Overexpression of the long noncoding RNA TUG1 protects against cold-induced injury of mouse livers by inhibiting apoptosis and inflammation[J]. FEBS J, 2016,283(7):1261-1274.

[13] Zhao J, Sun BK, Erwin JA, et al.Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome[J]. Science, 2008,322(5902):750-756.

[14] Zhang E, He X, Yin D. Increased expression of long noncoding RNA TUG1 predicts a poor prognosis of gastric cancer and regulates cell proliferation by epigenetically silencing of p57[J]. Cell Death Dis, 2016,7(2):2109.

[15] Yin DD, Zhang EB, Liang H, et al. Downregulation of lncRNA TUG1 Affects Apoptosis and Insulin Secretion in Mouse Pancreatic β Cells[J].Cell Physiol Biochem, 2015,35(5):1892-1904.

[16] 贺松其,姚飞龙,吕志平,等.Wnt/β-catenin信号通路在肝癌转移侵袭中的调控机制[J].中国实验方剂学杂志,2011,16(7):35-37.

[17] Huang MD, Chen WM, Qi FZ, et al. Long non-coding RNA ANRIL is upregulated in hepatocellular carcinoma and regulates cell apoptosis by epigenetic silencing of KLF2[J].J Hematol Oncol, 2015,8(1):50.

[18] Zou K, Lu X, Ye K, et al. Kruppel-like factor 2 promotes cell proliferation in hepatocellular carcinoma through up-regulation of c-myc[J]. Cancer Biol Ther, 2016,17(1):20-26.

[19] 白阳, 叶健,王敬泽.c-Myc功能及其下游靶点[J].细胞生物学杂志,2007,37(29):191-196.

唐山市重点实验室基金资助项目(08150201A-1-8)。

冯福民(E-mail: fm_feng@sina.com)

10.3969/j.issn.1002-266X.2016.39.009

R575

A

1002-266X(2016)39-0030-03

2016-05-25)

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