刘小柳 邹立新 雷 坚 张曙辉 吴剑雄.湖南师范大学附属长沙医院血液肿瘤科,湖南长沙 40006;.中南大学湘雅医学院附属肿瘤医院病理科,湖南长沙 40006
中高危MDS与MDS/MPN患者骨髓单个核细胞凋亡及临床特征比较
刘小柳1邹立新1雷坚2张曙辉1吴剑雄1
1.湖南师范大学附属长沙医院血液肿瘤科,湖南长沙410006;
2.中南大学湘雅医学院附属肿瘤医院病理科,湖南长沙410006
目的 比较中高危骨髓增生异常综合征(MDS)与骨髓增生异常/骨髓增殖性肿瘤(MDS/MPN)骨髓单个核细胞(BMNCs)凋亡情况及其与患者临床特征的关系。方法 收集2013年7月~2015年7月在湖南师范大学附属长沙医院血液科就诊的8例中高危MDS及5例MDS/MPN患者的骨髓标本及临床资料,AO/EB荧光双重染色及Caspase-3活性检测BMNCs凋亡,相关性分析细胞凋亡与患者临床特征的关系。结果 凋亡在中高危MDS和MDS/MPN患者BMNCs中的发生率分别为(10.25±1.77)%、(6.90±1.66)%,前者高于后者(P=0.032);Caspase-3检测显示,中高危MDS患者BMNCs中Caspase-3活性为(0.18±0.04)%,显著高于MDS/MPN组[(0.07±0.02)%],差异有统计学意义 (P=0.028);相关性分析显示,中高危MDS患者BMNCs凋亡率与骨髓原始细胞比例呈负相关(r=-0.81,P=0.015),而MDS/MPN凋亡率与骨髓原始细胞比例呈正相关(r=0.90,P=0.037)。结论BMNCs凋亡率、Caspase-3活性在中高危MDS和MDS/MPN中明显不同,且BMNCs凋亡和骨髓原始细胞比例相关。
骨髓增生异常综合征;骨髓增生异常/骨髓增殖性肿瘤;细胞凋亡
最新WHO将慢性髓系恶性肿瘤分为三大类:骨髓增生异常综合征(myelodysplastic syndrome,MDS)、骨髓增殖性肿瘤(myeloproliferative neoplasms,MPN)、骨髓增生异常/骨髓增殖性肿瘤(MDS/MPN)。MDS是一组起源于造血干细胞的异质性恶性克隆性疾病[1],主要特征是骨髓无效造血和具有高危向急性髓系白血病演变的风险[2]。而MDS/MPN是一组临床表现、实验室检查与MDS和MPN重叠的髓系恶性肿瘤,包括慢性粒单核细胞白血病(CMML)、非典型慢性髓系白血病(aCML,BCR-ABL阴性)、青少年粒单核细胞白血病(JMML)及MDS/MPN无法分类型(MDS/MPN-U)四种类型[3]。
尽管MDS作为一种血液系统疾病已被医学界认可多年,但其发生的病理机制及疾病进展的分子基础仍不清楚,其中,细胞凋亡失调在MDS发生发展中发挥一定作用[4]。而MDS/MPN作为一种兼有病态造血和细胞增殖性质的髓系肿瘤,其病理机制目前更是知之甚少[5],细胞凋亡在MDS/MPN患者中的作用鲜有报道。作为两种异质性疾病,患者骨髓细胞凋亡情况如何,尚需进一步研究确定。
为比较中高危MDS及MDS/MPN患者中的细胞凋亡发生情况,本研究以中高危MDS患者及MDS/ MPN患者的骨髓单个核细胞(BMNCs)为研究材料,分别采用细胞形态学凋亡细胞观察、Caspase-3活性检测方法比较两组患者细胞凋亡情况;同时观察了患者的临床及实验室检查特征,对其细胞凋亡和临床表型的关系进行了研究。
1.1一般资料
本研究收集2013年7月~2015年7月在湖南师范大学附属长沙医院血液科就诊的8例中高危MDS 及5例MDS/MPN患者资料,所有病例均为初治,获得患者知情同意。患者临床特点见表1。8例MDS患者,依据患者临床特征、外周血象、骨髓细胞形态学、骨髓组织病理学、细胞及分子遗传学分析,诊断依据2006年维也纳诊断标准[6],分型依据2008WHO标准[7],危险度分组按照最新修订的IPSS-R标准[8]。其中,难治性贫血伴原始细胞增多-1型(RAEB-1)3例,难治性贫血伴原始细胞增多-2型(RAEB-2)5例;中危组2例,高危组3例,极高危组3例。5例MDS/MPN患者,诊断分型依据2008WHO标准[3],其中,CMML 2例,MDS/ MPN-U 3例。
1.2方法
采用Ficoll-Hypaque密度梯度离心法对肝素抗凝骨髓标本进行分离,分离出的骨髓单个核细胞制成细胞悬液后分别用于细胞凋亡检测及Caspase-3凋亡蛋白酶活性检测。
1.2.1吖啶橙(AO)/溴化乙锭(EB)荧光染料双重染色法检测细胞凋亡在荧光显微镜下,正常细胞核染色质着绿色,结构正常;早期凋亡细胞核染色质着绿色,但核呈固缩或串珠状;晚期凋亡细胞核染色质着橘红色,呈固缩状或斑块状;坏死细胞为核染色质呈红色,核结构正常[9]。镜下每个样本计数200个细胞,计算凋亡百分率。凋亡百分率=(凋亡细胞数/200)×100%。
1.2.2Caspase-3活性检测 根据R&D公司提供的Caspase-3活性检测试剂盒说明书进行。收集细胞,加入裂解液,冰上裂解10~20min,4℃12 000 r/min离心1 min,取5μL上清用Bradford法进行蛋白定量,即采用分光光度计测定OD595光密度值。另外45μL加50μL 2×反应缓冲液及5μL Caspase-3反应底物,于96孔板中 37℃避光孵育1~2 h,采用酶标仪测定OD405光密度值。按下述公式计算:Caspase-3相对活性=OD405/OD595。
表1 MDS和MDS/MPN患者的临床特征
1.3统计学方法
采用SPSS 13.0统计学软件进行数据分析,计量资料数据用均数±标准差(±s)表示,两组间比较采用t检验;若方差不齐,则用Mann-Whitney U非参数检验进行统计学分析;数值变量的相关性分析采用Spearman相关分析。选择双向检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
2.1中高危MDS与MDS/MPN患者BMNCs凋亡水平比较
中高危MDS组BMNCs凋亡率为(10.25±1.77)%,MDS/MPN组为(6.90±1.66)%,中高危MDS组BMNCs凋亡率高于MDS/MPN组(P=0.032)。见图1。 2.2中高危MDS与MDS/MPN患者BMNCs中Caspase-3活性比较
图1 MDS和MDS/MPN患者BMNCs凋亡率比较
MDS组BMNCs中Caspase-3相对活性为(0.18± 0.04)%,MDS/MPN组Caspase-3相对活性为(0.07± 0.02)%,MDS组BMNCs中Caspase-3相对活性高于MDS/MPN组(P=0.028)。见图2。
图2 MDS和MDS/MPN患者Caspase-3活性比较
2.3细胞凋亡与患者临床特征的相关性分析
中高危MDS患者BMNCs凋亡率与骨髓原始细胞比例呈负相关 (r=-0.81,P=0.015)(图3A),而MDS/MPN患者BMNCs凋亡率与骨髓原始细胞比例呈正相关(r=0.90,P=0.037)(图3B)。但未发现患者骨髓细胞凋亡与其染色体核型异常、外周血细胞减少程度指标相关。
图3 BMNCs凋亡与骨髓原始细胞比例的相关性分析
染色体异常为MDS重要特点之一[10],本研究MDS病例中也发现-7、+8、5q-核型异常;并且在MDS/MPN患者中也发现-7、+8、+9核型异常,但具体哪些基因发挥关键作用尚不明确,这些基因异常是疾病的始因还是伴随表现也尚不清楚。尽管MDS和MDS/MPN被认为是独立疾病,但患者表现出重叠的染色体异常[11],提示两种疾病可能存在一部分共有的发病机制。
作为一种具有增殖性质的血液系统疾病,虽有研究发现在MDS/MPN中有部分CMML和MDS/MPN-U患者存在JAK2突变[3],但与MPN不同的是,大多数MDS/MPN的增殖与RAS/MAPK信号通路相关。本研究收集的5例MDS/MPN中,发现1例患者出现JAK2突变阳性。
目前发现细胞凋亡失调、造血微环境异常、免疫失调、表观调节异常、染色体改变等因素参与MDS的发生发展[12-14],其中,低危MDS表现为骨髓祖细胞凋亡的增加、进展期MDS骨髓细胞凋亡减少而增殖增加[15],提示随着疾病进展,克隆细胞获得逃避凋亡信号的能力。因MDS/MPN患者整体预后较差[16],作为比较本研究选取中高危MDS患者,通过凋亡研究发现其凋亡率约10.25%,符合大宗研究趋势[17],并且在中高危MDS患者中随着骨髓原始细胞比例的增加,细胞凋亡减少。
Caspase-3在细胞凋亡中发挥重要作用,是外源性(死亡受体)和内源性(线粒体和内质网)凋亡通路的共同凋亡蛋白酶[18],激活后通过抑制多聚(ADP-核糖)聚合酶(PARP)的活性,进而活化核酸内切酶,裂解核小体间的DNA,导致细胞凋亡[19]。本研究从形态学观察和凋亡蛋白酶生物活性研究两方面发现MDS患者骨髓单个核细胞凋亡发生率高于MDS/MPN患者,提示MDS/MPN是不同于MDS的另外一种血液系统克隆性疾病。
同时通过分析患者骨髓单个核细胞凋亡与患者临床特征的关系发现,MDS患者中骨髓单个核细胞凋亡率与骨髓原始细胞比例呈反比,但MDS/MPN患者中BMNCs凋亡率却与骨髓原始细胞比例呈正相关,考虑可能与以下因素相关:①MDS/MPN是独立于MDS的一种髓系恶性肿瘤,细胞生物学活性不同于MDS克隆;②本研究病例数有限,尚需进一步进行临床病例收集及研究。但本研究未发现患者细胞凋亡与其染色体核型异常、外周血细胞减少程度相关。
本研究从细胞分子水平初步比较了MDS与MDS/MPN两类慢性髓系肿瘤中BMNCs的凋亡情况,并探讨了骨髓细胞凋亡与患者临床特征的相关性,为MDS及MDS/MPN的病理机制研究提供相关实验依据。但MDS与MDS/MPN两类疾病发病机制中存在共同及不同之处,细胞凋亡与增殖对MDS及MDS/ MPN患者的临床表型、治疗反应和预后的影响等问题仍需要大量临床及实验室研究来解决。
[1]Pang WW,Pluvinage JV,Price EA,et al.Hematopoietic stem cell and progenitor cell mechanisms in myelodysplastic syndromes[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013,110(8):3011-3016.
[2]Tefferi A,Vardiman JW.Myelodysplastic syndromes[J].N Engl J Med,2009,361(19):1872-1885.
[3]Orazi A,Germing U.The myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms:myeloproliferative diseases with dysplastic features[J].Leukemia,2008,22(7):1308-1319.
[4]Pülhorn H,Herrmann M,Harms H,et al.Apoptotic cells and clonally expanded cytotoxic T cells in bone marrow trephines of patients with myelodysplastic syndrome[J]. Histopathology,2012,61(2):200-211.
[5]Zoi K,Cross NC.Molecular pathogenesis of atypical CML,CMML and MDS/MPN-unclassifiable[J].Int JHematol,2015,101(3):229-342.
[6]Valent P,Horny HP,Bennett JM,etal.Definitions and standards in the diagnosis and treatment of the myelodysplastic syndromes:consensus statements and report from a working conference[J].Leuk Res,2007,31(6):727-736.
[7]Brunning RD,Orazi A,Germing U,et al.Myelodysplastic syndroms/neoplasms,overview[C]//Swerdlow SH,Campo E,Harris NL,et al.WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues.Edited by(IARC,Lyon),2008:88-93.
[8]Greenberg PL,Tuechler H,Schanz J,et al.Revised international prognostic scoring system for myelodysplastic syndromes[J].Blood,2012,120(12):2454-2465.
[9]Piazza GA,Rahm AL,Krutzsch M,et al.Antineoplastic drugs sulindac sulfide and sulfone inhibit cell growth by inducing apoptosis[J].Cancer Res,1995,55(14):3110-3116.
[10]Greenberg PL.Molecularand genetic features of myelodysplasticsyndromes[J].Int J Lab Hematol,2012,34(3):215-222.
[11]Wu H,Bian S,Chu J,etal.Characteristics of the four subtypes of myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms[J]. Exp Ther Med,2013,5(5):1332-1338.
[12]Tormo M,Marugán I,Calabuig M.Myelodysplastic syndromes:an update onmolecular pathology[J].Clin Transl Oncol,2010,12(10):652-661.
[13]Karlic H,Herrmann H,Varga F,et al.The role of epigenetics in the regulation of apoptosis in myelodysplastic syndromes and acute myeloid leukemia[J].Crit Rev Oncol Hematol,2014,90(1):1-16.
[14]LiW,You Y,Zou P,et al.The different immunoregulatory functions of mesenchymal stem cells in patients with low-risk or high-risk myelodysplastic syndromes[J]. PLoSOne,2012,7(9):e45675.
[15]Xu F,He Q,Li X,et al.Rigosertib as a selective antitumor agent can amelioratemultiple dysregulated signaling transduction pathways in high-grademyelodysplastic syndrome[J].Sci Rep,2014,4:7310.
[16]Li B,Gale RP,Xiao Z.Molecular genetics of chronic neutrophilic leukemia,chronicmyelomonocytic leukemia and atypical chronic myeloid leukemia[J].J Hematol Oncol,2014,7:93.
[17]杨力,徐瑞容,姜胜华,等.40例骨髓增生异常综合征染色体核型及凋亡[J].江苏医药,2010,36(10):1135-1137.
[18]Shi J,Jiang Q,Ding X,et al.The ER stress-mediated mitochondrial apoptotic pathway and MAPKs modulate tachypacing-induced apoptosis in HL-1 atrialmyocytes [J].PLoSOne,2015,10(2):e0117567.
[19]Tian H,Zhang DF,Zhang BF,et al.Melanoma differentiation associated gene-7/interleukin-24 induces caspase-3 denitrosylation to facilitate the activation of cancer cell apoptosis[J].J Interferon Cytokine Res,2015,35(3):157-167.
Comparison of apoptosis of bone marrow mononuclear cells and clinical features in patients with advanced MDS and MDS/MPN
LIU Xiaoliu1ZOU Lixin1LEIJian2ZHANG Shuhui1WU Jianxiong1
1.Department of Hematology,Changsha Hospital Affiliated to Hu'nan Normal University,Hu'nan Province,Changsha 410006,China;2.Department of Pathology,the Affiliated Tumor Hospital,Xiangya School of Medicine,Central South University,Hu'nan Province,Changsha410006,China
Objective To compare the apoptosis of bone marrow mononuclear cells (BMNCs)in myelodysplastic syndrome(MDS)and myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms(MDS/MPN),and analyze the relationship between apoptosis and clinical characteristics of patients.Methods Bone marrow specimens and clinical data of 8 cases of intermediate/high risk MDS and 5 cases of MDS/MPN patients were collected from July 2013 to July 2015 in Department of Hematology,Changsha Hospital Affiliated to Hu'nan Normal University.Acridine orange/ethidium bromide fluorescence staining and Caspase-3 activity assay were used to detect apoptosis of BMNCs,and the correlation between apoptosis and clinical characteristics of patients was analyzed.Results The apoptotic rate in intermediate/high risk MDSand MDS/MPN patients were(10.25±1.77)%,(6.90±1.66)%respectively,the former was higher than the latter(P= 0.032).Caspase-3 activity assay showed that the Caspase-3 activity of intermediate/high risk MDSBMNCs was(0.18± 0.04)%,significantly higher than that of the MDS/MPN group[(0.07±0.02)%],with statistically significant difference (P=0.028).Correlation analysis showed that negative correlation was found between BMNCs apoptosis and bone marrow blast cell percentage in intermediate/high risk MDS patients(r=-0.81,P=0.015),but BMNCs apoptotic rate and the proportion of bone marrow blast cells was positively correlated in MDS/MPN patients(r=0.90,P=0.037).Conclusion The apoptotic rate and Caspase-3 activity are significantly different in intermediate/high risk MDS and MDS/MPN,and there is a correlation between apoptotic rate and bone marrow blasts.
Myelodysplastic syndrome;Myelodysplastic/myeloproliferative neoplasms;Apoptosis
R551.3
A
1673-7210(2016)01(b)-0004-04
2015-10-11本文编辑:程铭)
国家自然科学基金资助项目(81500141)。
刘小柳(1983.1-),女,博士;研究方向:恶性血液病的分子机制。