汪宇婴,冯春颜
(广东省深圳市龙华新区人民医院检验科 518109)
·临床研究·
幽门螺杆菌感染对特发性血小板减少性紫癜患者外周血CD4+CD25+T调节细胞的影响*
汪宇婴,冯春颜
(广东省深圳市龙华新区人民医院检验科518109)
目的探讨幽门螺杆菌(HP)感染对特发性血小板减少性紫癜(ITP)患者CD4+CD25+T调节细胞的影响,进一步揭示ITP的发病机制,为临床诊断、治疗与预防提供重要的理论依据。方法2013年1月至2014年12月门诊及住院收治的ITP患者33例纳入ITP组,HP阴性13例,HP阳性30例。另选取健康体检者40例作为对照组,其中HP阴性23例,HP阳性17例;均测定血清CD4+CD25+T调节细胞的浓度。结果ITP组HP阳性率明显高于对照组,差异有统计学意义。对照组HP阴性者与对照组HP阳性者CD4+CD25+T调节细胞的浓度比较,差异有统计学意义(P<0.05)。对照组HP阴性者、阳性者分别与ITP 组HP阴性者、阳性者比较,差异有统计学意义(P<0.05)。ITP组HP阴性者与HP阳性者比较,差异无统计学意义(P>0.05)。结论HP感染与ITP的发病有一定关系,健康人群HP感染可增加CD4+CD25+T调节细胞的浓度;与健康人相比,ITP患者CD4+CD25+T调节细胞的浓度降低;而HP感染ITP对CD4+CD25+T调节细胞没有影响。
幽门螺杆菌;特发性血小板减少性紫癜;CD4+CD25+T调节细胞
特发性血小板减少性紫癜(ITP)是一种获得性特异性自身免疫性疾病,以骨髓巨核细胞发育成熟障碍,血小板生存时间缩短,数量减少,产生血小板膜糖蛋白特异性自身抗体,并伴有广泛皮肤黏膜及内脏出血为特征。是临床最常见的一种血小板减少性疾病。近年来有学者从基因方面对ITP病例和健康人群进行研究,例如Rs17101655位点T→G多态性的基因型和等位基因频率分布[1],CD86基因启动子-3479 A/C位点单核苷酸多态性与ITP遗传易感性[2],但都暂时未发现两者有差异。ITP的发病机制迄今尚未完全阐明,但已有研究表明自身免疫性疾病的易感性与CD4+CD25+T调节细胞及幽门螺杆菌(HP)感染有关。有研究表明ITP患者行HP根除治疗后,患者血小板计数升高,提示HP感染可能与ITP的发生有一定的关系[3]。另外,ITP患者外周血CD4+CD25+T调节细胞的数量明显降低[4-5]。HP的感染可以干扰免疫系统,使CD4+CD25+T调节细胞数量增加。HP感染的ITP患者CD4+CD25+T调节细胞的情况如何尚不清楚。能不能用CD4+CD25+T调节细胞的浓度变化来判断ITP患者病情的变化和转归,让患者免受取骨髓的痛苦?本研究旨在讨论HP感染对ITP患者CD4+CD25+T调节细胞的影响,进一步揭示ITP的发病机制,为临床预防、诊断和治疗提供重要的理论依据。
1资料与方法
1.1一般资料深圳市龙华新区人民医院血液科2013年1月至2014年12月门诊及住院收治的ITP患者33例纳入ITP组,诊断均符合《血液病诊断及治疗标准》[6],其中男14例,女19例;年龄19~69岁,平均(39.0±6.5)岁;所有患者均为初次入院患者,既往未使用激素类药物,排除其他自身免疫性疾病。另选取健康体检者40例作为对照组,其中男17例,女23例;年龄20~65岁,平均(41.1±5.9)岁;无糖尿病、肿瘤及其他免疫性疾病病史,近2个月内未服用过激素及免疫抑制剂,2周内未患感染性疾病。
1.2仪器与试剂异硫氰酸荧光素(FITC)标记的鼠抗人CD4单克隆抗体(CD4-FITC),藻红蛋白(PE)标记的鼠抗人CD25单克隆抗体(CD-25PE);相应同型对照抗体为FITC标记的小鼠IgG1、PE标记的小鼠IgG1,试剂为美国Beckman coulter公司产品,美国BD公司FACSC calibur流式细胞仪。
1.3检测方法(1)HP阳性的确定:采用14C-尿素呼气试验(UBT)确定,14C-UBT≥100 dpm/mmol即诊断为阳性。CD4+CD25+T调节细胞浓度的测定。(2)CD4+CD25+T调节细胞的浓度测定:抽取2 mL静脉血,采用乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝。取流式专用试管2支分别标记对照管和测定管。对照管中加入CD4+-FITC和IgG-PE各20 μL。测定管中加入CD4+-FITC和CD25+-PE各20 μL。再分别加入标本100 μL,混匀,室温避光20 min。两管分别加溶血素50 μL,混匀,室温避光10 min,加蒸馏水500 μL,混匀,室温避光10 min。加磷酸缓冲盐溶液(PBS)3 mL。1 500 r/min离心5 min,弃上清,留沉淀,混悬。采用Cellquest软件进行上样,并用该软件自动统计结果。
2结果
2.1两组HP阳性率比较ITP组HP阳性率明显高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。
表1 两组HP阳性率比较
注:与对照组比较,*P<0.05。
2.2两组CD4+CD25+T调节细胞的浓度比较对照组HP阴性者与对照组HP阳性者CD4+CD25+T调节细胞的浓度比较,差异有统计学意义(P<0.05)。对照组HP阴性者、阳性者分别与ITP组HP阴性者、阳性者比较,差异有统计学意义(P<0.05)。ITP组HP阴性者与HP阳性者比较,差异无统计学意义(P>0.05)。
表2 两组CD4+CD25+T调节细胞的浓度比较
注:与ITP组HP阳性者比较,*P<0.05;与ITP组HP阳性者比较,#P<0.05;与ITP组阴性者比较,△P<0.05。
3讨论
ITP发病较隐匿,国内外一直缺乏较为准确的临床流行病学资料。随着对ITP发病机制不断深入研究,目前一般认为免疫因素介导占主要原因。自1998年Gsabarrini等首先提出了HP感染与ITP的发病有关,目前国内外已有许多研究,提示HP感染与ITP的发生有一定的关系[7]。CD4+CD25+T调节细胞是维持机体免疫耐受的重要调控者,在自身免疫性疾病中起重要作用。CD4+CD25+T调节细胞是一种表达白细胞介素-2(IL-2)受体α链(CD25)的CD4+T细胞。CD4+CD25+T调节细胞具有低反应性和免疫抑制的特点。低反应性是指体外很难繁殖和扩增;免疫抑制主要指其具有抑制CD4+和CD8+细胞活化与增殖的能力。Zahran等[8]与Aboul等[9]研究发现,无论是急性还是慢性ITP患者外周血CD4+CD25+T调节细胞数量都是减少的。CD4+CD25+T调节细胞活化后分泌大量的IL-10、肿瘤坏死因子(TGF)-β等抑制性细胞因子,其功能通过这些抑制性细胞因子来实现。因此,推测可能由于ITP患者外周血中CD4+CD25+T辅助细胞数量减少,有效的免疫抑制作用降低,导致自身反应性T细胞激活增多、凋亡减少,促进了血小板的破坏。
CD4+CD25+T调节细胞在HP逃避宿主免疫清除中也起一定作用,Lundgren等[10]发现HP感染者胃和十二指肠黏膜CD4+CD25+T调节细胞高于未感染者,并且它抑制胃黏膜对HP的免疫反应,使HP的感染持续存在。而国内王雪梅等[11]的研究表明HP感染可增加CD4+CD25+T调节细胞的浓度。ITP患者外周血CD4+CD25+T调节细胞的浓度是下降的;HP感染者CD4+CD25+T调节细胞的浓度是升高的;HP感染与ITP的发生有一定的关系。但本研究分析显示HP感染对ITP患者CD4+CD25+T调节细胞浓度无影响,这有可能是统计例数太少所致。希望有更多的学者进一步研究HP感染对ITP患者CD4+CD25+T调节细胞的影响。未来将加大研究例数,观察能否用CD4+CD25+T调节细胞的浓度变化来判断ITP患者病情的变化和转归。为ITP的发病机制、临床诊断、治疗与预防提供重要的理论依据。
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2016-01-12修回日期:2016-03-22)
深圳市龙华新区科技局资助项目(2013027)。
10.3969/j.issn.1673-4130.2016.12.032
A
1673-4130(2016)12-1678-03