术中自体血回吸收后不同温度下保存对红细胞无氧代谢的影响

2016-06-14 06:47史晓萍李国辉
重庆医学 2016年8期
关键词:红细胞温度

史晓萍,李国辉,徐 涛,王 庚

(北京积水潭医院麻醉科 100035)



术中自体血回吸收后不同温度下保存对红细胞无氧代谢的影响

史晓萍,李国辉,徐涛,王庚

(北京积水潭医院麻醉科100035)

[摘要]目的对比术中回吸收自体血在室温(23 ℃)和低温(4 ℃)下保存对红细胞无氧代谢的影响。方法随机选取接受骨科手术患者40例,术中应用自体血回吸收,回吸收后的自体血分别在室温下(n=20)和低温下(n=20)保存4 h,在0 h(T0)、2 h(T2)、4 h(T4)时抽取2 mL自体血样本检测乳酸(Lac)、pH、动脉血氧分压(PaO2)。结果两组乳酸水平随时间的变化逐渐升高,T2和T4均高于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05);两组pH随时间的变化逐渐降低,T2和T4均低于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05);两组内PaO2随时间的变化逐渐降低,T2和T4均低于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05)。结论自体血回吸收后的红细胞放置4 h无氧代谢仍可进行,室温与低温条件下保存对其的影响无差异。

[关键词]红细胞;无氧代谢;自体血;温度

自体血回吸收可以有效回收术中出血,及时补充患者术中丢失的红细胞,增加组织氧供,维持血流动力学稳定[1],与输注异体血相比,还可以减少异体输血所引发的发热、过敏、传染病等并发症[2]。有研究表明,血液在低温保存期间仍进行缓慢的代谢,释放的乳酸和二氧化碳等可以使血液的pH值降低[3]。但自体血回吸收后的红细胞悬液在室温(23 ℃)与低温(4 ℃)条件下放置对红细胞无氧代谢的影响未见报道,本试验收集一定数量的回吸收自体血在室温和低温下放置4 h,观察自体血中乳酸(Lac)、动脉血氧分压(PaO2)、pH的变化,为临床更有效管理自体血回输提供依据。

1资料与方法

1.1一般资料随机选取本院手术室接受骨科手术患者40例,术中均使用自体血回吸收,所用自体血回吸收机为Cell Saver 5+型(美国血液公司),具体操作为:先制备肝素抗凝(浓度50 IU/mL)的生理盐水1 000 mL作为抗凝液,在自体血回吸收前先向回吸收罐中注入抗凝液100 mL,然后回吸收手术野出血,抗凝液与回吸收血液按照体积比1∶5的比例混合吸入回吸收罐中(负压吸引压力为150 mm Hg),每15分钟轻轻摇动回吸收罐使抗凝液与血液充分混合。在手术结束前进行手术切口缝合时开始进行自体血离心、洗涤,具体操作由自体血回吸收机按照固定程序全自动完成,收集回吸收红细胞悬液于输血袋中储存。

表1 两组患者一般情况及术中回吸收血量比较±s)

表2 两组间乳酸、pH、PaO2比较

*:P<0.01,组内与T0比较。

1.2标本放置与检测指标40例回吸收的红细胞悬液随机分为两组,即常温组(n=20)与低温组(n=20)。两组红细胞悬液储血袋分别在手术室中(23 ℃)和低温冰箱(4 ℃)放置4 h,在放置0 h(T0)、2 h(T2)、4 h(T4)时抽取2 mL自体血样本,用Premier 3000型全自动血气分析仪(实验仪器公司,美国)进行检测,检测指标包括:乳酸、pH、PaO2。

2结果

患者一般情况及自体血回吸收量比较差异无统计学意义(P>0.05),结果见表1。两组乳酸随时间的变化逐渐升高,T2和T4均高于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05);两组pH随时间的变化逐渐降低,T2和T4均低于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05);两组PaO2随时间的变化逐渐降低,T2和T4均低于T0(P<0.01),组间比较差异无统计学意义(P>0.05),结果见表2。

3讨论

红细胞功能为携氧与供氧,是机体内重要的血细胞[4]。红细胞结构简单,无线粒体,不能进行有氧代谢,仅能进行无氧糖酵解代谢提供自身能量并且产生乳酸,无氧代谢是红细胞生理功能的重要特征之一,即无氧代谢正常进行,红细胞才能发挥功能[5]。

术中自体血回吸收可以有效回吸收手术中的出血,回输患者后可以及时补充红细胞,增加组织氧供,维持器官功能稳定。加上近年来,血源日益紧张,使得对自体血回收、回输技术更加重视,并在临床中广泛应用[6]。以前有研究表明自体血回吸收后对红细胞形态学结构无明显影响,红细胞生理功能稳定,提示自体血回吸收是一种安全、有效的输血方法[7]。血液经离心、清洗可以清除93%以上的炎性因子、组织碎片、被破坏的细胞基质及抗凝剂等,衰老或变性的红细胞在处理过程中会发生溶血而被清除[8]。回吸收血中含有高浓度的2,3二磷酸甘油酸明显优于库存异体血[9]。自体血回吸收过程中,红细胞经过滤过、离心、洗涤后最终形成红细胞悬液,回输时机一般由麻醉师及护理人员共同决定,临床上并无严格的时间限定标准,对于保存的温度,目前也无统一的标准。有研究指出环境温度对红细胞有一定破坏力[10]。笔者认为由于自体血回吸收过程中为无菌操作,所以可以在室温下放置一定时间,待需要时再回输患者,但低温保存是否有益则需要实验验证。红细胞变形率在室温23 ℃和低温4 ℃保存6 h无明显差异[11]。本试验结果提示:在室温与低温下保存,红细胞无氧代谢并无差别,乳酸变化相同,又由于乳酸在机体内主要来源为肌肉组织和红细胞,所以在回吸收的红细胞悬液中乳酸来源仅能是红细胞,这就说明自体血中产生的乳酸量无差别,显示外界保存温度对红细胞无氧代谢并无差异。乳酸产生量增加,中和部分碱性物质,所以相应pH减小,但仍是碱性。试验中笔者也同时检测了PaO2变化,随放置时间延长,PaO2相应下降,但到4 h后仍大于150 mm Hg,自体血中氧气含量仍然充足。以上结果提示,自体血回吸收后在储血袋中可以放置4 h后再回输患者,室温与低温下保存均未对红细胞无氧代谢产生影响,红细胞原有生理功能回输后仍能发挥作用。但本试验仅局限于对红细胞无氧代谢的观察,对于回吸收自体血中其他生理生化指标的变化观察则未进行,在以后的研究中还需要进行更多方面的观察,这样才能更好地完善对术中自体血回输的管理。

总之,自体血回吸收后的红细胞放置4 h无氧代谢仍可进行,室温与低温条件下保存对其影响无差异。

参考文献

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[9]黄长顺.围术期血液保护[M].杭州:浙江大学出版社,2007:125-163.

[10]Schönberger JP,Van Oeveren W,Bredée JJ,et al.Systemic blood activation during and after autotransfusion[J].Ann Thorac Surg,1994,57(5):1256-1262.

[11]李国振,袁莉,刘陕岭,等.自体血贮存在不同温度时红细胞形态的变化[J].中国组织工程研究,2014,18(2):205-210.

doi:·经验交流·10.3969/j.issn.1671-8348.2016.08.025

作者简介:史晓萍(1976-),学士,主管护师,主要从事血液保护方面的研究。

[中图分类号]R446

[文献标识码]B

[文章编号]1671-8348(2016)08-1079-03

(收稿日期:2015-09-22修回日期:2015-11-05)

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