患兔流行性腹胀病家兔肠道菌群结构的ERIC-PCR指纹图谱分析

胡 波，范志宇，王 芳，魏后军，宋艳华，仇汝龙，刘 星，徐为中，薛家宾

(江苏省农业科学院兽医研究所/农业部兽用生物制品工程技术重点实验室/国家兽用生物制品工程技术研究中心，江苏南京 210014)



患兔流行性腹胀病家兔肠道菌群结构的ERIC-PCR指纹图谱分析

胡 波，范志宇，王 芳*，魏后军，宋艳华，仇汝龙，刘 星，徐为中，薛家宾

(江苏省农业科学院兽医研究所/农业部兽用生物制品工程技术重点实验室/国家兽用生物制品工程技术研究中心，江苏南京 210014)

兔流行性腹胀病是2004年春以来我国发生的由特定病原菌引起的家兔传染性疾病，具有一定的传染性和区域流行性，但其病原未知[1]。目前在我国江苏、山东等省份仍有该病的发生和流行。病兔主要表现为腹部臌胀、有胶冻样黏液排泄物及盲肠阻塞。从患病兔消化道中分离出的单一细菌不能复制该疾病的典型病理特征[1-2]。该病的临床症状及病理变化与法国Licois等[3]报道的兔流行性肠病十分相似，有学者认为其可能为同一种病[4]。断奶仔兔至4月龄兔的发病率为50%～70%，死亡率可达90%以上[1-2]。研究表明，大多数抗生素药物和抗球虫药物对该病没有明显疗效[2-5]，而在饲料或饮水中添加复方新诺明[1]、恩拉霉素[2]、微生态制剂[4-6]等对治疗该病有一定效果。除偶有发现轮状病毒外，其他病毒(如杯状病毒、圆环病毒等)的检测均呈阴性。因此，认为该病是一种肠道细菌性传染病[7]。

肠道菌群是一个以专性厌氧菌为主的微生态系统。由于不能对肠道中所有细菌种类进行分离培养，因而肠道菌群的定性和定量研究比较困难[8]，而分子生态学的发展为解决该问题提供了可能[9]。肠杆菌基因间重复共有序列基因扩增技术(Enterobacteria repetitive intergenic consensus-PCR，ERIC-PCR)是一种用于分析不同生态系统结构差异及同一生态系统中微生物群落结构变化的方法，近年来已应用于肠道菌群结构特征的分析[8，10-11]。笔者采用ERIC-PCR 技术建立了流行性腹胀病兔和正常对照兔的肠道菌群DNA指纹图谱，并对各组肠道菌群结构的整体差异进行了比较，以探讨兔流行性腹胀病发病机制中家兔肠道微生物的变化及其影响。

1材料与方法

1.1样品采集兔流行性腹胀病肠道样品采自江苏涟水、邳州等地，健康兔肠道样品采自江苏南京某兔场。所有样品采集后立即于-20 ℃下冷冻保存，备用。

1.2试剂与仪器DNA Marker DL 2000购自TaKaRa公司；柱式粪便DNAout提取试剂盒购自北京天恩泽基因科技有限公司；PfxDNA聚合酶购自Invitrogen公司；其他试剂均为国产分析纯。

1.3方法

1.3.1兔肠道细菌总DNA的提取。取发病兔及健康对照兔肠道内容物，分为小肠和大肠内容物标本，按照柱式粪便DNAout试剂盒说明书提取细菌总DNA，紫外分光光度计定量后，-20 ℃下冻存备用。

1.3.2ERIC-PCR反应。引物序列参照文献[12]由Invitrogen公司合成：上游引物ERIC-F，5′- ATGTAAGCTCCTGGGGATTCAC-3′；下游引物ERIC-R，5′- AAGTAAGTGACTGGGGTGAGCG-3′。PCR扩增体系为：10×PfxBuffer 5.0 μL、2.5 mmol/L dNTP 4.0 μL、50 mmol/L MgSO42.0 μL、10 mmol/L 上下游引物各1.0 μL、PfxDNA 聚合酶0.4 μL、DNA 模板100 ng，加无菌水至50 μL。PCR反应程序：94 ℃预变性7 min；94 ℃变性30 s，52 ℃退火1 min，68 ℃延伸8 min，30个循环；68 ℃延伸16 min，结束反应。用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR产物，经过凝胶成像分析系统观察DNA条带并记录结果。

1.3.3ERIC-PCR图谱分析。假设每条泳道的每个条带代表1个细菌类群，通过电泳图谱统计样本中独特的ERIC条带的数量，并制成累积曲线，以分析样本中ERIC条带数量增加的趋势。使用SensiAnsys分析软件，将电泳图谱转化为波峰图，每个波峰下面积代表1个ERIC条带的亮度，即代表该细菌类群的数量，通过Shannon-Wiener指数[13]进行多样性分析。

2结果与分析

2.1样品DNA指纹图谱的整体差异从图1可以看出，所采集的9份兔流行性腹胀病小肠样品DNA条带(图1B)与正常小肠样品(图1A)相比无明显差异，条带主要分布于100～1 000 bp，说明小肠中菌群的结构较为相似，小肠可能不是流行性腹胀病病原主要定居的部位。采集8份兔流行性腹胀病大肠样品(图1D)整体条带数目减少，与正常大肠样品(图1C)相比疾病组大肠样品在约350 bp处有1个明显突出的条带，该条带代表的菌群所占比例较高说明腹胀病兔大肠样品可能存在某一类肠道优势细菌。

注：A.正常小肠样品；B.兔流行性腹胀病小肠样品；C.正常大肠样品；D.兔流行性腹胀病大肠样品。M.DNA Marker DL2000;1～9为样品。Note：A.Normal sample of small intestine；B.Small intestinal sample of rabbits with epidemic abdominal distention disease；C.Normal sample of large intestine；D.Large intestinal sample of rabbits with epidemic abdominal distention disease. M. DNA Marker DL2000;1-9. Samples.图1　兔肠道菌群DNA指纹图谱Fig.1　DNA fingerprint of intestinal microflora in rabbits

2.2大肠样品ERIC-PCR条带分析为反映大肠样品中细菌种类的数量变化，对ERIC-PCR 图谱中随着样本个体(Xn)的增加，新的ERIC条带的累加数量(Yn)进行统计，Yn=Yn-1+第n个体与前n-1个个体均不相同的ERIC 条带数目。对疾病组样品和对照组进行统计后，得到2组关于(X，Y)的数据，并制成累积曲线(图2)。从图2可以看出，疾病组的ERIC条带总数和积累曲线的斜率均明显小于对照组。

图2　ERIC条带积累曲线Fig.2　Accumulation curve of ERIC bands

2.3多样性指数分析将代表细菌种类的泳道中各条带的强弱通过波峰图转化为细菌数量后，以Shannon-Wiener公式分别计算2组大肠样本ERIC条带多样性指数分布。经计算，疾病组个体多样性指数为(2.03±0.49)，对照组个体多样性指数为(3.30±0.31)，疾病组个体多样性指数比正常对照组减少。经t检验发现，2组间多样性指数存在极显著差异(P<0.01)。因此，大肠菌群多样性减少、结构趋于简单是流行性腹胀病个体的主要特征之一。

3讨论与结论

目前，国内外研究均未确定兔流行性腹胀病的病原[1-2，14]，但普遍认为兔流行性腹胀病由细菌性感染引起而非病毒性和寄生虫性感染引起[14-15]。在肠道疾病的发生过程中，肠道菌群的变化是一个重要的因素[16]。以前对细菌性肠道疾病的研究主要通过细菌纯培养的方法，该方法有一定的局限性。由于肠道中多数未知菌无法进行分离培养，因此进行细菌的纯培养不能完全准确反映肠道菌群的结构情况，有时难以发现与肠道疾病相关的特异病原菌。

在ERIC-PCR图谱中，泳带亮度反映了肠道中的优势菌群，而泳带数目和位置反映了肠道菌群的多样性[17]。笔者通过肠道菌群DNA图谱分析，发现病兔与正常对照在小肠肠道菌群无明显差异，而在大肠肠道菌群存在整体差异。病兔大肠肠道样本DNA指纹图谱条带明显少于正常对照，且在约350 bp处有高亮主带。该试验结果与临床症状中盲肠阻塞及含有胶冻样黏液排泄物相互印证。同时，该试验借用了生态学上Shannon-Wiener公式计算大肠样本ERIC条带的多样性指数分布情况，结果表明与对照组相比疾病组大肠菌群多样性指数的分布减少。这些结果反映出流行性腹胀病兔个体肠道菌群结构存在明显的改变，疾病组存在某一类或以某类为主的肠道优势细菌。

笔者用DNA指纹图谱技术首次在分子水平上对流行性腹胀病兔与正常健康兔之间的肠道菌群结构差异和自身的特点做了初步研究，随着研究的深入可为主要病原的分布和分离鉴定提供一定的依据。

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摘要[目的]建立患兔流行性腹胀病家兔肠道细菌的DNA指纹图谱，并分析其肠道菌群结构特征的整体差异。[方法]提取流行性腹胀病兔及健康兔肠道内容物细菌总DNA，应用肠杆菌基因间重复共有序列基因扩增技术(ERIC-PCR)建立肠道菌群的DNA指纹图谱，并分析其整体差异。[结果]病兔大肠样本DNA条带明显少于健康兔对照，而小肠样本在二者间无明显差异，说明病兔与健康兔大肠肠道菌群存在整体差异。病兔大肠样本DNA在约350 bp处出现1条主带，同时伴有若干较弱的带，而健康兔对照大肠样本DNA条带均无明显规律。病兔大肠肠道的微生物群落多样性指数为(2.03±0.49)，健康兔大肠肠道的微生物群落多样性指数为(3.30±0.31)，差异极显著(P<0.01)。 [结论]兔流行性腹胀病发病兔大肠中肠道菌群结构多样性降低，可能存在单一或几种特定的肠道优势菌群。

关键词兔流行性腹胀病；ERIC-PCR；肠道菌群；多样性指数

ERIC-PCR Fingerprint of Intestinal Microflora of Epidemic Abdominal Distention Disease in Domestic Rabbit

HU Bo, FAN Zhi-yu, WANG Fang*et al(Institute of Veterinary Medicine, Jiangsu Academy of Agricultural Sciences/Key Laboratory of Veterinary Biological Engineering and Technology, Ministry of Agriculture/National Center for Engineering Research of Veterinary Bio-products, Nanjing, Jiangsu 210014)

Abstract[Objective] To establish the DNA fingerprint of intestinal microflora of epidemic abdominal distention disease in domestic rabbit, and to analyze the overall structural differences of intestinal microflora. [Method] The total DNAs were extracted from the intestinal samples of rapids, and enterobacterial repetitive intergenic consensus sequence-polymerase chain reaction (ERIC-PCR) was used to set up the DNA fingerprint of intestinal microflora. The overall differences existed among the fingerprints of intestinal microflora were compared. [Result] The number of DNA bands about large intestinal samples was obviously less in diseased rabbits than in healthy subjects, while the small intestinal samples showed similar DNA bands, indicating that significant differences existed in large intestine between diseased rabbits and healthy ones. The principal band of DNA fingerprint of READ samples appeared at about 350 bp, while no principal band was found in healthy samples. The corresponding Shannon’s diversity indexes of diseased rabbits and healthy rabbits were (2.03±0.49) and (3.30±0.31), respectively, showing significant differences (P< 0.01). [Conclusion] The diversity of large intestine microflora significantly reduces compared with healthy rabbits. It is likely that one or more principal microflora exist in the intestinal tissue of READ rabbits.

Key wordsRabbit epidemic abdominal distention disease; ERIC-PCR; Intestinal microflora; Diversity index

收稿日期2015-12-07

作者简介胡波(1982- )，男，江苏南京人，助理研究员，硕士，从事畜禽疫病防控与兽医生物技术研究。*通讯作者，研究员，从事畜禽疫病防控与兽医生物技术研究。

基金项目现代农业产业技术体系建设专项(CARS-44)。

中图分类号S 858.291

文献标识码A

文章编号0517-6611(2016)01-083-03