花生多肽饮品抗氧化和缓解体力疲劳作用

魏振承，张瑞芬，邓媛元，张名位，张　雁，唐小俊，刘　磊，遆慧慧，马永轩，郭锦欣

（广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所，农业部功能食品重点实验室，广东省农产品加工重点实验室，广东广州510610）

花生多肽饮品抗氧化和缓解体力疲劳作用

魏振承，张瑞芬，邓媛元，张名位，张雁，唐小俊，刘磊，遆慧慧，马永轩，郭锦欣

（广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所，农业部功能食品重点实验室，广东省农产品加工重点实验室，广东广州510610）

研究了花生多肽饮品抗氧化和缓解体力疲劳作用及其缓解体力疲劳和抗氧化之间的关系。以花生多肽和其他活性物质为主要功效成分研制营养均衡型花生多肽饮品，设三个剂量组和对照组进行动物实验，研究其缓解体力疲劳作用及对抗氧化指标的影响。结果表明，与对照组小鼠相比，高剂量组与中剂量组SOD含量升高并具有显著性差异（p＜0.05），高剂量组和中剂量组MDA含量降低并具有显著性差异（p＜0.05），各剂量组小鼠负重游泳时间明显增加（p＜0.05），肝糖原含量显著提高（p＜0.05），全血乳酸和血清尿素氮显著降低（p＜0.05）。表明花生多肽饮品具有抗氧化和缓解体力疲劳的作用，其缓解体力疲劳作用与体内SOD水平相关。

花生，多肽，抗氧化，缓解体力疲劳

慢性疲劳综合症发生率较高，女性和男性发生率分别为每十万人522人和291人[1]。这些患者即使不从事激烈运动或重体力劳动，也会经常出现疲劳和各种身体不适。目前已发现多种多肽成分具有缓解人体体力疲劳的作用，包括花生多肽[2-3]、大豆肽[4-5]、高F值寡肽[6]、玉米肽[7-9]、大米肽[10]等。另外，还发现了许多其他功能性成分也有助于缓解体力疲劳，如肉碱[11-13]、牛磺酸[14]、精氨酸[15]、胆碱[16]等。国内外研究证实多种不同来源的多肽成分具有抗氧化活性，如花生多肽[3]、大豆多肽[5，17]、玉米多肽[9]、大米多肽[10]、罗非鱼多肽[18]、鱼精多肽[19]等。国内外众多研究结果表明氧化应激反应与慢性疲劳相关[20]，然而氧化应激是导致机体疲劳的原因还是机体疲劳产生的结果仍没有定论[21]。目前已发现多种活性物质的缓解体力疲劳作用与其抗氧化活性有关，包括大豆低聚肽[17]、杜仲叶黄酮苷[22]、番茄红素[23]、乳源免疫调节肽[24]、新疆野生党参总黄酮[25]、鱼精多肽[19]等。

目前已有的关于抗疲劳成分报道大多数是通过人工灌胃方法对单一成分进行缓解体力疲劳功能评价从而确定该物质的缓解体力疲劳作用，未考虑到不同成分间可能存在的减效或增效作用，并异于动物正常取食习惯，导致其结果对抗疲劳产品研发的参考意义受到了限制。在产品研发和生产过程中，考虑到口感和营养均衡等因素，产品很少只采用单一成分。在成分复杂的饮料体系中，不同成分间存在相互作用，导致产品外观和产品功效可能会发生变化。在以多肽为功效成分研发缓解体力疲劳产品方面，苏永昌等[18]以罗非鱼多肽为功效成分制备了罗非鱼多肽饮料，并证实了产品能提高小鼠体内抗氧化水平，延长小鼠负重游泳时间，具有抗氧化和抗疲劳作用；在花生多肽抗疲劳研究方面，虽然彭维兵等[2]用单一花生多肽成分采用灌胃方法证实了花生多肽的抗疲劳作用，但目前还没有采用花生多肽为功效成分研发抗疲劳饮品方面的报道。本文以花生多肽和其他活性物质为主要功效成分研制营养均衡型花生多肽饮品，研究其抗疲劳作用及对抗氧化活性指标的影响，以期为抗疲劳功能性饮品的开发及阐明抗疲劳作用和抗氧化的关系提供参考。

1　材料与方法

1.1材料与仪器

昆明种小鼠许可证号，SCXK（粤）2009-0011，中山大学实验动物中心；冰乙酸AR（≥99.5） 天津市大茂化学试剂厂；无水乙酸AR（≥99.7） 天津市富宇精细化工有限公司；水解蛋白酶2.4L诺维信（中国）生物技术有限公司；硫酸优级纯（95～98） 天津进丰化工有限公司；甘油三酯试剂盒、总胆固醇试剂盒、SOD试剂盒、GSH-PX试剂盒、MDA试剂盒、尿素氮（BUN）试剂盒、全血乳酸（LD）试剂盒、肝糖原试剂盒南京建成生物工程研究所；花生粕市售；水解乳清蛋白、蔗糖、中链脂肪、卵磷脂、单甘酯、蔗糖酯、氯化钾、维生素B1、维生素B2、维生素C、L-肉碱、牛磺酸、精氨酸、肌醇、氯化胆碱、L-赖氨酸盐酸盐市售食品级原料。

UV-1800型紫外可见光分光光度计日本岛津有限公司；XHF-D型高速分散器宁波新芝生物科技股份有限公司；JY92-IZN型超声波细胞粉碎机宁波新芝生物科技股份有限公司；TGL-16G型高速台式离心机上海医用分析仪器厂；GYB 60-65型高压均质机上海东华高压均质机厂；JMS-130型胶体磨廊体通用机械有限公司；冷冻干燥仪北京德天佑科技发展公司；KDN-08A型定氮仪上海新嘉电子有限公司；BL-75A型立式压力蒸汽灭菌器上海博讯实业有限公司医疗仪器厂。

1.2花生多肽饮品的设计与制备工艺

根据中国营养学会2005年制订的中国居民膳食营养素摄入量标准，合理配伍蛋白质、脂肪、碳水化合物、矿物质、维生素等营养成分，以花生多肽为主要氮源、辛葵酸甘油酯为脂肪来源、蔗糖等为碳水化合物来源，添加人体所需的矿物质和维生素，以及肉碱、牛磺酸、精氨酸、肌醇、胆碱、赖氨酸等生物活性物质，按以下工艺制备营养均衡型花生多肽饮品。

1.2.1花生多肽制备工艺花生粕→1∶10料水比加水浸泡→匀浆→调pH至9.5→52℃浸提2h→3000r/min离心10min→收集上清液→二次浸提→合并上清液→调pH至4.5→3000r/min离心15min→取沉淀→加水分散→碱性蛋白酶酶解（酶解温度53.7℃，底物浓度7.7%，碱性蛋白酶与底物质量比4.18%，酶解时间2h）→90℃水浴灭酶15min→4000r/min离心10min→上清液冷冻干燥→得花生多肽粉末。

1.2.2花生多肽饮品制作工艺按适当比例分别称取水溶性原料（花生多肽、蔗糖、蔗糖酯、高钙奶安定剂、氯化钾、L-肉碱、复合维生素、牛磺酸、精氨酸、肌醇、氯化胆碱、L-赖氨酸盐酸盐）和脂溶性材料（中链脂肪、单甘酯、卵磷酯）→加适当重量的水至水溶性原料→边加热边搅拌使其溶解→加入溶解好的脂溶性材料→煮沸→调pH至7.0→均质→装罐→121℃灭菌20min→冷却→成品。

1.3实验方法

参照《保健食品检验与评价技术规范》（2003版）[26]之“缓解体力疲劳功能检验方法”。

1.3.1实验动物及分组昆明种健康清洁级雄性小鼠192只，18～22g，共分为四批进行实验，分别用于a.负重游泳实验，b.血清尿素氮的测定，c.肝糖原、脏器指数及血清氧化应激水平的测定，d.全血乳酸的测定。每批随机分为4组，每组12只。

1.3.2剂量与喂养方法该产品的人体推荐量为每人每天饮用3瓶花生多肽饮品（每瓶250mL），即750mL/60kg，将人体推荐量的10倍设为低剂量，即2.5mL/20g，另设中剂量为5mL/20g，高剂量为7.5mL/20g。

小鼠每周称重2次，对照组自由饮水，低、中、高剂量组每天早上（8∶30～9∶00）以饮品替换水，饮品量根据体重供给。记录饮水瓶和饮品的总重量，每2h称量一次，利用差量法，记录每组小鼠每天实际饮用饮品量。每天饲喂饮品量达到要求后，再以水替换饮品。基础饲料正常供给，每3d记录一次，连续30d。

1.3.3负重游泳实验末次给予受试物后，将小鼠置于游泳箱（50cm×50cm×40cm）中进行负重游泳。水深约30cm，水温（25±1）℃，小鼠尾根部负荷5%体重的铅块。记录小鼠自游泳开始至死亡所需的时间作为小鼠负重游泳时间（S）。

1.3.4血清尿素氮（BUN）的测定末次给予小鼠受试物后，在温度为30℃的水中游泳90min，休息60min后，立即摘除眼球取血约0.5mL，10000r/min离心2min分离血清。血清尿素氮水平测定采用试剂盒测定。

1.3.5肝糖原、脏器指数及血清氧化应激水平的测定末次给予小鼠受试物后，乙醚麻醉后摘除眼球取血，分离血清用于氧化应激相关指标测定。颈椎脱臼处死动物后，分离心脏、肝脏、脾脏和两侧肾脏并称重，剪取适量肝脏-20℃保存，用于肝糖原测定。肝糖原及氧化应激指标超氧化物歧化酶（SOD）、谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）和丙二醛（MDA）测定采用试剂盒测定。

按下式计算三个时间点各动物血乳酸曲线下面积：

血乳酸曲线下面积＝5×（游泳前血乳酸值＋3×游泳后0min的血乳酸值+2×游泳后休息20min的血乳酸值）。

1.4数据处理

2　结果与分析

2.1花生多肽饮品对小鼠体重的影响

花生多肽饮品对第一批实验小鼠体重的影响见表1。第一批用于负重游泳实验的对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的小鼠初始体重在（21.71± 2.41）～（23.36±2.52）g之间，各组之间无显著差异（p＞0.05）。实验期间各组体重增加，30d后体重增加至（41.45±3.13）～（43.73±3.28）g之间，各组之间无显著性差异（p＞0.05），说明给予花生多肽饮品没有影响该批小鼠体重。其余三批动物实验的小鼠初始体重和最终体重组间均无显著差异。

表1　花生多肽饮品对小鼠体重的影响（±S，n=12）Table.1　The effects of peanut peptide beverage on the body weights of the mice（±S，n=12）

表1　花生多肽饮品对小鼠体重的影响（±S，n=12）Table.1　The effects of peanut peptide beverage on the body weights of the mice（±S，n=12）

注：同列不同字母表示数据具有显著性差异，p<0.05；表2、表3同。

组别　0 d（g）　3 0 d（g）对照组　2 3 . 3 6 ± 2 . 5 2a　4 3 . 7 3 ± 3 . 2 8a低剂量组　2 3 . 2 4 ± 2 . 1 8a　4 1 . 4 5 ± 3 . 1 3a中剂量组　2 2 . 1 3 ± 2 . 3 4a　4 2 . 2 5 ± 6 . 3 9a高剂量组　2 1 . 7 1 ± 2 . 4 1a　4 2 . 2 3 ± 3 . 4 7a

2.2花生多肽饮品对小鼠脏器指数的影响

花生多肽饮品对小鼠脏器指数的影响见图1。对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的肝脏指数分别为（5.11±0.64）、（5.55±0.64）、（5.62±0.56）和（5.82± 0.44）g/100g体重。与对照组小鼠的肝脏指数相比，低剂量组没有显著性差异（p＞0.05），中剂量组和高剂量组升高并具有显著性差异（p＜0.05）；不同剂量组间没有显著性差异（p＞0.05）。

⑫Niessen，C．，Weseler，D．＆ Kostova，P．，“When and why do individuals craft their jobs?The role of individual motivation and work characteristics for job crafting”，Human Relations，2016，9(6)，pp．1287 ～1313．

注：同一指标不同字母表示差异显著（p<0.05）。

对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的肾脏指数分别为（1.26±0.10）、（1.29±0.12）、（1.23±0.18）和（1.16±0.07）g/100g体重。与对照组小鼠的肾脏指数相比，高剂量组降低并具有显著性差异（p＜0.05），低剂量组和中剂量组没有显著性差异（p＞0.05）；高剂量组和低剂量组之间具有显著性差异（p＜0.05），高剂量组和中剂量组之间、低剂量组和中剂量组之间没有显著性差异（p＞0.05）。对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠之间的脾脏指数和心脏指数未呈现显著性差异（p＞0.05）。

2.3花生多肽饮品对氧化应激水平的影响

表2为花生多肽饮品对氧化应激水平的影响。从表2可以看出，对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组小鼠SOD含量在（121.49±20.34）～（169.31±22.90）U/mL之间，随着剂量的增加，SOD含量增加。与对照组小鼠SOD含量相比，高剂量组与中剂量组升高并具有显著性差异（p＜0.05），低剂量组无显著性差异（p＞0.05）；与低剂量组相比，高剂量组含量升高并具有显著性差异（p＜0.05），中剂量组含量升高，但差异不显著（p＞0.05）；与中剂量组相比，高剂量组含量升高并具有显著性差异（p＜0.05）。

对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的GSHPx含量在（253.53±43.62）～（289.04±48.80）U/mL之间，随着剂量增加，GSH-Px含量提高，但各组之间没有显著性差异。对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的MDA含量在（6.10±1.20）～（7.92±1.19）nmol/mL之间。与对照组小鼠的MDA含量相比，中剂量组和高剂量组降低并具有显著性差异（p＜0.05），低剂量组则没有显著性差异（p＞0.05）；与低剂量组相比，高剂量组和中剂量组MDA生成降低并具有显著性差异（p＜0.05）；高剂量组和中剂量组之间没有显著性差异（p＞0.05）。

SOD对机体的氧化与抗氧化平衡起着至关重要的作用，其活力的高低反映了机体清除自由基能力。谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）特异催化还原型谷胱甘肽（GSH）对过氧化氢的还原反应，起到保护细胞膜结构和功能完整的作用，从而起到抗氧化作用。MDA是脂质过氧化物中毒性最大的一种，它能破坏膜结构和膜蛋白功能，影响核酸的功能和代谢，还可致使自身免疫功能紊乱。因此通过MDA的测定可反映机体脂质过氧化的程度，间接了解机体组织、细胞的损伤程度。本研究结果表明，花生多肽饮品可以提高实验小鼠SOD含量，降低MDA生成，对GSH-PX含量影响不显著，说明花生多肽饮品可以通过提高小鼠的SOD含量和降低MDA生成来增强抗氧化性。

表2　花生多肽饮品对氧化应激水平的影响（±S，n=12）Table.2　The effects of peanut peptide beverage on the levels of oxidative stress（±S，n=12）

表2　花生多肽饮品对氧化应激水平的影响（±S，n=12）Table.2　The effects of peanut peptide beverage on the levels of oxidative stress（±S，n=12）

组别　S O D（U / m L）　G S H -P x（U / m L）M D A（n m o l / m L）对照组　1 2 1 . 4 9 ± 2 0 . 3 4a　2 5 3 . 5 3 ± 4 3 . 6 2a　7 . 6 8 ± 1 . 2 5b低剂量组　1 3 5 . 5 0 ± 2 2 . 1 7ab　2 6 5 . 8 5 ± 3 9 . 4 1a　7 . 9 2 ± 1 . 1 9b中剂量组　1 4 1 . 3 3 ± 1 4 . 4 6b　2 8 7 . 0 0 ± 3 2 . 4 6a　6 . 1 0 ± 1 . 2 0a高剂量组　1 6 9 . 3 1 ± 2 2 . 9 0c　2 8 9 . 0 4 ± 4 8 . 8 0a　6 . 3 9 ± 1 . 0 9a

现有文献表明大部分抗氧化肽在N端包含疏水性氨基酸如Val或Leu，并且序列中含有Pro、His、Tyr、Trp和Cys等氨基酸[27]。本研究的花生多肽饮品含有花生多肽以及肉碱、牛磺酸、精氨酸等生物活性物质。本研究采用的花生多肽其疏水性氨基酸占30.57%。另外，产品中的肉碱[13]、牛磺酸[28]、精氨酸[29]都有利于提高饮品的抗氧化活性。

2.4花生多肽饮品对小鼠负重游泳时间、肝糖原、血乳酸曲线下面积和血清尿素氮的影响

花生多肽饮品对小鼠负重游泳时间、肝糖原、血乳酸曲线下面积和血清尿素氮的影响见表3。结果表明，对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组负重游泳时间在（280.18±77.11）～（634.41±144.72）s之间。与对照组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠负重游泳时间明显增加，且都具有显著性差异（p＜0.05）；各剂量组之间随着剂量的增加，负重游泳时间增加，其中高剂量组与低剂量组、中剂量组相比具有显著性差异（p＜0.05），但低剂量组和中剂量组之间则没有显著性差异（p＞0.05）。

对照组和各剂量组肝糖原含量在（1308±469）～（3311±767）mg/100g肝之间。与对照组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠的肝糖原含量显著提高（p＜0.05）；各剂量组之间随着剂量的增加，肝糖原含量增加，其中高剂量组和中剂量组与低剂量组之间具有显著性差异（p＜0.05），而高剂量组和中剂量组之间则无显著性差异（p＞0.05）。

对照组和各剂量组血乳酸曲线下面积在（95.13± 19.01）～（131.89±19.14）之间。与对照组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠的全血乳酸值显著降低（p＜0.05）；但各剂量组之间没有显著性差异（p＞0.05）。

对照组和各剂量组血清尿素氮含量在（9.97±0.77）～（14.23±1.08）mmol/L之间。与对照组相比，低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠的血清尿素氮显著降低（p＜0.05）；但各剂量组之间没有显著性差异（p＞0.05）。

游泳实验是观察动物抗疲劳能力的公认指标，动物的负重游泳时间直接反映了机体的运动耐力。本研究结果表明，与对照组比较，花生多肽饮品低、中、高剂量组均能显著延长小鼠负重游泳时间，各剂量组之间随着剂量的增加，负重游泳时间增加，并呈现一定的剂量效应，说明花生多肽饮品能提高小鼠的运动耐力。糖原是肌肉组织重要能量来源，糖原含量高低影响动物的运动能力，肝糖原对于维持血糖水平起着非常重要的作用。本研究结果表明，与对照组比较，各剂量组小鼠的肝糖原含量显著提高，各剂量组之间随着剂量的增加，肝糖原含量增加，并表现出一定的剂量关系，说明花生多肽饮品能提高小鼠的肝糖原含量，为维持血糖水平提供了保证，从而提高动物的运动能力。血乳酸是一种酸性代谢产物，其水平升高可导致肌肉中H+浓度上升，从而导致机体能量代谢水平降低和运动能力下降。本研究结果表明，各剂量组可显著降低血乳酸水平，但各剂量组之间血乳酸水平没有显著性差异，说明花生多肽饮品通过降低血乳酸水平提高动物的运动能力，饮品对血乳酸的清除作用并不随着剂量的增加而增强。血清尿素氮是反映蛋白质代谢的指标，在正常情况下，尿素的生成和排泄处于动态平衡状态，尿素氮含量相对稳定。当动物进行较为激烈的运动时，蛋白质和氨基酸的分解代谢加强，尿素生成增加，导致尿素氮含量升高。本研究结果表明，各剂量组均能显著降低血清尿素氮含量，但各剂量组之间血清尿素氮水平没有显著性差异，说明花生多肽饮品通过降低运动后血清尿素氮的生成延缓疲劳的发生，饮品对血清尿素氮生成的抑制作用并不随着剂量的增加而提高。

本饮品中的花生多肽比完整蛋白质能更快地被消化利用；辛葵酸甘油酯是中链脂肪，比长链脂肪酸更容易被消化吸收，可快速提供能量；另外饮品中的肉碱[11-13]、牛磺酸[14]、精氨酸[15]、胆碱[16]都可以增强机体的抗疲劳功能，推断饮品通过各种营养成分和活性物质的综合作用达到缓解体力疲劳的效果。

表3　花生多肽饮品对小鼠负重游泳时间、肝糖原、血乳酸曲线下面积和血清尿素氮的影响（±S，n=12）Table.3　The effects of peanut peptide beverage on the load swimming time，liver glycogen，blood lactic acid and serum urea nitrogen of the mice（±S，n=12）

表3　花生多肽饮品对小鼠负重游泳时间、肝糖原、血乳酸曲线下面积和血清尿素氮的影响（±S，n=12）Table.3　The effects of peanut peptide beverage on the load swimming time，liver glycogen，blood lactic acid and serum urea nitrogen of the mice（±S，n=12）

组别　负重游泳时间（S）　肝糖原（m g / 1 0 0 g肝）　血乳酸曲线下面积　血清尿素氮（m m o l / L）对照组　2 8 0 . 1 8 ± 7 7 . 1 1a　1 3 0 8 ± 4 6 9a　1 3 1 . 8 9 ± 1 9 . 1 4b　1 4 . 2 3 ± 1 . 0 8b低剂量组　4 3 0 . 4 5 ± 1 4 5 . 4 9b　2 1 6 0 ± 6 1 8b　9 8 . 5 4 ± 1 7 . 0 3a　1 1 . 6 3 ± 1 . 1 6a中剂量组　5 0 8 . 2 5 ± 1 5 7 . 0 2b　3 0 3 6 ± 7 6 5c　9 6 . 0 8 ± 2 2 . 3 4a　1 0 . 5 0 ± 0 . 8 8a高剂量组　6 3 4 . 4 1 ± 1 4 4 . 7 2c　3 3 1 1 ± 7 6 7c　9 5 . 1 3 ± 1 9 . 0 1a　9 . 9 7 ± 0 . 7 7a

2.5抗氧化活性与缓解体力疲劳的关系

Porsolt[30]采用游泳实验确证了抗氧化的膳食成分可延缓疲劳。SOD水平、GSH-Px水平和MDA生成量都能在一定程度上反映机体抗氧化能力。本研究中的对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组小鼠SOD平均值分别为121.49、135.50、141.33和169.31U/mL（表2），其对应平均负重游泳时间分别为280.18、430.45、508.25和634.41s（表3），表现出随着SOD水平提高，小鼠负重游泳时间增加的趋势，这与陈园园等[17]用大豆低聚肽获得SOD水平与游泳时间呈正相关的结果吻合。虽然本研究结果表明小鼠负重游泳时间与SOD水平有一定的正相关关系，但小鼠表现出的力竭运动耐力的提高却与GSH-Px水平不相关。与Singh等[31]发现的抗氧化剂通过减少脂类的过氧化来延缓了疲劳产生的结果不同，本研究发现负重游泳时间与脂质过氧化产物MDA生成量没有呈现出很好的相关性。

3　结论

综合上述实验结果表明，以花生多肽和其他活性物质为主要功效成分的营养均衡型花生多肽饮品能显著提高小鼠的SOD含量，明显增加小鼠负重游泳时间，显著提高肝糖原含量，显著降低全血乳酸和血清尿素氮。表明花生多肽饮品具有抗氧化和缓解体力疲劳的作用，其缓解体力疲劳作用与体内SOD水平相关。本研究结果对于拓宽抗疲劳功能性食品的研发思路具有重要的参考意义。

[1]Jason LA，Richman JA，Rademaker AW，et al.A communitybased study of chronic fatigue syndrome[J].Archives of Internal Medicine，1999，159：2129-2137.

[2]彭维兵，何秋霞，刘可春，等.花生肽对小鼠抗运动性疲劳的实验研究[J].山东科学，2011，24（5）：35-38.

[3]陈贵堂，赵立艳，李博，等.花生肽对衰老模型大鼠血清和心、脑组织抗氧化效果的影响[J].中国粮油学报，2012，27（1）：43-47.

[4]刘娜，李湘浓，吴翱，等.大豆寡肽抗疲劳作用的实验研究[J].中国实验诊断学，2010，14（2）：201-203.

[5]陈园园.大豆肽的酶解制备与抗疲劳、抗氧化功能研究[D].无锡：江南大学，2008.

[6]张铁华，殷涌光，刘静波，等.高F值寡肽抗疲劳作用的研究及其饮料的开发[J].食品科学，2007，28（5）：308-312.

[7]郑鸿雁.玉米肽抗疲劳作用的实验研究[J].中国粮油学报，2005，20（1）：33-38.

[8]昌友权.玉米肽抗疲劳作用的实验研究[J].食品科学，2004，25（9）：173-178.

[9]Tang XY，He ZY，Xiong YL.Peptide Fractionation and Free Radical Scavenging Activity of Zein Hydrolysate[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2010，58（1）：587-593.

[10]Zhang J，Zhang H，Wang L，et al.Isolation and identification of antioxidative peptides from rice endosperm protein enzymatic hydrolysate by consecutive chromatography and MALDI-TOF/ gTOF MS/gMS[J].Food Chemistry，2010，119（1）：226-234.

[11]何来荚，严卫星，楼密密，等.左旋肉碱的抗疲劳作用[J].中国自然医学杂志，2004，6（3）：146-148.

[12]王舒熊，焦光宇，王小雪，等.肉碱抗疲劳效果观察[J].中国公共卫生，2000，16（2）：183.

[13]郭殿武.补充左旋肉碱对力竭运动能力及抗氧化作用影响的研究[D].大连：辽宁师范大学，2009.

[14]魏智清，张振汉，于洪川，等.牛磺酸对小鼠耐力影响的研究[J].氨基酸和生物资源，2003，25（1）65-66.

[15]王斌.L-精氨酸的抗疲劳作用研究[J].氨基酸和生物资源，2008，30（2）：44-47.

[16]陈秀英.胆碱的补充与运动性中枢疲劳的推迟[J].山东体育学院学报，2004，20（62）：44-45.

[17]陈园园，施用晖，乐国伟.不同分子量大豆低聚肽抗氧化活性与抗疲劳关系研究[J].氨基酸和生物资源，2008，30（2）：59-62.

[18]苏永昌，刘淑集，王茵，等.罗非鱼多肽饮料的制备及抗氧化抗疲劳作用[J].福建水产，2013，35（2）：112-117.

[19]王勇刚，朱锋荣，韩福森.鱼精多肽在抗氧化和抗疲劳方面的作用研究[J].食品科技，2007，246（7）：245-248.

[20]Lecarpentier Y.Physiological role of free radicals in skeletal muscles[J].Journal of Applied Physiology，2007，103（6）：1917-1918.

[21]Logan AC，Wong C.Chronic Fatigue Syndrome：Oxidative Stress and Dietary Modifications[J]．Alternative Medicine Review，2001，6（5）：450-459.

[22]杨津，董文宾，许先猛，等.杜仲叶黄酮苷抗疲劳和抗氧化活性的研究[J].陕西科技大学学报，2010，28（3）：60-63.

[23]杨艳晖，常东，潘洪志.番茄红素对小鼠抗疲劳和抗氧化作用[J].中国临床营养杂志，2006，14（3）：141-143.

[24]顾芳，秦宜德，董华胜，等.乳源免疫调节肽对小鼠抗氧化和抗疲劳作用研究[J].营养学报，2006，28（4）：326-328.

[25]汪建红，原慧，李雪红.新疆野生党参总黄酮体内抗氧化及抗疲劳作用研究[J].天然产物研究与开发，2012，24：1035-1039.

[26]卫生部．保健食品检验与评价技术规范[S]．2003，87-93.

[27]张晖，唐文婷，王立，等.抗氧化肽的构效关系研究进展[J].食品与生物技术学报，2013，32（7）：673-679.

[28]王芙蓉，谢中国，叶兴乾，等.牛磺酸对大鼠铁利用和抗氧化能力的影响[J].食品与生物技术学报，2013，32（5）：516-519.

[29]陈亚军，齐玉梅，项琦，等.谷氨酰胺和精氨酸对创伤后大鼠血浆蛋白和抗氧化能力的影响[J].天津医科大学学报，2008，14（2）：229-231.

[30]Porsolt RD，Bertin A，Jalfre M．Behavioral despair in mice：a primary screening test for antidepressants[J].Archives of International Pharmacodynamic Therapy，1977，229（2）：327-336.

[31]Singh A，Garg V，Gupta S，et al．Role of antioxidants in chronic fatigue Syndrome in mice[J].Indian Journal of Experimental Biology，2002，40：1240-1244.

Anti-oxidation and anti-fatigue effects of a peanut peptide beverage

WEI Zhen-cheng，ZHANG Rui-fen，DENG Yuan-yuan，ZHANG Ming-wei，ZHANG Yan，TANG Xiao-jun，LIU Lei，TI Hui-hui，MA Yong-xuan，GUO Jin-xin
（Sericultural and Agri-Food Research Institute，Guangdong Academy of Agricultural Sciences，Key Laboratory of Functional Foods，Ministry of Agriculture，Guangdong Key Laboratory of Agricultural Products Processing，Guangzhou 510610，China）

The anti-oxidation and anti-fatigue effects and their correlation of a peanut peptide beverage were investigated.A nutritionally balanced peanut peptide beverage was prepared using peanut peptide and other active substances as main active ingredients，an animal experiment consisting of three treatment groups and one control group was conducted to investigate anti-fatigue function and its effect on anti-oxidation indexes of the beverage.The results showed that compared with the control group，SOD contents of mice in the mediumand high-dose groups were significantly higher（p＜0.05），MDA contents in the medium-and high-dose groups were significantly lower（p＜0.05），the load swimming time and hepatic glycogen of all three treatment groups were significantly increased（p＜0.05），while the whole blood lactic acid content and blood serum urea nitrogen significantly decreased（p＜0.05）.It could be concluded that the peanut peptide beverage had antifatigue function and anti-oxidation effect，and its anti-fatigue function was correlated to the SOD contents.

peanut；peptide；anti-oxidation；anti-fatigue

TS201.4

A

1002-0306（2015）04-0357-05

10.13386/j.issn1002-0306.2015.04.069

2014－06－05

魏振承（1963-），男，本科，研究员，研究方向：农产品加工。

国家科技项目（2012BAD33B10，2012BAD37B08，2013AA102208）；广东省科技计划项目（2012A061100004，2011A080803011，2012B091100411）。