1 240株临床分离菌株耐药性监测

2015-03-08 02:11刘利航
重庆医学 2015年2期
关键词:嗜血葡萄球菌耐药性

杨 夕,刘利航

(重庆市南川区人民医院检验科 408400)

细菌耐药存在明显的区域性和时间性,连续动态监测临床病原菌的耐药特点,可及时掌握细菌耐药现状与变迁,对指导临床合理使用抗菌药物,减少耐药菌株产生,缩短患者住院时间,提高疗效等都有重要意义。本研究对1 240株临床分离菌株构成特点及耐药性进行总结,现报道如下。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验菌株 选择本院2013年全年从合格标本中分离的菌株,剔除同一患者相同部位的重复菌株。质控菌株金黄色葡萄球菌ATCC29213、大肠埃希菌ATCC25922、铜绿假单胞菌ATCC27853、肺炎链球菌 ATCC49619、铅黄肠球菌ATCC700327、流感嗜血杆菌 ATCC49619、霍氏肠杆菌ATCC700323、腐生葡萄球菌ATCC BAA-750、嗜麦芽窄食单胞菌ATCC17666均购自中国菌种工业保存中心。

1.1.2 仪器与试剂 法国生物梅里埃VITEK 2Compact微生物鉴定药敏分析系统及配套板条;链球菌药敏用含5%脱纤维羊血MH琼脂,流感嗜血杆菌药敏用嗜血杆菌属培养基(HTM),均购自重庆庞通生物试剂有限公司。

1.2 方法 严格按《全国临床检验操作规程》(第3版)进行标本的质量控制、接种及菌株的分离培养,采用VITEK 2Compact微生物鉴定药敏分析系统及配套板条进行菌株的鉴定及药敏试验,链球菌和流感嗜血杆菌用K-B法纸片扩散进行药敏试验,以CLSI 2013年标准进行结果的判断。

1.3 统计学处理 采用WHO提供的 WHONET5.6软件进行处理和分析,主要采用统计学描述。

2 结 果

2.1 细菌种类及分布 2013年本院共收集临床分离细菌1 240株,其中革兰阴性细菌834株,占67.3%;革兰阳性细菌406株,占32.7%。分离菌株前5位依次是大肠埃希菌、克雷伯菌属,凝固酶阴性葡萄球菌,金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌。834株革兰阴性菌中,肠杆菌科细菌占60.3%,其中最多见者依次为大肠埃希菌、克雷伯菌属、宋内志贺菌和肠杆菌属细菌;非发酵糖革兰阴性杆菌占21.3%,其中最多见者依次为铜绿假单胞菌、不动杆菌属细菌和嗜麦芽窄食单胞菌,革兰阳性菌中检出最多的为凝固酶阴性葡萄球菌121株,占29.8%;其次为金黄色葡萄球菌98株,占24.1%。见表1。

表1 临床分离细菌分布构成比

2.2 细菌的标本来源及主要菌种构成 菌株主要来源是下呼吸道痰液占48.1%,其次为尿液(18.1%)、血液(12.6%)、分泌物(7.2%)、大便(6.0%)、无菌体液(5.2%)、脓液(1.8%)、其他(1.1%)。痰液标本中居前4位的细菌是肺炎克雷伯菌、肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、流感嗜血杆菌,分别占21.0% 、15.6%、11.1%、11.1%;尿液标本中居前4位的是大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、屎肠球菌和粪肠球菌,分别占56.7%、6.3%、5.8%和5.4%;血液标本中居前4位的是凝固酶阴性葡萄球菌、大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和金黄色葡萄球菌,分别占46.4%、22.4%、9.1%和4.2%。

2.3 主要革兰阳性菌对抗菌药物的耐药性

2.3.1 葡萄球菌属 耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)和耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌(MRCNS)分离率分别为17.1%和74.7%。MRSA和MRCNS对β-内酰胺类和大环内酯类抗菌药物的耐药性均显著高于甲氧西林敏感株[甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(MSSA)和甲氧西林敏感凝固酶阴性葡萄球菌(MSCNS)]。未发现对万古霉素、奎奴普丁/达福普汀、替加环素和利奈唑胺耐药株,见表2。

2.3.2 肠球菌属 肠球菌属以粪肠球菌(57.3%)和屎肠球菌(32.7%)为主。粪肠球菌对青霉素G、氨苄西林、万古霉素、利奈唑胺和替加环素均无耐药菌株。对喹诺酮类抗菌药物具有较高敏感性,均大于70.0%(环丙沙星74.3%、左旋氧氟沙星77.1%、莫 西 沙 星 77.1%),对 红 霉 素 耐 药 性 率 较 高,为71.4%,对克林霉素全耐药。屎肠球菌分离菌株不足30株,未做分析。

2.3.3 肺炎链球菌 共分离97株肺炎链球菌,全来源于非脑膜炎标本。如按非脑膜炎静脉给药标准解释,青霉素耐药性为47.4%,未检出对万古霉素、利奈唑胺、左旋氧氟沙星、莫西沙星、氧氟沙星和厄他培南耐药的菌株;对四环素和红霉素高度耐药(>85.0%)。

2.4 主要革兰阴性菌对抗菌药物的耐药性

2.4.1 肠杆菌科 肠杆菌科细菌主要为大肠埃希菌、克雷伯菌属、宋内志贺菌和肠杆菌属。大肠埃希菌、宋内志贺菌和克雷伯菌属对碳青霉烯类抗菌药物(亚胺培南、厄他培南)均保持较好的敏感性(>97.4%),对哌拉西林/他唑巴坦、头孢替坦(宋内志贺菌未报)和阿米卡星的耐药性小于10.0%,对头孢他啶、头孢吡肟和妥布霉素的耐药性小于30.0%,对其他抗菌药物的耐药性均较高。肠杆菌属对哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南的耐药性均小于10.0%,对头孢吡肟、厄他培南、氨基糖苷类、喹诺酮类和复方磺胺的耐药性小于30.0%,见表3。大肠埃希菌、克雷伯菌属中检出产超广谱β-内酰胺酶(ESBLs)菌株的比例分别为67.2%(156/232)、18.6%(29/156),肠杆菌科细菌中产ESBLs株对多数测试药物的耐药性均比非产ESBLs株高[1],见表3。

表2 葡萄球菌属对抗菌药物的敏感性和耐药性(%)

续表2 葡萄球菌属对抗菌药物的敏感性和耐药性(%)

表3 肠杆菌科细菌对抗菌药物的敏感性和耐药性(%)

2.4.2 不发酵糖革兰阴性杆菌 不发酵糖革兰阴性杆菌主要为铜绿假单胞菌和不动杆菌属。铜绿假单胞菌对氨基糖苷类耐药性均小于或等于10.0%(庆大霉素小于妥布霉素),对哌拉西林/他唑巴坦、头孢他啶、头孢吡肟和亚胺培南的耐药性分别为12.1%、9.4%、10.1%和11.9%。左旋氧氟沙星的耐药性(12.0%)低于环丙沙星(15.2%)。不动杆菌属较铜绿假单胞菌更为耐药,对哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南和左旋氧氟沙星的耐药性较低,分别为19.0%、19.0%和15.9%,见表4。

表4 不发酵糖革兰阴性杆菌对抗菌药物的敏感性和耐药性(%)

续表4 不发酵糖革兰阴性杆菌对抗菌药物的敏感性和耐药性(%)

2.4.3 流感嗜血杆菌 流感嗜血杆菌对大部分药物的耐药性小于20.0%[2],对氨苄西林的耐药性为35.8%,对二代头孢菌素头孢呋辛的敏感性(93.7%)大于头孢克洛(53.7%),对三代头孢菌素头孢曲松未检出耐药株。

3 讨 论

本院2013年监测的1 240株临床分离株中,病原菌的来源以下呼吸道标本痰为主,占48.4%[3];革兰阴性杆菌居多,占67.3%,革兰阳性球菌占32.7%。临床分离菌株中居首位的是大肠埃希菌(18.7%),其次分别为肺炎克雷伯菌(12.6%)、凝固酶阴性葡萄球菌(9.8%)、金黄色葡萄球菌(7.9%)、肺炎链球菌(7.8%),这与重庆市耐药监测网统计前5位细菌及耐药状况基本一致。肺炎链球菌、流感嗜血杆菌较高,原因如下:(1)分离的病原菌有385株(31.7%)来源于儿童患者,儿童患者中肺炎链球菌和流感嗜血杆菌占有很大比例;(2)痰液标本占的比重太大,可能会影响检出的致病菌的质量,需要进一步与临床沟通使其增加血液等无菌体液标本的送检。

2013年10月本地区曾发生学生集体食物中毒的事件,从感染患者中分离到70株宋内志贺氏菌。这些菌株生化反应及耐药表型都基本一致,选用头孢他啶治疗,开始有效,逐渐产生耐药,后改用头孢吡肟治疗,疫情得到控制,患者痊愈出院。

本研究中97株肺炎链球菌有70株来自于儿童患者。虽然按静脉注射非脑膜炎判断标准,菌株对青霉素敏感性较西南地区2011年水平低[4],但临床上对于儿童患者首选青霉素来治疗肺炎链球菌性肺炎[5]。值得注意的是在文献中报道PNSP的检出率高达约80.0%[6]。对大环内酯耐药性较高,临床需要谨慎应用这类药物治疗感染,但对于利奈唑胺、万古霉素、喹诺酮类药物,肺炎链球菌仍无耐药菌株检出。

肠杆菌科细菌对碳青霉烯类仍保持较高的敏感性,对亚胺培南和美罗培南的敏感性接近全敏感。大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌中产ESBLs的检出率分别为56.7%和18.6%,均比2011年西南地区的71.2% 和50.3%低[7]。出现36株碳青霉烯类抗菌药物耐药的菌株,主要是非发酵革兰阴性杆菌。该类细菌常带有多种耐药基因,如AmblerA、B、D组β-内酰胺酶中的碳青霉烯酶基因,某些ESBLs(如CTX-M 家族)、Ampcβ-内酰胺酶等,外膜孔蛋白低表达或缺失及其他耐药基因,因而往往同时对β-内酰胺类、β-内酰胺酶复方抑制剂、氨基糖苷类和喹诺酮类等药物耐药,容易成为多重耐药和泛耐药的细菌,其所致感染罹患率和病死率高,有效治疗药物少,给临床治疗带来很大的困难[8-10]。流感嗜血菌对广谱青霉素类耐药性较高,但对含β-内酰胺酶抑制剂的复方制剂敏感性明显高于单药,提示其主要耐药机制是产生β-内酰胺酶[11]。

MRSA具有多重耐药性,是临床抗感染治疗的重点和难点,且具有重要的流行病学意义[12]。本组资料显示,MRSA检出率为17.1%,远低于西南地区2011年的56.9%[7]。糖肽类、利奈唑胺是治疗 MRSA感染的有效药物[13],本监测中未发现对万古霉素、奎奴普丁/达福普汀、替加环素和利奈唑胺不敏感的葡萄球菌属。

2013年耐药监测结果表明,本院院内感染病原种类复杂,耐药性高,因此如何避免院内感染的发生是一个迫切需要解决的问题[14]。微生物实验室应当加强医院细菌耐药监测,及时、准确地把监测结果反馈给临床和相关职能部门,为临床合理使用抗菌药物提供试验依据[15]。而临床在积极治疗的同时应采取更加有效地防止交叉感染和消毒灭菌措施,共同降低院内感染的可能性。

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