阿尔茨海默病:自噬与β淀粉样肽关系的研究进展

2015-01-24 17:04贺,王蓉,2,3,4
中国比较医学杂志 2015年8期
关键词:溶酶体退行性阿尔茨海默

金 贺,王 蓉,2,3,4

(1.首都医科大学宣武医院中心实验室,2.北京市老年医疗研究中心,3.北京脑重大疾病研究院,4.神经变性病教育部重点实验室,北京 100053)

阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)又称老年性痴呆,是一种最常见的中枢神经系统退行性疾病。该病起病隐匿,呈渐进性发展,患者主要表现为记忆力下降、认知能力减退,最终导致生活自理能力完全丧失[1]。随着社会人口老龄化的进展,AD已严重威胁人类健康,庞大的患者群体给家庭和社会带来了沉重的精神和经济负担。但该病的发病机制目前尚未明确。尸检研究证实β淀粉样肽(β-amyloid peptide,Aβ)沉积形成的老年斑(senile plaque,SP)和神经元纤维缠结(nerve fiber tangles,NFT)是AD的两大病理特征,并且已经被列入AD的诊断标准[2,3]。由于寡聚态的Aβ具有神经毒性,可引发复杂的级联反应,最终导致神经元死亡和疾病的发生[4],其产生过多或清除障碍在AD的发生发展过程中扮演重要角色。而自噬作为细胞内清除异常折叠蛋白质、受损细胞器和其他有害物质的主要途径,对β淀粉样肽产生和清除的平衡具有重要作用[5]。笔者拟就目前AD中有关自噬与β淀粉样肽关系的研究进展做一综述。

1 自噬

泛素-蛋白酶体系统和自噬溶酶体系统是真核细胞降解和循环利用细胞内物质的两种主要途径,泛素-蛋白酶系统主要降解短半衰期蛋白质,而自噬主要降解长半衰期蛋白质和细胞器[6]。因此自噬是维持细胞正常周期的必要程序。根据底物进入到溶酶体腔途径的不同,哺乳动物自噬可分为三类:大自噬 (macroautophagy)、小自噬(microautophagy)和分子伴侣介导的自噬(chaperone-mediated autophagy)[7]。由于大自噬是自噬的主要途径,本文所述及的自噬均指大自噬。自噬途径起始于细胞内形成双层膜结构的自噬泡,自噬泡包裹细胞内受损细胞器和聚集的蛋白质,并逐渐延长、融合,形成自噬小体,自噬小体进一步与溶酶体融合形成自噬溶酶体,溶酶体内水解酶降解加工底物以维持细胞内代谢平衡[6]。自噬过程受30多种自噬相关基因(autophagy-related gene,Atg)以及其他分子的调控,分为启动、延长、融合、降解四个步骤。在自噬的启动和延长阶段主要受哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)途径以及PI3KIII型途径的调节;自噬体与溶酶体融合的过程受LC3、beclin-1、LAMP1和2及早老素1等的调控;而溶酶体内多种蛋白水解酶则参与自噬降解过程。由于大量研究表明异常聚集的蛋白质可以导致细胞器损害、突触功能障碍和神经元退化,因此自噬作为清除细胞外异常聚集蛋白质的主要途径,其在中枢神经系统退行性疾病的发生发展中具有重要作用[8]。

2 自噬与AD

2.1 自噬功能紊乱与AD发病

AD是一种以渐进性痴呆为特征性临床表现的中枢神经系统退行性疾病,病理改变主要有脑萎缩,细胞外Aβ形成的老年斑沉积和细胞内tau蛋白磷酸化形成的神经元纤维缠结。近年来很多学者认为,作为老年斑主要成分的Aβ可能是AD的原发性病理因子[9]。在正常情况下Aβ的产生和降解保持平衡。大量证据表明无论是AD模型还是AD患者,自噬功能异常均与Aβ的产生、清除及其诱导的神经毒性密切相关。Aβ沉积之前,PS1/APP小鼠神经细胞内就已发现大量自噬小体的存在,8周龄小鼠神经细胞自噬囊泡数目较正常小鼠高5倍,而9月龄小鼠则至少高23倍[10,11]。而且自噬相关标志物Atg5、Atg12和LC3与AD的老年斑沉积和神经原纤维缠结等病理改变相关[12]。对AD相关基因的研究也表明PS-1、GSK-3β可通过干扰溶酶体酸化和自噬降解过程而介导AD的发生[13,14],而早发型AD相关基因APP突变及过表达ApoE4均可导致自噬溶酶体功能损害[15],提示自噬溶酶体途径参与AD的发生发展。

2.2 自噬调控与AD的防治

多项研究业已证实,以自噬途径为靶点进行干预是改善AD病理表现行之有效的方法。例如雷帕霉素、Dimebon等可通过抑制mTOR活性激活自噬从而改善AD动物模型的病理和行为学表现[16,17]。亮氨酸缺乏可引起引起SH-SY5Y细胞发生自噬,并且Aβ随之减少[18]。牛蒡子提取物牛蒡子甘元既可通过促进自噬而增加Aβ清除又可减少Aβ生成[19]。并且条件性去除小鼠中枢神经系统的自噬相关蛋白(ATGs)可导致其自噬功能丧失并伴随泛素化蛋白的聚集和神经退行性病变的发生[20,21]。ATG5基因敲除或beclin1和Ulk1基因沉默细胞Aβ和βCTF水平显著升高[22]。但自噬在AD发生发展中的具体作用机制目前尚不清楚,所以探讨自噬与Aβ产生和清除之间的关系具有重要意义。

3 自噬与Aβ

3.1 自噬影响Aβ的分泌

大量证据表明正常情况下自噬可以通过清除Aβ,对神经系统起到保护作用。α7型烟碱样乙酰胆碱受体(α7nAChR)是一种含半胱氨酸环的配体门控离子通道受体,对Ca2+具有高度通透性,可调节乙酰胆碱的释放,对认知和记忆功能有重要影响,并且在人类神经母细胞瘤细胞系SH-SY5Y细胞和海马CA1区及皮层广泛表达[23-27]。细胞实验表明在培养基中用外源性Aβ1-42处理使神经细胞中Aβ1-42聚集,后续用α7nAChR拮抗物α-BTX共作用可增强Aβ在SH-SY5Y细胞中的毒性作用,而用nAChR兴奋剂nicotine处理可增强α7nAChR与自噬小体的聚集,并抑制应用Aβ后导致的细胞死亡[28]。基因水平的研究也表明用Atg7siRNA抑制早期阶段自噬体的形成或用α7nAChR siRNA可以显著增强自噬诱导的神经毒性。故Shil-Ya Hung等认为是α7nAChR作为载体将Aβ转运至细胞质,经自噬途径降解,从而抑制Aβ的细胞毒性[28]。在动物模型中Nordberg和Hellstrom-Lindahl分别用长期(4.5月)和短期(10天)的nicotine处理都可以减少APPsw小鼠脑内Aβ的沉积和不可溶性Aβ,而不影响可溶性Aβ、α/β/γ分泌酶活性和APP合成,提示nicotine诱导的自噬增强可能在细胞外Aβ的清除中发挥作用[29,30]。溶酶体组织蛋白酶 B(CSTB)是木瓜蛋白酶家族中的一种半胱氨酸蛋白酶,可降解溶酶体系统内的多肽和蛋白质。Dun-Sheng Yang等在TgCRND8小鼠中敲除CSTB基因,以加强CSTB活性,发现小鼠脑组织中Aβ沉积现象明显改善,Aβ40和Aβ42水平显著下降,并且在惊恐试验和嗅觉记忆实验中与对照组相比表现出更好的学习和记忆能力[31,32]。而 CSTB 缺失的小鼠脑内 Aβ1-42水平升高,Aβ斑块过度沉积[33]。又PADK作为一种溶酶体调节剂,可以升高CSTB水平及其活性,减少AD小鼠脑组织中的Aβ沉积[34]。ATG5基因敲除或Beclin1和Ulk1基因沉默细胞Aβ和βCTF水平显著升高[22]。

3.2 Aβ聚集与自噬诱导的神经系统退行性疾病

虽然自噬通过清除异常聚集的蛋白质发挥神经保护作用已被大家广泛接受和认可,但随着研究的深入,有些学者认为异常的自噬反而导致了造成神经系统退行性病变的异常聚集蛋白质的产生,对细胞具有损伤作用[35]。自噬的功能可受多种因素的影响,如衰老、营养不良、氧化应激、小分子物质等。例如Aβ既可以被自噬途径清除,又可以作为调控点来诱导自噬以维持其自身的平衡[28,36,37]。正常情况下Aβ清除障碍可激活beclin1诱导的自噬正调控通路,使其对Aβ清除能力增强,对抗Aβ毒性引起的神经损伤[28]。但研究表明AD病人早期脑内beclin1蛋白表达减少,beclin1缺乏使自噬体成熟过程受阻,AVs积累,造成 Aβ生成增加[8]。这提示一旦自噬功能障碍可使Aβ不能被有效清除。Nixon等用免疫电子显微镜研究显示,在AD患者脑内营养不良神经突的神经细胞内自噬泡和自噬小体显著聚集,也提示在AD中自噬介导的蛋白质降解途径发生进展性功能障碍[38]。而在Yu等研究中发现无论在神经细胞还是非神经细胞(过表达野生型人类APP的转基因小鼠肝细胞)自噬囊泡中均富集Aβ、APP羧基末端(C末端)片段β-CTF和早老素依赖性 γ分泌酶,认为自噬体可产生Aβ[10,11]。但其具体机制尚不清楚,有待于进一步研究。

4 总结与展望

综上所述,在正常情况下,神经元自噬功能活跃[39],APP可在自噬溶酶体中剪切生成Aβ,随后被自噬溶酶体清除,以防止Aβ聚集[40]。但随着年龄增长,基因作用,代谢产物聚集等因素的影响,体内自噬溶酶体的降解过程受损,自噬能力减弱,Aβ的清除变慢,游离的Aβ增加达到一定浓度时,就会聚集、沉积,从而产生细胞毒性,并进一步阻止自噬的更新[10]。所以明确自噬功能在AD不同阶段的变化情况,在体内Aβ达到临界浓度之前,以自噬过程中某些信号分子为靶点进行干预,以期阻止Aβ的沉积,对于防治AD的发生发展具有重要的理论意义和广阔的应用前景。

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