塞来昔布联合NK细胞对裸鼠人肝癌皮下移植瘤生长的影响

2014-12-02 04:33:54郭雪兴刘军权陈剑群
山东医药 2014年29期
关键词:塞来肝癌体积

陈 超,郭雪兴,刘军权,陈剑群

(1徐州医学院,江苏徐州221002;2中国人民解放军第九七医院;3徐州医学院附属医院)

研究表明,环氧合酶(COX-2)在肝癌细胞中高表达,并与肝癌的分化程度、转移、预后密切相关。特异性COX-2抑制剂塞来昔布通过诱导凋亡、减少增殖对多种肝细胞癌有显著的抑制作用。自然杀伤(NK)细胞为机体固有免疫细胞,其抗瘤谱较广,包括肝癌在内的多种肿瘤在使用NK细胞输注后得到缓解。但肝癌单一方案治疗效果多不令人满意,易产生耐药性,且毒副作用大。为此,2013年4~11月,我们观察了塞来昔布与NK细胞联用对裸鼠人肝癌细胞SMMC-7721皮下移植瘤生长的影响,并初步探讨其可能的作用机制。

1 材料与方法

1.1 材料 雄性BALB/c(nu/nu)裸鼠40只,4周龄,体质量18~20 g,购自中国科学院上海实验动物中心。人肝癌SMMC-7721细胞株购自中国科学院上海细胞库。SP免疫组化试剂盒和鼠抗人血管内皮生长因子(VEGF)单克隆抗体、Bcl-2兔抗人多克隆抗体、Bax兔抗人多克隆抗体、DAB显色试剂盒均购自北京中杉金桥生物技术有限公司;原位细胞凋亡(TUNEL)检测试剂盒购于Roche公司,核因子-κB(NF-κB)兔抗人单克隆抗体和caspase-3兔抗人单克隆抗体购于Abcam公司。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养 人肝癌 SMMC-7721细胞株在37℃、5%CO2条件下,置于含10%胎牛血清的DMEM细胞培养基中,采用0.25%的胰蛋白酶消化传代。NK细胞的培养及鉴定:取健康人外周抗凝血10 mL,淋巴细胞分离液分离单个核细胞,用含500 U/mL rhIL-2的NK细胞培养基调整单核细胞密度为5×108/L,于37℃、5%CO2培养箱培养,每2 d换液1次,收集培养10 d的NK细胞,加入Per-CP-Cy5.5标记的CD3、FITC标记的CD56进行细胞表面标志检测,同型对照为 PerCP-Cy5.5标记的IgG1和FITC标记的小鼠IgG2b。

1.2.2 裸鼠移植瘤模型构建 无菌环境下,取对数生长期SMMC-7721细胞,制成细胞悬液,调整细胞密度至4×107/mL,接种于裸鼠右侧背部皮下,每只注射0.1 mL,制备裸鼠移植瘤模型。

1.2.3 动物分组及给药 随机将裸鼠分为对照组、NK细胞组、塞来昔布组和联合干预组,每组10只。塞来昔布组从接种后第3天起给予塞来昔布100 mg/kg灌胃,每天给药1次,连续35 d;NK细胞组采用瘤内注射NK细胞治疗,每只瘤内注射NK细胞悬液0.6 mL,每7 d注射1次,共注射5次;联合干预组同时给予塞来昔布和NK细胞,给药剂量及途径与单用组相同;对照组同时给予灌胃和瘤内注射等量生理盐水。

1.2.4 肿瘤体积观察及肿瘤抑制率计算 接种后第7、14、21、28、35 天用游标卡尺测量肿瘤长、短径,计算肿瘤体积。肿瘤体积=π/6×(长径×短径2),π取3.14。35 d后处死裸鼠,剥离完整肿瘤组织,记录肿瘤质量(瘤重),计算肿瘤抑制率。肿瘤抑制率=(空白对照组瘤重-实验组瘤重)/空白对照组瘤重×100%。

1.2.5 移植瘤 VEGF、Bax、Bcl-2、NF-κB、caspase-3表达检测 ①肿瘤组织经10%甲醛固定后,石蜡包埋,4 μm厚连续切片。②抗原修复。③3%H2O2去离子水孵育,去除内源性过氧化物酶活性,PBS冲洗。④滴加封闭液封闭。⑤滴加适当比例的一抗稀释液(用PBS稀释,现配现用,VEGF为1∶300,Bax和 Bcl-2 为 1∶150,NF-κB 和 caspase-3 为1∶300),37℃孵育2 h。⑥PBS冲洗。⑦滴加二抗工作液,37℃孵育15 min。⑧PBS冲洗。⑨滴加辣根过氧化物酶标记的卵白素工作液,37℃孵育15 min。⑩PBS冲洗,DAB显色,自来水冲洗。进行复染、脱水、透明,用中性树胶封片。检测肿瘤组织中VEGF、Bax、Bcl-2、NF-κB、caspase-3 的表达情况,用软件 Image Pro Plus软件进行半定量分析处理。

1.2.6 移植瘤TUNEL检测 石蜡切片经脱蜡后,按Roche公司TUNEL检测试剂盒说明操作。在光学显微镜下,随机选择10个高倍镜视野,计数凋亡细胞,凋亡细胞的百分比作为凋亡指数(AI),即AI=凋亡细胞数目/有核细胞的总数×100%。

1.2.7 统计学方法 采用SPSS13.0统计软件,计量资料以±s表示,多组间比较采用单因素方差分析。P≤0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 各组常规病理HE染色观察 对照组肿瘤细胞生长旺盛,核固缩较少,片状坏死区面积较小,瘤组织内及其周围微血管丰富;各单用组均可见不同程度的片状坏死,瘤组织内及其周围微血管均减少;联合干预组可见大片细胞坏死。

2.2 各组移植瘤体积变化及治疗结束后肿瘤质量、抑瘤率比较 见表1、2。

2.3 各组移植瘤中 VEGF、Bcl-2、NF-κB、Ki-67、Bax和caspase-3表达比较 见表3。

表1 各组不同时间肿瘤体积比较(mm3,±s)

表1 各组不同时间肿瘤体积比较(mm3,±s)

注:与对照组相比,*P <0.05;与联合干预组比较,ΔP <0.05;与塞来昔布组比较,#P <0.05

组别 n肿瘤体积7 d 14 d 21 d 28 d 35 d NK 细胞组 10 262.35 ± 63.36*Δ# 370.85 ±123.54*Δ# 588.79 ±275.02*Δ 832.04 ±353.99*Δ 1 014.42 ±480.42*Δ塞来昔布组 10 118.93±121.16*Δ 205.36±152.25*Δ 356.79±255.35*Δ 517.57±274.77*Δ 727.28±461.33*Δ联合干预组 10 58.97 ± 43.64* 76.30 ± 41.03* 193.09 ±131.34* 298.94 ±238.74* 307.13 ±157.00*对照组 10 413.35 ±140.09 591.95 ±215.48 1 014.50 ±298.02 1 368.01 ±488.14 1 714.09 ±729.93

表2 各组治疗结束后肿瘤质量、抑瘤率比较

2.4 各组移植瘤细胞凋亡情况比较 对照组AI为1.32 ±0.34、NK 细胞组为 3.38 ±1.06、塞来昔布组为5.38 ±0.82、联合干预组为9.52 ±1.02。各用药组AI明显高于对照组(P均<0.05),且联合干预组明显高于各单用组(P均<0.05)。

3 讨论

3.1 NK细胞及塞来昔布对肿瘤细胞的作用 NK细胞是机体抑制肿瘤生长的重要免疫监视细胞[1]。研究表明,肝癌微环境中高表达NK细胞,在抗肿瘤细胞增殖方面具有重要作用,体外培养激活的NK细胞对肝癌细胞亦有明显的杀伤作用[2,3]。塞来昔布为特异性COX-2抑制剂,具有广泛的抗肿瘤效应。体内研究证明,塞来昔布可抑制肝癌细胞增殖,促进细胞凋亡,抑制肿瘤新生血管形成等[4]。临床研究发现,体外索拉非尼、γ-生育三烯酚、氟伐地汀等与塞来昔布联用能增强塞来昔布对肝癌的抑制作用[5,6]。本研究发现,塞来昔布和NK细胞单用组较对照组肿瘤生长明显缓慢,联合干预组肿瘤生长最慢,瘤体体积、质量最小,抑瘤率最高,与实验预期一致。

表3 各组移植瘤中 VEGF、Bcl-2、NF-κB、Ki-67、Bax 和 caspase-3 达比较(±s)

表3 各组移植瘤中 VEGF、Bcl-2、NF-κB、Ki-67、Bax 和 caspase-3 达比较(±s)

注:与对照组相比,aP <0.05;与联合干预组比较,bP <0.05;与塞来昔布组比较,cP <0.05

组别 n VEGF Bcl-2 NF-κB Ki-67 Bax caspase-3 NK细胞组 10 273 460±14 831abc513 110± 31 174abc 35 774±2 831abc1 711 700±337 577ab 84 589± 7 098abc 90 680±10 347abc塞来昔布组 10 114 940±20 317ab 133 600± 21 524ab 13 826±3 126ab1 367 700±152 867ab118 400± 6 925ab 235 740±20 294ab联合干预组 10 29 512± 4 879a 31 420± 4 449a 7 354±1 860a 602 750±212 556ab211 550±17 993a 387 910±14 066a对照组 10 400 470±32 087 723 850±288 347 62 557±4 2732 457 000±395 397 30 441± 5 259 21 427± 5 821

3.2 塞来昔布联合NK细胞对肿瘤组织生长、转移的作用 肝癌是一种富血管性肿瘤,其生长、侵袭、转移依赖于新生血管的形成。VEGF是目前最有效的促血管生长因子,在肝癌中高表达,对肝癌新生血管形成及肿瘤生长和转移具有重要作用[7]。既往研究发现,肝癌细胞中COX-2的表达与VEGF呈正相关[8],以VEGF及其受体 VEGFR为靶点的药物能抑制体内肝癌细胞生长和肿瘤血管生成[9,10]。本研究结果显示,NK细胞组、塞来昔布组、联合干预组移植瘤中VEGF的表达明显低于对照组,且联合干预组 VEGF的表达明显低于各单用组,与 Xu等[11]报道一致。

3.3 塞来昔布联合NK细胞对肿瘤细胞增殖的作用 Ki-67是一种细胞增殖核抗原,与细胞的有丝分裂过程密切相关[12]。Ki-67在正常细胞中一般不表达或者低表达,在肿瘤细胞中高表达,是目前标记肿瘤细胞增殖状态和恶性程度的可靠指标[13]。本研究结果显示,人肝癌细胞SMMC-7721移植瘤经塞来昔布、NK细胞作用后,Ki-67蛋白表达水平较对照组显著下降,且联合干预组Ki-67蛋白表达水平较单用组显著下降,提示塞来昔布和NK细胞联用可能通过调节细胞周期,减少增殖期的细胞数目,达到抑制肿瘤细胞增殖的作用。

3.4 塞来昔布联合NK细胞对肿瘤组织生长代谢的作用 NF-κB是一种转录因子蛋白,在肿瘤的生长中起到重要作用。研究表明,肝癌细胞中 NF-κB高表达,多种致癌因素可通过激活NF-κB促进细胞增殖、抑制凋亡、使细胞发生恶变并促进肿瘤细胞的转移,抑制NF-κB活性可以抑制肝癌细胞增殖、促进凋亡、增加肝癌细胞对化疗药物的敏感性、抑制炎症、减少肝癌血管生成等[14]。本研究结果显示,各用药组移植瘤中NF-κB的表达均明显低于对照组,联合干预组NF-κB的表达明显低于各单用组。进一步验证了塞来昔布是通过抑制HepG2细胞NF-κB因子DNA结合活性和NF-κB因子p65蛋白的表达,从而抑制肿瘤细胞增殖,促进细胞凋亡,抑制肿瘤新生血管形成[15]。

3.5 塞来昔布联合NK细胞对肿瘤细胞凋亡的作用 细胞凋亡的线粒体途径通过Bcl-2家族促凋亡Bax/Bak基因与抗凋亡基因Bcl-2、Bcl-xL基因的平衡来调控[16]。caspase是一组半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶[17],其中 caspase-3 为凋亡执行蛋白[18]。当Bcl-2/Bax升高,线粒体内cyt-c向胞质释放,从而激活胞质内上游凋亡蛋白caspase-9的表达,caspase-9诱导其下游终末凋亡蛋白 caspase-3的分裂,使caspase-3从无活性形式分裂为17及19亚单位的活性形式,最终诱导细胞凋亡[19]。鉴于 Bcl-2、Bax、caspase-3对细胞凋亡的重要性,本研究观察了各组移植瘤中Bcl-2、Bax、caspase-3表达情况,结果显示,NK细胞组、塞来昔布组、联合干预组移植瘤中Bcl-2的表达显著低于对照组,联合干预组Bcl-2的表达显著低于各单用组,且各用药组移植瘤中Bax和caspase-3的表达较对照组显著增加,联合干预组Bax和caspase-3的表达较单用组明显增加。与Winfield 等[20]报道一致。

综上所述,塞来昔布联合NK细胞具有良好的协同增效作用,可明显抑制裸鼠人肝癌细胞SMMC-7721皮下移植瘤的生长;其作用机制可能与促进凋亡受体通路上的Bax、caspase-3的表达,抑制VEGF、Bcl-2、NF-κB、Ki-67 的表达有关。

[1]Langers I,Renoux VM,Thiry M,et al.Natural killer cells:role in local tumor growth and metastasis[J].Biologics,2012,6:73-82.

[2]Gong J,Liu R,Zhuang R,et al.miR-30c-1* promotes natural killer cell cytotoxicity against human hepatoma cells by targeting the transcription factor HMBOX1[J].Cancer Sci,2012,103(4):645-652.

[3]Chew V,Tow C,Huang C,et al.Toll-like receptor 3 expressing tumor parenchyma and infiltrating natural killer cells in hepatocellular carcinoma patients[J].J Nati Cancer Inst,2012,104(23):1796-1807.

[4]Elrod HA,Yue P,Khuri FR,et al.Celecoxib antagonizes perifosine's anticancer activity involving a cyclooxygenase-2-dependent mechanism[J].Mol Cancer Ther,2009,8(9):2575-2585.

[5]Shieode AB,Sylvester PW.Synergistic anticancer effects of combined gamma-tocotrienol and celecoxib treatment are associated with suppression in Akt and NFkappaB signaling[J].Biomed Pharmacother,2010,64(5):327-332.

[6]Cervello M,Bachvarov D,Lampiasi N,et al.Novel combination of sorafenib and celecoxib provides synergistic anti-proliferative and pro-apoptotic effects in human liver cancer cells[J].PLoS One,2013,8(6):e65569.

[7]Takino J,Yamagishi S,Takeuchi M.Glycer-AGEs-RAGE signaling enhances the angiogenic potential of hepatocellular carcinoma by upregulating VEGF expression[J].World J Gastroenterol,2012,18(15):1781-1788.

[8]Kumar BN,Rajput S,Dey KK,et al.Celecoxib alleviates tamoxifen-instigated angiogenic effects by ROS-dependent VEGF/VEGFR2 autocrine signaling[J].BMC Cancer,2013,13:273.

[9]Kaseb AO,Hassan MM,Lin E,et al.V-CLIP:integrating plasma vascular endothelial growth factor into a new scoring system to stratify patients with advanced hepatocellular carcinoma for clinical trials[J].Cancer,2011,117(11):2478-2488.

[10]Bi Q,Tang S,Xia L,et al.Ectopic expression of MiR-125a inhibits the proliferation and metastasis of hepatocellular carcinoma by targeting MMP11 and VEGF[J].PLoS One,2012,7(6):e40169.

[11]Xu K,Gao H,Shu HK.Celecoxib can induce vascular endothelial growth factor expression and tumor angiogenesis[J].Mol Cancer Ther,2011,10(1):138-147.

[12]Inwald EC,Klinkhammer-Schalke M,Hofstadter F,et al.Ki-67 is a prognostic parameter in breast cancer patients:results of a large population-based cohort of a cancer registry[J].Breast Cancer Res Treat,2013,139(2):539-552.

[13]Pichu S,Krishnamoorthy S,Shishkov A,et al.Knockdown of Ki-67 by dicer-substrate small interfering RNA sensitizes bladder cancer cells to curcumin-induced tumor inhibition[J].PLoS One,2012,7(11):e48567.

[14]Lampiasi N,Azzolina A,Umezawa K,et al.The novel NF-κB inhibitor DHMEQ synergizes with celecoxib to exert antitumor effects on human liver cancer cells by a ROS-dependent mechanism[J].Cancer Lett,2012,322(1):35-44.

[15]Salcido-Neyoy ME,Sierra-Santoyo A,Beltran-Ramirez O,et al.Celecoxib enhances the detoxification of diethylnitrosamine in rat liver cancer[J].World J Gastroenterol,2009,15(19):2345-2350.

[16]Marin JJ,Hernandez A,Revuelta IE,et al.Mitochondrial genome depletion in human liver cells abolishes bile acid-induced apoptosis:Role of the Akt/mTOR survival pathway and Bcl-2 family proteins[J].Free Radic Biol Med,2013,61C:218-228.

[17]Sharma S,Singh RL,Kakkar P.Modulation of Bax/Bcl-2 and caspases by probiotics during acetaminophen induced apoptosis in primary hepatocytes[J].Food Chem Toxicol,2011,49(4):770-779.

[18]Nasiraei-Moghadam S,Kazeminezhad B,Dargahi L,et al.Maternal oral consumption of morphine increases Bax/Bcl-2 ratio and caspase 3 activity during early neural system development in rat embryos[J].J Mol Neurosci,2010,41(1):156-164.

[19]Zhu AK,Zhou H,Xia JZ,et al.ZiyuglycosideⅡ-induced apoptosis in human gastric carcinoma BGC-823 cells by regulating Bax/Bcl-2 expression and activating caspase-3 pathway[J].Braz J Med Biol Res,2013,46(8):670-675.

[20] Winfield LL,Payton-Stewart F.Celecoxib and Bcl-2:emerging possibilities for anticancer drug design[J].Future Med Chem,2012,4(3):361-383.

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