杨玉梅 杨仁斌 肖少怀 韩凤 彭莎
摘 要:采用高效液相色谱法分析测定番茄及其种植土壤中的霜脲氰残留,对样品的提取净化条件进行了优化。结果表明:以50 mL二氯甲烷为提取溶剂,番茄样品高速匀质2 min,土壤样品恒温(30℃)振荡提取60 min时,霜脲氰的提取净化效果较好。在试验所设色谱条件下,霜脲氰标准溶液的相对保留时间为7.43 min;在0.4~80 ng范围内,霜脲氰峰面积与进样量线性关系良好。添加回收试验结果表明:该方法的最低检出限为0.04 mg/kg,在灵敏度、准确度及精密度上均符合农药残留分析的要求,可用于实际生产中番茄和土壤样品中霜脲氰的残留检测。
关键词:霜脲氰;高效液相色谱法;番茄;土壤;添加回收率
中图分类号:O657.7 文献标识码:A 文章编号:1006-060X(2014)02-0052-23
Determination of Cymoxanil Residue in Tomato and Tomato Planted Soil by HPLC
YANG Yu-mei, YANG Ren-bin, XIAO Shao-huai, HAN Feng, PENG Sha
(Institute of Environmental Protection, HNAU, Changsha 410128, PRC)
霜脲氰(cymoxanil),化学名称为1-(2-氰基-2-甲氧基亚氨基乙酰基)-3-乙基脲,是一种高效、低毒杀菌剂,对疫霜属、霜霉属、单轴霜属等霜霉目真菌有较好防效。霜脲氰与其他保护性杀菌剂结合,广泛应用于黄瓜、番茄、葡萄、荔枝等蔬菜及水果生产中[1-3]。目前,欧盟规定霜脲氰在番茄中的MRL值为0.2 mg/kg,而国际食品法典委员会(CAC)和我国均未对其作出规定。
近年来,已有相关研究报道了霜脲氰在马铃薯、黄瓜等作物上的残留分析方法,例如:何丽丽等[4]采用乙酸乙酯和丙酮分别提取马铃薯和土壤中的霜脲氰,经弗罗里硅土柱净化,采用高效液相色谱测定其残留量;李二虎等[5]采用乙腈提取,经弗罗里硅土柱净化,采用高效液相色譜法测定了黄瓜和土壤中霜脲氰的残留量;刘明洋等[6]采用丙酮和乙酸乙酯分别提取,经弗罗里硅土柱净化,采用高效液相色谱测定了葡萄和土壤中的霜脲氰残留量。然而,霜脲氰在番茄及其种植土壤中的残留分析方法暂未见报道。因此,在现有的研究基础上,试验优化了番茄及其种植土壤中霜脲氰残留检测的前处理条件,并根据欧盟的规定进行了添加回收试验。
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 主要仪器 岛津LC-20AT型高效液相色谱仪(配紫外检测器及LCsolution工作站,日本岛津公司);RE-2000型旋转蒸发器(上海亚荣生化仪器厂);KYC-1102C型恒温(全温)双层培养摇床(上海福玛实验设备有限公司);KQ-C型玻璃仪器气流烘干器(巩义市英峪予华仪器厂);HYD-6528型匀浆机(中山市好运达电器有限公司);DLSB-5L/25型低温冷却液循环泵,SHZ-D(Ⅲ) 型循环水式真空泵(巩义市予华仪器有限责任公司);FJ200-S型数显高速分散均质机(上海标本模型厂);电子天平(上海光正医疗仪器有限公司);梨形抽滤瓶、具塞三角瓶、250 mL分液漏斗等玻璃仪器。
1.1.2 主要试剂 霜脲氰标准品(纯度为93.26%,农业部农药检定所);甲醇(色谱纯);二氯甲烷、氯化钠、弗罗里硅土、无水硫酸钠(均为分析纯)。
1.2 试验方法
1.2.1 样品的制备 新鲜番茄样品沿纵向均匀切成四瓣,取不相邻的两瓣,用匀浆机粉碎;土壤样品去掉砂石和动植物残体等非土壤组分,过20目筛,混合均匀后按四分法取样。将处理后的样品分别装入容器中贴好标签,待测(注意:待测样品如果不能及时测定,需贮藏在洁净的聚乙烯塑料袋中于-20℃低温下保存)。
1.2.2 提取与净化 (1)提取溶剂。霜脲氰易溶于氯仿、丙酮等有机试剂,可溶于甲醇,现有文献中霜脲氰残留检测常用的提取试剂有乙酸乙酯、丙酮及乙腈等。试验分别以二氯甲烷、丙酮、甲醇、乙酸乙酯、乙腈等有机溶剂为提取溶剂,比较这些溶剂对番茄及其种植土壤中霜脲氰的提取和净化效果,以确定最适提取溶剂。(2)溶剂用量。分别用40、50、60、70、80 mL的二氯甲烷溶液提取番茄及其种植土壤中霜脲氰,根据提取效果确定最佳溶剂体积。(3)提取时间。试验设1、2、3、4、5 min 5个不同匀质提取时间,以及30、60、90、120 min 4个不同振荡提取时间,分别比较二氯甲烷对番茄及其种植土壤样品中霜脲氰的提取效果,以确定最佳的提取时间。
1.2.3 色谱条件 采用Inertsil ODS-SP色谱柱(5 μm,250 mm×4.6 mm),以甲醇︰水=50︰50(V︰V)为流动相,流速 1 mL/min,柱温 40 ℃,波长 250 nm,进样量 20 μL。
1.2.4 标准曲线绘制 采用外标法进行定量分析。操作如下:准确称取霜脲氰标准品0.053 61 g于50 mL棕色容量瓶中,用色谱纯甲醇溶解并定容,配制成1 000 mg/L的霜脲氰母液。采用梯度稀释法,用色谱甲醇配制浓度为0.02、0.04、0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、4.0 mg/L的霜脲氰系列标准溶液,按1.2.3所述色谱条件进行测定。以霜脲氰标准溶液的质量浓度(mg/L)为横坐标,测得的相应色谱峰峰面积(mV·s)为纵坐标绘制霜脲氰标准曲线。
1.2.5 添加回收试验 (1)检出限。在20 g番茄和土壤空白样品中分别添加低质量浓度的霜脲氰标准溶液,按1.2.1的样品制备法及1.2.3所述色谱条件,以确定该检测方法的最低检出限。(2)添加回收试验。在番茄和土壤空白样品中添加霜脲氰标准溶液,制备成浓度为0.05、0.50、2.00 mg/kg的样品,按1.2.1的样品制备法及1.2.3所述色谱条件,平行测定5 次,同时设置空白试验。
2 结果与分析
2.1 提取条件优化
与丙酮、甲醇、乙酸乙酯、乙腈等溶剂相比,二氯甲烷的提取效果最为明显,因此确定二氯甲烷溶剂为提 取剂。随着溶剂体积增加,二氯甲烷的添加回收率逐渐升高,当溶剂体积增加至50 mL 时,回收率达到90%以上;继续增加溶剂体积,提取效果无明显变化。因此,试验选择二氯甲烷用量为50 mL。在番茄样品匀质2 min、土壤样品振荡60 min时,提取效果较好,持续延长提取时间,霜脲氰的提取量无明显增长趋势。因此,试验选择番茄样品的提取时间为2 min,土壤样品的提取时间为60 min。
最后确定番茄及其种植土壤的提取净化操作如下。(1)番茄样品:准确称取20 g待测番茄样品于250 mL具塞三角瓶中,加50 mL二氯甲烷提取,以1 800 r/min匀质2 min,静置5 min;将样品转入离心管中,以3 000 r/min离心5 min,静置3 min;将上清液转入已加有20 mL 10%氯化钠溶液的250 mL分液漏斗中,振荡1 min,静置分层,分离出下层有机相;依次用30、30、20 mL的二氯甲烷萃取3次,有机相(萃取液)经无水硫酸钠脱水后,合并于250 mL具塞三角瓶中。(2)土壤样品:准确称取20 g已制备的待测土壤样品于250 mL具塞三角瓶中,加50 mL二氯甲烷,于30℃恒温振荡提取60 min,静置5 min后减压抽滤,再用30 mL二氯甲烷洗涤滤渣和抽滤瓶,滤液过无水硫酸钠脱水后,合并于250 mL具塞三角瓶中。经上述处理后的番茄和土壤样品液上旋转蒸发仪,40℃浓缩至近干,加2 mL色谱甲醇(超声波助溶)溶解,再用色谱甲醇定容至5 mL,过0.45 μm膜,待HPLC测定。
2.2 线性范围
在试验的色谱条件下,霜脲氰标准溶液的相对保留时间为7.431 min(图1)。霜脲氰峰面积与进样量在0.4~80 ng范围内线性关系良好,回归方程为y = 55 909x – 834.66,相关系数R2= 0.999 9。
2.3 灵敏度、准确度和精密度
该方法对番茄和土壤样品中霜脲氰的最低检出限均为0.04 mg/kg(信噪比S/N=3)。由表1可知,霜脲氰在番茄中的平均添加回收率分别为87.88%、90.20%、86.90%,变异系數分别为2.53%、1.71%、2.78%;在土壤中的平均添加回收率为108.95%、96.23%、95.34%,变异系数分别为5.89%、3.85%、5.36%。这表明该方法在准确度和精密度上均达到农药残留分析要求,可用于实际药品的残留分析。番茄和土壤空白样品以及添加了霜脲氰的样品液相色谱图见图2、图3。
3 结 论
以50 mL二氯甲烷为提取溶剂,番茄样品高速匀质2 min,土壤样品恒温(30℃)振荡提取60 min时,霜脲氰的提取净化效果较好。在试验所设色谱条件下,霜脲氰标准溶液的相对保留时间为7.43 min;在0.4~80 ng范围内,霜脲氰峰面积与进样量线性关系良好,回归方程为y = 55 909 x – 834.66,相关系数R2= 0.999 9。添加回收试验结果表明:该方法对番茄和土壤样品中霜脲氰的最低检出限均为0.04 mg/kg。这说明该方法在灵敏度、准确度及精密度上均达到农药残留分析要求;同时,其前处理较简单,不需要特殊的仪器设备,可节约分析成本,且重复性好,可用于实际生产中番茄和土壤样品中霜脲氰的残留检测。
参考文献:
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[5] 李二虎,胡 敏. 高效液相色谱法测定黄瓜中霜脲氰和吡虫啉农药残留[J]. 现代农药,2008,(4):42-44 .
[6] 刘明洋,龚道新,任 竞,等. 葡萄和土壤中霜脲氰的残留分析方法[J]. 湖南农业大学学报(自然科学版),2009,35(2):195-199.
(责任编辑:成 平)