张佳琦 吕庆芳 董黎梨 李映志 叶春海
摘要[目的]对辣椒SRAP反应体系进行研究和优化,并利用优化体系对164对多态性引物进行筛选。[方法]采用单因素随机试验设计和L25(65)正交试验设计对辣椒SRAP反应体系中6种关键因素(退火温度、Taq DNA聚合酶、Mg2+、dNTPs、引物、模板DNA)进行体系优化,并以“泡椒”ד青皮大椒”的亲本和F1代为材料,利用聚丙烯胺酰胺凝胶进行筛选。[结果]辣椒SRAPPCR的最佳反应体系为:退火温度35.5 ℃,Taq DNA聚合酶1.0 U,模板DNA 2.25 ng/μl,dNTPs 0.2 mmol/L,引物0.4 μmoL/L,Mg2+ 2 mmol/L,总体积为20 μl。利用该体系,从164对SRAP引物组合中筛选出扩增条带清晰、多态性丰富、条带稳定的31对引物组合。[结论]该体系的建立与多态性引物组合的筛选为SRAP标记技术在辣椒育种中的应用奠定了基础。
关键词辣椒(Capsicum spp.);正交试验设计;单因素随机试验设计;SRAP;PCR
中图分类号S641.3文献标识码A文章编号0517-6611(2014)07-01913-04
辣椒(Capsicum spp.)是一种世界性的蔬菜作物,即可鲜食又可用作辣椒油、辣椒红素和辣椒素的提炼[1],同时含有丰富的VC和矿质元素[2],是我国人民饮食结构的重要组成部分。随着SSR(Simple sequence repeat,简单序列重复)、RAPD(Random Amplified polymorphism DNA,随机扩增多态性DNA)、ISSR(Inter-simple sequence repeat,简单序列重复区间扩增多态性)、AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism,扩增片断长度多态性)和SRAP(Sequence-Related Amplified Polymorphism,相关序列多态性)等DNA分子标记技术的发展,其在辣椒育种中的运用日益增多[3-10]。
SRAP标记是Li和Quiros开发的一种基于PCR ( polymerase chain reaction,聚合酶链式反应)的新型分子标记技术[11]。该标记通过独特的引物设计可对开放阅读框 (open reading frames,ORFs)进行扩增,因个体间内含子、启动子与间隔区长度不等而产生多态性。由于其具有多态性丰富、成本低廉、操作简便、稳定性好和高度共显性等特点[12],被广泛用于遗传多样性评价[13]、种质材料鉴定[14]和遗传图谱构建[15-18]等最早开展SRAPPCR反应体系的优化研究。随后,这一分子标记技术被用于辣椒的种子纯度检测[20-21]、遗传多样性分析[22-24]、辣椒杂种优势的预测[25]和自交系遗传关系评价[26]等方面。
由于SRAP分子标记直接扩增开放阅读框,提高了扩增结果与表型性状的相关性,可将分子标记与基因克隆直接结合起来[27],因此而成为遗传图谱构建的重要分子标记之一[28-31],但在辣椒遗传图谱构建中的应用还比较少。鉴于此,笔者构建 “泡椒”ד青皮大椒”的分离群体,通过SRAPPCR扩增体系优化,利用亲本和F1代材料筛选扩增多态性丰富且条带稳定的引物组合,以期为辣椒遗传图谱的构建奠定基础。
1材料与方法
1.1材料 以2013年3月种于广东雷州的青皮大椒、泡椒及其F1代植株为试验试材。Taq DNA聚合酶和dNTPs,均购自北京鼎国昌盛生物技术有限公司;1 000 bp DNA Marker,购自购自宝生物工程(大连)有限公司;SRAP引物,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;PCR仪,购自Biometra;凝胶电泳设备,购自北京鸿涛基业科技发展有限责任公司。
1.2基因组DNA的提取与检测 采用改良CTAB法[32]提取青皮大椒的总DNA,并采用紫外分光光度计法检测其浓度,于-20 ℃保存备用。
1.3SRAPPCR单因素随机试验 以青皮大椒总DNA为材料,以含Taq DNA聚合酶1 U、Mg2+ 2 mmol/L、模板2.5 ng/μl、dNTPs 0.2 mmol/L、引物0.4 μmol/L的20 μl反应体系为基础,分别改变退火温度(33、34、35、36和37 ℃)、Taq DNA聚合酶量(0.2、0.5、1.0、1.5和2.0 U)、模板浓度(0.5、1、2、2.5和5 ng/μl)、dNTPs浓度(0.05、0.10、0.20、0.25和0.50 mmol/L)、引物浓度(0.2、0.3、0.4、0.5和0.6 μmol/L)和Mg2+浓度(1.0、1.5、2.0、2.5和3.0 mmol/L),以EM6为正向引物、ME18为反向引物,进行5水平单因素随机试验,3次重复。
1.4扩增程序 参考Li和Quiros的方法:94 ℃,5 min;94 ℃,1 min,35 ℃,1 min,72 ℃,1 min,5个循环;随后将退火温度升至50 ℃,其他条件不变,进行35个循环;最后以72 ℃延伸10 min。扩增产物经6%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳后,银染检测[11]。
1.5SRAPPCR正交试验 以青皮大椒总DNA为模板,采用L25(65)正交试验设计(表1)。SRAP正向引物为EM6,反向引物为ME18,总反应体系20 μl,基本扩增程序按“1.4”中方法;重复2次。从扩增条带数、凝胶染色背景和带的强弱等方面综合评价扩增效果[33],以条带数为主,对所有结果按照效果好坏排序,取其排序的数字作为扩增效果的评价值,评价值越高,结果越好。