王晓天 刘晓梅 尤红娟 李小翠 秦苏萍 汤仁仙* 郑葵阳
(徐州医学院病原生物学与免疫学教研室,江苏 徐州 221004)
p38MAPK介导的Fas/FasL凋亡通路在缺血性脑损伤中的作用研究
王晓天 刘晓梅 尤红娟 李小翠 秦苏萍 汤仁仙* 郑葵阳
(徐州医学院病原生物学与免疫学教研室,江苏 徐州 221004)
目的 探讨p38MAPK介导的Fas/FasL凋亡通路在大鼠缺血性脑损伤中的作用。方法 ①制作大鼠全脑缺血模型,免疫印迹法检测假手术组、脑缺血复灌6 h、12 h、1 d、3 d组p-p38MAPK、p38MAPK蛋白表达。②免疫印迹法检测假手术组、缺血复灌组、溶剂对照组和SB203580组p-p38MAPK、p38MAPK、FasL、Fas和Caspase-3蛋白表达。结果 ①与假手术组相比,脑缺血再灌注6 h、12 h、1 d、3 d组p-p38MAPK蛋白表达水平逐渐升高,于1 d达高峰(P均<0.05)。②与缺血复灌组和溶剂对照组相比,SB203580组p-p38MAPK、FasL和Caspase-3表达水平显著降低(P均<0.05)。结论 p38MAPK介导的Fas/FasL凋亡通路在缺血性脑损伤中发挥了重要作用。
p38MAPK;Fas;FasL;凋亡;脑缺血
p38MAPK是MAPK信号通路的重要成员,在炎性反应、应激、休克、细胞迁移等方面发挥着重要作用[1-2]。最近研究发现,p38MAPK信号通路与脑缺血性神经元凋亡关系密切。p38MAPK调控细胞凋亡的机制非常复杂[3-7],其中p38 MAPK可通过增强Fas/FasL表达促进细胞的凋亡[5]。为此,本实验利用大鼠全脑缺血模型,通过注射p38MAPK特异性阻断剂SB203580,观察其对海马CA1区神经元胞质中p-p38MAPk、p38MAPK、FasL、Fas、Caspase-3蛋白表达的影响,探讨p38MAPK介导的Fas/FasL凋亡通路在缺血性脑损伤中的重要作用。
1.1 材料
1.1.1 实验动物:正常健康雄性SD大鼠45只,体质量250~300 g,由徐州医学院实验动物中心提供。
1.1.2 主要试剂:p-p38MAPK,p38MAPK,Fas,FasL抗体购于Santa Cruz Biotechnology公司,active-Caspase-3抗体购于Sigma公司,SB203580购于Promega公司。
1.2 方法
1.2.1 模型制备及动物分组:25只SD大鼠均分为5组:假手术组、脑缺血复灌6 h、12 h、1 d、3 d组。采用四动脉结扎法制作全脑缺血模型[8],将大鼠麻醉后,分离其双侧颈总动脉并电凝椎动脉,次日于清醒状态下结扎双侧颈总动脉,全脑缺血15 min,再灌注不同时间处死。假手术组的处理同缺血复灌组,但不结扎双侧颈总动脉。
1.2.2 腹腔注射阻断剂SB203580及动物分组:20只大鼠均分为4组:假手术组、缺血复灌组、溶剂对照组和SB203580组。SB203580组于脑缺血前30 min腹腔注射SB203580(5 mg/kg,溶于5 mg/mL DMSO)[9];溶剂对照组于缺血前30 min腹腔注射等体积的DMSO。4组大鼠皆全脑缺血15 min,再灌注1 d处死。
1.2.3 样本制备:各组SD大鼠作不同处理后,断头快速取脑,分离双侧海马,沿海马裂将其分为CA1和CA3-DG两部分。CA1部分加匀浆缓冲液,匀浆,1000×g离心15 min,小心移取上清液,主要为海马的胞质部分,BCA法测蛋白浓度后行免疫印迹分析。
1.2.4 免疫印迹:取等量的变性蛋白质样本,经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离后,转移至硝酸纤维素膜,封闭,一抗4 ℃过夜,二抗室温孵育2 h,显色。扫描膜上显色条带并用ImageJ软件分析,蛋白表达相对值以各组蛋白灰度值与内参GAPDH灰度值的比值来表示。
2.1 脑缺血再灌注不同时间p-p38MAPK、p38MAPK蛋白表达水平的比较:与假手术组相比,脑缺血再灌注6 h、12 h、1 d、3 d组海马CA1区神经元胞质中p-p38MAPK蛋白表达水平逐渐升高,于1 d达高峰,3 d又有所降低,且差异有统计学意义(P均<0.05),而胞质中p38MAPK蛋白表达水平差异无统计学意义(P>0.05)。见表1。
2.2 4组p-p38MAPK、p38MAPK、FasL、Fas和Caspase-3蛋白表达水平的比较:与假手术组相比,缺血复灌组、溶剂对照组和SB203580组p-p38MAPK、FasL和Caspase-3表达水平明显增多;与缺血复灌组和溶剂对照组相比,SB203580组p-p38MAPK、FasL和Caspase-3表达水平显著降低(P均<0.05)。溶剂对照组与缺血复灌组相比,p-p38MAPK、p38MAPK、FasL、Fas和Caspase-3蛋白表达水平差异无统计学意义(P均>0.05)。4组p38MAPK、Fas蛋白表达水平差异无统计学意义(P均>0.05)。见表2。
表1 脑缺血再灌注不同时间p-p38MAPK、p38MAPK蛋白表达水平的比较(,n=5)
表1 脑缺血再灌注不同时间p-p38MAPK、p38MAPK蛋白表达水平的比较(,n=5)
注:与假手术组相比,*P<0.05
蛋白表达相对值 假手术组 再灌注6 h 再灌注12 h 再灌注1 d 再灌注3 d p-p38MAPK 0.253±0.027 0.394±0.031* 0.561±0.043* 0.676±0.048* 0.531±0.041* p38MAPK 0.532±0.041 0.543±0.041 0.556±0.042 0.527±0.040 0.548±0.042
表2 4组p-p38MAPK、p38MAPK、FasL、Fas和Caspase-3蛋白表达水平的比较(,n=5)
表2 4组p-p38MAPK、p38MAPK、FasL、Fas和Caspase-3蛋白表达水平的比较(,n=5)
注:与假手术组相比,*P<0.05;与缺血复灌组和溶剂对照组相比,△P<0.05
蛋白表达相对值 假手术组 缺血复灌组 溶剂对照组 SB203580组p-p38MAPK 0.251±0.027 0.673±0.048* 0.652±0.047* 0.425±0.036*△p38MAPK 0.521±0.040 0.542±0.041 0.535±0.041 0.554±0.042 FasL 0.263±0.028 0.767±0.050* 0.748±0.049* 0.456±0.037*△Fas 0.465±0.037 0.482±0.039 0.457±0.037 0.471±0.039 Caspase-3 0.213±0.025 0.687±0.048* 0.701±0.049* 0.394±0.032*△
丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)是细胞内信号传递的交汇点,可将细胞外信息传递至细胞核,直接调节转录因子活性,调控基因表达[10]。p38MAPK是MAPK信号通路的重要成员,在炎性反应、休克、细胞迁移、细胞凋亡等方面发挥着重要作用。最近研究发现,p38MAPK信号通路与缺血性脑损伤密切相关[11]。大鼠局灶性脑缺血再灌注24 h,缺血区脑组织p38MAPK的活性增强并伴随神经元的凋亡,表明p38MAPK在脑缺血后神经元凋亡的过程中起重要作用[12-13]。我们的实验结果也显示:大鼠全脑缺血再灌注后6 h、12 h、1 d、3 d,海马CA1区神经元胞质中p-p38MAPK蛋白表达水平逐渐升高,于1 d时达高峰,而胞质中p38MAPK蛋白表达水平无明显差异。结果提示:脑缺血再灌注后有p38MAPK的激活。
p38 MAPK经多条途径调控细胞凋亡,其中p38 MAPK可通过增强Fas/FasL表达促进细胞的凋亡。Fas蛋白是细胞凋亡信号的受体,Fas配体(FasL)属肿瘤坏死因子超家族。Fas/FasL系统在细胞凋亡中起重要作用。研究发现[14],在小鼠局灶性脑缺血模型中,脑缺血模型组FasL表达比假手术组增加了451.67%。而我们以前的实验结果[15]也显示:脑缺血再灌注后FasL表达增高。为了证实在脑缺血复灌过程中p38 MAPK是否可通过Fas/FasL通路促进细胞凋亡,我们选用了p38MAPK的特异性阻断剂SB203580作为工具药进行研究。SB203580是吡啶咪唑芳基杂环类化合物,与p38MAPK竞争性结合ATP位点,使p38MAPK失去与ATP结合的能力,从而高效抑制p38MAPK的磷酸化,使其失去激酶活性,最终实现对p38MAPK通路的抑制。我们的结果显示:与缺血复灌组和溶剂对照组相比,SB203580组p-p38MAPK、FasL和Caspase-3表达水平显著降低;而p38MAPK、Fas蛋白表达水平无明显差异。提示:p38MAPK可通过Fas/FasL信号通路诱导神经元凋亡。
总之,本实验证实了脑缺血复灌过程中有p38MAPK的激活,并通过其阻断剂SB203580证实p38MAPK能经Fas/FasL信号通路诱导神经元凋亡。因此,p38MAPK介导的Fas/FasL凋亡通路在缺血性脑损伤中发挥了重要作用,为临床进一步阐明人类脑缺血发病机制提供了实验依据,且为防治人类缺血性脑病提供了新的思路。
[1] 刘会,荣季冬,袁国军,等.阿托伐他汀对慢性心力衰竭小鼠心肌组织赖氨酰氧化酶表达的影响[J].中华老年心脑血管病杂志,2013,15(6):628-631.
[2] Huang H,Song TJ,Li X,et al.BMP signaling pathway is required for commitment of C3H10T1/2 pluripotent stem cells to the adipocyte lineage[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(31):12670-12675.
[3] Cannell IG,Kong YW,Johnston SJ,et al.p38 MAPK/MK2-mediated induction of miR-34c following DNA damage prevents Myc-dependent DNA replication[J].Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(12):5375-5380.
[4] Lamy V,Bousserouel S,Gossé F,et al.Lupulone triggers p38 MAPK-controlled activation of p53 and of the TRAIL receptor apoptotic pathway in human colon cancer-derived metastatic cells[J].Oncol Rep,2011,26(1):109-114.
[5] Liu WH,Cheng YC,Chang LS.ROS-mediated p38alpha MAPK activation and ERK inactivation responsible for upregulation of Fas and FasL and autocrine Fas-mediated cell death in Taiwan cobra phospholipase A(2)-treated U937 cells[J].J Cell Physiol,2009,219(3):642-651.
[6] So KS,Oh JE,Han JH,et al.Induction of apoptosis by a stilbene analog involves Bax translocation regulated by p38 MAPK and Akt[J].Arch Pharm Res,2008,31(4):438-444.
[7] Li T,Feng Z,Jia S,et al.Daintain/AIF-1 promotes breast cancer cell migration by up-regulated TNF-α via activate p38 MAPK signaling pathway[J].Breast Cancer Res Treat,2012,131(3):891-898.
[8] 袁凤刚,郝艳玲,张春平.MK801对大鼠全脑缺血/再灌注ASK1信号通路影响以及神经元的保护[J].中国药理学通报,2014,30(2):179-185.
[9] 余音,郭倩,潘乾广,等.丝裂原活化蛋白激酶信号转导通路在脑缺血再灌注损伤中的作用及机制[J].中国生物制品学杂志,2013, 26(11): 1544-1550.
[10] 李国辉,王耀辉.p38信号通路与缺血性脑卒中[J].中华老年心脑血管病杂志,2014,16(7):779-780.
[11] 王耀辉,李国辉.p38MAPK在大鼠脑缺血再灌注脑组织AQP4表达变化及脑水肿形成中的作用[J].中风与神经疾病杂志,2013,30(8):700-702.
[12] 李浩,张多斌,吴岚,等.丹参酮ⅡA对脑缺血再灌注损伤大鼠磷酸化p38 MAPK和MMP-9表达及细胞凋亡的影响[J].中风与神经疾病杂志,2013,30(3):229-233.
[13] Roy Choudhury G,Ryou MG,Poteet E,et al.Involvement of p38 MAPK in reactive astrogliosis induced by ischemic stroke[J]. Brain Res,2014,1551:45-58.
[14] Niu FN,Zhang X,Hu XM,et al.Targeted mutation of Fas ligand gene attenuates brain inflammation in experimental stroke[J]. Brain Behav Immun,2012,26(1):61-71.
[15] Pei DS,Wang XT,Liu Y,et al.Neuroprotection against ischaemic brain injury by a GluR6-9c peptide containing the TAT protein transduction sequence[J].Brain,2006,129(Pt 2):465-479.
Study of the Effects of Apoptosis Induced by p38MAPK through Fas/FasL Pathway on Ischemic Brain Injury
WANG Xiao-tian, LIU Xiao-mei, YOU Hong-juan, LI Xiao-cui, QIN Su-ping, TANG Ren-xian*, ZHENG Kui-yang
(Department of Pathogenic Biology and Immunology, Xuzhou Medical College, Xuzhou 221004, China)
Objective Investigate the effects of apoptosis induced by p38MAPK through Fas/FasL pathway on ischemic brain injury in rats. Methods ①Making rat model of cerebral ischemia, p-p38MAPK and p38MAPK protein expression were detected by immunoblotting in sham operation group, ischemiareperfusion(I/R) 6 h, 12 h, 1 d, 3 d group. ②p-p38MAPK, p38MAPK, FasL, Fas and Caspase-3 protein expression were detected by immunoblotting 1d after I/R in sham operation group, I/R group, solvent control group and SB203580 group. Results ①Compared with the sham operation group, p-p38MAPK protein expression were increased gradually in I/R 6 h, 12 h, 1 d, 3 d group, and reached the peak in I/R 1d group (All P<0.05). ②Compared with the I/R group and solvent control group, p-p38MAPK、FasL and Caspase-3 protein expression were decreased in SB203580 group (All P<0.05). Conclusion Neuronal apoptosis induced by p38MAPK through Fas/FasL pathway played important effects on ischemic brain injury in rats.
p38MAPK; Fas; FasL; Apoptosis; Cerebral ischemia
R651.1+5
:B
:1671-8194(2014)31-0001-02
江苏省教育厅资助项目(14KJB310023)
*通讯作者:E-mail: tangrenxian-t@163.com