李珊凤,易汉杰,金明威,陈哲,陈颖,王建华,孙伟亮,裴仁治
多参数流式细胞术检测91例急性白血病免疫表型分析
李珊凤,易汉杰,金明威,陈哲,陈颖,王建华,孙伟亮,裴仁治
目的探讨多参数流式细胞术检测急性白血病(AL)免疫表型的特点,同时与形态学分型对比以提高急性白血病实验室诊断水平。方法对就诊91例AL采用骨髓细胞形态学、骨髓细胞化学染色和细胞免疫表型分型检测方法。结果91例AL中,59例急性髓系白血病(AML)表达CD13、CD33、CD15、MPO、CD117、CD34和HLA-DR阳性率分别为93.2%、76.2%、55.9%、79.6%、89.8%、61%和62.7%;32例急性淋巴细胞白血病(ALL)中8例T-ALL表达CD2、CD3、CD5、CD7、CD4、CD8、cCD3、CD34和HLA-DR阳性率分别为75%、50%、75%、100%、25%、37.5%、100%,50%和62.5%;24例B-ALL表达CD10、CD19、CD20、CD22、CyCD79a、CD34和HLA-DR阳性率分别为45.8%、100%、33.3%、70.8%、75%、100%和62.5%。FAB分型有54例AML、29例ALL和8例AL不能分型。8例AL经免疫分型确诊为5例AML,1例T-ALL,2例B-ALL;另证实1例T/B混合型急性白血病和1例双表型急性白血病。结论AL免疫表型分析能进一步明确AL诊断,并可获得白血病细胞不同分化阶段的参数,对AL的诊断和预后判断具有重要意义,对形态学分型具有补充和修正。
白血病,急性;流式细胞术;形态学分型;免疫表型分型
急性白血病(acute leukemia,AL)是一组高度异质性恶性疾病,临床表现不典型和形态学多样化等特点是导致AL误诊的主要原因[1]。迄今,AL实验室诊断与分型主要依靠形态学及细胞化学染色分析,而形态学诊断准确率为60%~80%。自单克隆抗体与流式细胞术联合应用以来,流式细胞术已成为白血病免疫分型的重要手段。使用多参数单克隆抗体进行同时标记,可特异的、全面的检测白细胞抗原的分布情况,使AL免疫分型的结果更为客观准确[2]。本研究通过对91例AL形态学和免疫表型分型,并进行对比分析,探讨细胞形态学和免疫表型特征的关系,以提高AL实验室诊断水平。现报道如下。
1.1 一般资料选择2011年7月至2012年9月宁波市鄞州人民医院血液科就诊的AL患者共91例,其中男51例,女40例;年龄2~85岁,平均(49±24)岁;儿童19例,成人72例。
1.2 仪器与试剂瑞-姬氏染液自备。细胞化学染色试剂有细胞过氧化物酶(POX)染色、特异性酯酶(CE)染色、糖原染色(PAS)及醋酸萘酚酯酶染色(a-NAE)试剂盒均购自珠海贝索生物技术公司。异硫氰酸荧光素(FITC)、藻红蛋白(PE)、多甲藻叶绿素蛋白(PerCP)和别藻青蛋白(APC)标记的单克隆抗体,及红细胞裂解液(FACS Lysing Solution)、破膜固定液、8-colorsetup标准微球和流式细胞仪FACSCanto II均购自美国Becton Dickinson公司。
1.3 方法
1.3.1 细胞形态学诊断采集骨髓标本,离体后立即制成骨髓涂片。涂片标本经瑞-姬氏染液染色后,油镜下观察并计数200个细胞,按FAB分型法进行分型,再进行POX、CE、PAS和a-NAE染色。
1.3.2 单克隆抗体标记采集骨髓标本1~2 ml,肝素抗凝。细胞膜抗原标记方法为每管加入1×106个细胞100 l,试管内加入10l所需不同标记单克隆抗体,以四色抗体组合为主。FITC标记抗体有CD15、HLA-DR、CD14、CD10、CD22、CD2、CD3和CD61;PE标记抗体有CD117、CD13、CD33、CD19、CD7、CD8和CD235a;APC标记抗体有CD34、CD11b、CD20、CD56、CD5和CD4。每管均加入PerCP-CD45,同型对照为不同荧光染料标记的IgG1。室温避光孵育20 min后用500l红细胞裂解液溶血10min,1200r/min离心5 min后弃上清,沉淀物以2 mlPBS洗涤1次,加0.5 mlPBS重悬。细胞内抗原标记方法为每管加入1×106个细胞100 l,试管内加入10l PerCP-CD45,混匀避光孵育20 min后加入500l红细胞裂解液溶血10 min,1 200 r/min离心5 min后弃上清,再加入1∶10稀释的破膜固定液500 l避光孵育10 min,2 ml PBS洗涤1次,加入抗体MPO-FITC/CD79a-PE/ CD3-APC各10 l,室温避光孵育20 min后用500 l PBS重悬。设立不同荧光染料标记的IgG1同型对照。
1.3.3 流式细胞术检测FACSCanto II型流式细胞仪进行检测,用DIVA软件分析。样本进入流式细胞仪检测前,以8-color setup标准荧光微球校正流式细胞仪光路系统。应用前向角散射(FSC)/侧向角散射(SSC)设门去除碎片群的影响,再用CD45/SSC二维散点图上设门区别幼稚细胞群和成熟细胞群,以同型对照去除自发荧光剂非特异性荧光的影响,分析各管中幼稚细胞群免疫表型。
2.1 细胞形态学诊断按FAB分型诊断标准,91例AL患者中59例急性髓系白血病(AML):1例M0、3例M1、20例M2、14例M3、11例M4和5例M5,未见M6和M7,不能分型有5例;32例急性淋巴细胞白血病(ALL)中29例能明确诊断,3例不能分型。
2.2 细胞免疫分型59例AML患者的CD13、CD33、CD15、CD11b和MPO阳性率分别为93.2%、76.2%、55.9%、15.2%和79.6%,非相关系列抗原CD34、HLA-DR和CD117阳性率分别为61%、62.7%和89.8%,表达淋系相关抗原CD7、CD4、CD2和CD5阳性率分别为15.2%、8.5%、3.45%和1.7%。32例ALL经免疫分型确诊:8例T-ALL表达T系抗原CD2、CD3、CD5、CD7、CD4、CD8和cCD3阳性率分别为75%、50%、75%、100%、25%、37.5%和100%,非相关系列抗原CD34和HLA-DR阳性率分别为50%和62.5%;24例B-ALL表达B系相关抗原CD19、CD22、CD10、CD20和cCD79a阳性率分别为100%、70.8%、45.8%、33.3%和75%;CD34和HLA-DR阳性率分别为100%和62.5%。8例FAB不能分型的AL患者有5例AML、1例T-ALL和2例B-ALL。经免疫分型后5例AML确诊为1例M1,3例M2和1例M3。1例ALL经免疫分型证实为T/ B混合型AL,1例证实为双表型AL。免疫分型显示4例M1中CD4+1例;23例M2患者中表达淋系抗原有6例CD7+,2例CD2+,1例CD56+和1例CD5+;11例M4中表达淋系抗原有3例CD4+,2例CD7+和1例CD2+;5例M5中淋系抗原有1例CD7+和1例CD4+。B-ALL中表达髓系抗原有5例CD15+,2例CD13+和2例CD33+;T-ALL中表达髓系抗原有2例CD117+,1例CD13+,1例CD33+。
AL存在某些系列多样性和异质性,单一依据细胞形态学及细胞化学染色诊断AL已显得不足,用单克隆抗体分型白血病细胞表面的免疫标志,以进一步明确白血病细胞的起源及分化程度,为临床诊断、治疗及判断预后提供重要依据[3]。
本研究对就诊91例AL进行FAB和细胞免疫表型分型,两分型诊断相符率为91.2%。8例FAB不能分型的AL经免疫表型分型后得到确诊,为诊断和治疗提供重要的实验依据。研究表明,急性髓系白血病细胞表达髓系抗原CD13、CD33、CD117和MPO阳性率分别为93.2%、93.2%、89.8%和79.6%,表达淋系抗原CD7、CD4、CD2和CD5阳性率分别为15.2%、8.47%、5.08%和1.6%,与马瑞霞等[4]报道结果相似,但本次研究中无CD19阳性表达。随着AML发病机制研究的不断进展,有研究表明免疫分型可以作为AML危险度分层的独立因子,但具体结论尚有争议[5]。CD38、CD34和HLA-DR是干/祖细胞表达免疫标记,表达随细胞分化程度增高而减少,直至关闭,通过对以上几种标记的检测以判定是否为AL[6]。Repp等[5]对783例AML患者骨髓及外周血免疫表型分析,发现CD11b、CD13和CD34表达为预后不良因素,CD15、CD33和CD38为预后良好因子。同时,马瑞霞等[4]报道CD7在AML各分型中均有表达,可能与预后不良有关。本研究中均有上述相关抗原的检测。
T细胞早期阶段肿瘤(T-ALL,T淋巴母细胞淋巴瘤)表达早期抗原CD34或HLA-DR和T细胞抗原。B细胞早期阶段肿瘤表达早期抗原CD34或HLA-DR和B细胞抗原[7]。本研究中8例T-ALL患者CD34和HLA-DR阳性率分别为50%和62.5%,而24例B-ALL患者中CD34和HLA-DR阳性率分别为100%和62.5%,为AL细胞的分化程度提供有效数据,为临床预后判断提供有效数据。
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10.3969/j.issn.1671-0800.2014.07.071
R733.7
A
1671-0800(2014)07-0907-02
315040宁波,宁波市鄞州人民医院
李珊凤,Email:lsf1984con@ qq.com