闫 玮占 萍陈 伟胡素泉刘维达∗
·论著·
红色毛癣菌菌落表型和基因型的分型研究
闫 玮1占 萍2陈 伟1胡素泉1刘维达1∗
目的: 确定红色毛癣菌菌落表型和基因型的相关性以及与感染部位的关系。方法: 收集红色毛癣菌临床分离株138株,采用传统培养方法对红色毛癣菌进行表型分型,利用红色毛癣菌特异性引物扩增TRS-1区重复序列进行种内基因分型,并分析检测结果与感染部位的相关性。结果: 138株红色毛癣菌共分离出3种菌落表型:绒毛型、沟纹型和粉末型;分离出5型基因型,其中Type1 64株,Type2 18株,Type3 19株,Type4 12株,Type5 25株。红色毛癣菌的表型和基因型与感染部位均无相关性(均P>0.05),红色毛癣菌的菌落表型与基因型有一定的相关性(P<0.05)。结论: 红色毛癣菌基因型与菌株来源有关而与感染部位无关,可为判断复发和再感染提供依据。
红色毛癣菌; 菌落表型; 基因型
红色毛癣菌在PDA培养基上可分出不同的菌落形态,按传统方法可分为5型:羊毛型、绒毛型、沟纹型、粉末型和颗粒型,由于羊毛型和绒毛型不易区分,所以本文将红色毛癣菌的表型分为绒毛型、沟纹型、粉末型和颗粒型。红色毛癣菌的基因分型方法很多,但种内特异性不高,本文利用红色毛癣菌特异性引物,扩增TRS-1区的重复串联序列得到5种基因型,并进一步探讨表型与基因型的关系,以及两者与感染部位的关系。
1.1 菌株来源 受试菌株来自中国医学科学院皮肤病研究所真菌科。其中手足癣77株,体股癣26株,甲癣35株。实验所用红色毛癣菌(菌号T1a)和须癣毛癣菌(菌号T5b)标准菌株由中国微生物菌种保藏管理委员会医学真菌中心提供。
1.2 菌种鉴定 采用玻片小培养,红色毛癣菌镜下见棒状大分生孢子和泪滴状小分生孢子。毛发穿孔试验阴性以及尿素酶试验阴性。
1.3 试剂及仪器 DNA提取及电泳试剂由南京生兴生物技术有限公司提供,Taq酶、引物及DNA marker由上海生物工程有限公司提供。DNA扩增仪为BIORAD公司生产。
1.4 表型分型 将菌株用点种法接种到PDA平皿上,置28℃恒温箱孵育10 d,体视显微镜下观察菌落形态。
1.5 基因分型 采用冻融法提取DNA,1.5%的琼脂糖凝胶电泳结果,判断提取率。以TrNTSF-2(5'-ACCGTATTAAGCTAGCGCTGC-3')、TrNTSR-4(5'-TGCCACTTCGATTAGGAGGC-3')为引物扩增TRS-1区的重复串联序列,TRS-1区PCR反应条件:94℃预变性4 min,94℃变性45 s,55℃退火30 s,74℃延伸2 min,30个循环,最后74℃延伸10 min。PCR反应产物的检测:1.5%琼脂糖凝胶电泳后,凝胶程序系统观察结果并采集图像。
1.6 统计学方法 应用SPSS 13.0统计分析软件进行数据分析。
2.1 表型与感染部位的相关性 138株红色毛癣菌在PDA培养基上分出3种表型:粉末型、沟纹型和绒毛型(图1)。其中粉末型26株,沟纹型16株,绒毛型96株,表型与感染部位经卡方检验无相关性(χ2=5.32,P>0.05),见表1。
图1 红色毛癣菌的菌落形态
表1 红色毛癣菌表型与感染部位的关系
2.2 表型与基因型的相关性 采用红色毛癣菌特异性引物扩增TRS-1区的重复串联序列,根据条带不同可分为5型。Type 1为单条带,400 bp,Type2为600 bp单带或600 bp、400 bp两带,Type 3为800 bp、600 bp、400 bp 3带,Type 4为1000 bp、800 bp、600 bp和400 bp 4带,其余带型较少见,不再细分,统归为Type 5,200 bp×n不定。本文138株红色毛癣菌分出5种带型,Type1 64株,Type2 18株,Type 3 19株, Type4 12株,Type5 25株(图2)。基因型与感染部位无相关性(χ2=9.56,P>0.05),见表2。表型与基因型经卡方检验有一定的相关性(χ2=21.18,P<0.05),见表3。
图2 本实验中TRS-1扩增基因型
表2 红色毛癣菌基因型与感染部位的关系
表3 红色毛癣菌表型与基因型的关系
本研究中我们共收集了138株红色毛癣菌临床株,其中手足癣77株,甲癣35株,体股癣26株,采用传统的表型分型方法,将其分为绒毛型(96株)、沟纹型(16株)和粉末型(26),其中绒毛型致病率最高。红色毛癣菌基因分型方法有很多,Jackson等1报道了红色毛癣菌NTS区的两个高变区:TRS-1区和TRS-2区。TRS-2区变异小,条带单一,因此我们选用扩增TRS-1区来进行种内分型,分为5种带型:Type1占46.4%,Type2占13.0%,Type3占13.8%,Type4占8.7%,Type5占18.1%。与Jackson等1和Santos等2的分型结果相近。何晓丹等3也通过几种方法的比较发现TRS-l区PCR指纹图谱最适合用于红毛种内分型。Hryncewicz等4通过TRS和RAPD两种分型方法比较,发现前者的可重复性更好。
杨国玲等5用探针与DNA印迹法研究红色毛癣菌的基因分型,发现它们与传统的菌落表型有一定的关系,由于试验菌株数较少,与临床发病部位和菌株来源地区的关系尚不能得出确切的结论。成晓茹等6用RAPD法分析红色毛癣菌基因型,并与传统的表型分型相比较,未发现基因型与表型的对应关系。实验中我们比较了不同部位菌株的带型分布,发现红色毛癣菌菌株TRS-1区分型与菌株的感染部位无明显相关性。樊建峰等7用该法对不同部位菌株进行基因分型得出了与本研究相同的结论。
红色毛癣菌经传代后表型具有不稳定性,杨国玲等8发现红色毛癣菌菌株在20代传代过程中发生多次表型变异,且变异可逆转,同一菌株的原代与20代PCR扩增指纹图一致,基因序列亦基本一致。Baeza等9分析红色毛癣菌基因型与流行病学的关系时发现,有关联的临床菌株其基因型有高度的相似性,来自同一家孤儿院的分离株基因型相似系数>90%,根据Chong等10观点可认为这些感染菌株可能由单一菌株进化而来。占萍等11在进行两足一手型手足癣病例分析时发现80%以上的患者手足部位菌株基因型相同,进一步说明了红色毛癣菌基因型与菌株来源有关而与感染部位无关。
本研究的不足之处是未进行TRS-2区分型,尽管此区只能分出两种带型,但是如果TRS-1区和TRS-2区分型相结合可将红色毛癣菌分出更多的带型,能更清楚的确定传染来源,区分复发和再传染。
1 Jackson CJ,Barton RC,Kelly SL,et al.Strain identification of Trichophyton rubrum by specific amplification of subrepeat elements in the ribosomal DNA nontranscribed spacer.Clin Microbiol,2000,38(12):4527-4534.
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3何晓丹,冉玉平,代亚玲,等.家庭内红色毛癣菌病患者间菌株差异性分析.中国真菌学杂志,2010,5(1):5-8.
4 Hryncewicz-Gwóz'dz'A,Jagielski T,Sadakierska-Chudy A,et al.Molecular typing of Trichophyton rubrum clinical isolates from Poland.Mycoses,2011,54(6):e726-736.
5杨国玲,李乔,于晓虹,等.红色毛癣菌基因型与表型的研究.中华皮肤科杂志,2003,36(12):682-684.
6成晓茹,吴爱军,张建秀,等.红色毛癣菌随机扩增DNA多态性分型研究.中华皮肤科杂志,2001,34(6):448-449.
7樊建峰,李恒进,索继江,等.红色毛癣菌种内分型.军医进修学院学报,2004,25(3):225-226.
8杨国玲,杜迎春,张明莉,等.传代对红色毛癣菌表型和核糖体基因影响的研究.中国皮肤性病学杂志,2007,21(5):263-266.
9Baeza LC,Matsumoto MT,Almeida AM,etal.Strain differentiation of Trichophyton rubrum by randomly amplified polymorphic DNA and analysis of rDNA nontranscribed spacer.JMed Microbiol,2006,55(4):429-436.
10 Chong PP,Lee YL,Tan BC,et al.Genetic relatednessof Candida strains isolated from women with vaginal candidiasis in Malaysia.JMed Microbiol,2003,52(8):657-666.
11占萍,吕雪莲,佘晓东,等.两足一手型手足癣致病菌种红色毛癣菌的基因型分析.中国皮肤性病学杂志,2009,23(1):3-5.
(收稿:2013-08-06 修回:2013-09-15)
A study on colony phenotyping and genotyping of Trichophyton rubrum
YANWei,ZHAN Ping,CHENWei,et al.Institute of Dermatology,Chinese Academy ofMedical Sciences and Peking Union Medical College,Nanjing,210042
Objective:To determ ine the characteristics of colony phenotyping and genetyping of Trichophyton rubrum and the relationship with infection sites.Methods:Using the traditional cultivationmethod to discriminate the colony phenotypes of 138 stains of Trichophyton rubrum and typed by PCR amp lification of tandermly repetive elements(TRSs)TRS-1 from the ribosomal DNA nontranscribed spacer region(NTS).The results of the tests and the infection sites were analyzed.Results:The colonies of 138 Trichophyton rubrum were classified into three types,including downy type,furrowed type and powdery type,and 5 genotypes(the number of the genotypes 1,2,3,4,5 was 64,18,19,12,25).The colony morphology of Trichopyton rubrum wasno related with infection sites(P>0.05).Therewasno significant difference between infection sites and genotypes(P>0.05).The conoly phenotype was correlated with genotype(P<0.05).Conclusion:Genotype and colony phenotype of Trichopyton rubrum were correlated and can be used in differential diagnosis of new infection and relapse.
Trichopyton rubrum;colony phenotyping;genotyping
1中国医学科学院、中国协和医科大学皮肤病研究所,江苏南京,210042
2江西省皮肤病专科医院,南昌,350001
∗通信作者