秦红英,周光明*,彭贵龙,李俊平
(西南大学化学化工学院,发光与实时分析教育部重点实验室,重庆 400715)
高效液相色谱法测定紫苏中5 种有机酸和黄酮的含量
秦红英,周光明*,彭贵龙,李俊平
(西南大学化学化工学院,发光与实时分析教育部重点实验室,重庆 400715)
目的:建立以甲醇溶液为萃取剂,结合超声辅助萃取,利用高效液相色谱法同时分离测定紫苏中的咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 种有效成分的方法。方法:采用Phenomenex C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相为甲醇-0.1%冰醋酸溶液,采用梯度洗脱程序;流速1 mL/min;紫外检测波长320 nm;柱温35 ℃。结果:该方法对咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素分别在0.001 22~61.00(r=0.999 99)、0.001 06~53.00(r=0.999 99)、0.001 28~64.00(r=0.999 91)、0.001 20~60.00(r=0.999 94)、0.001 12~56.00 μg/mL(r=0.999 95)范围内线性关系良好,相关系数(r)均大于0.999 91,检出限(RSN=3)依次是:0.101 9、0.392 6、0.355 9、0.286 2、0.202 5 ng/mL;样品回收率为95.79%~101.41%。结论:本法操作简单快速、定量准确、灵敏度高、成本低、且对环境友好,为紫苏中咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的分离检测提供了一个有效的方法。
黄酮;有机酸;超声辅助萃取;高效液相色谱法;紫苏
紫苏(Perilla frutescens)为唇形科紫苏属(Perilla frutescens (L.) Britton)植物紫苏全草,又名白苏、赤苏等,气清香,味微辛,具有止咳平喘、解表散寒、行气和胃、理气宽中、止痛安胎等功效,主要用于痰壅气逆、咳嗽呕恶、风寒感冒、妊娠呕吐、胃脘疼痛、胸膈痞闷、鱼蟹中毒等病症[1]。现代药理学研究证明,紫苏是一种极具营养价值的保健资源[2],主要含有黄酮类化合物、迷迭香酸、咖啡酸、阿魏酸等多种生物活性成分[3-5],具有良好的抗氧化[6-7]、抗癌[8]、抗炎[9]、抗菌[10]、抗过敏、保肝[11-12]、降血脂[13]、调节血糖[14]等药理作用。目前虽已有紫苏中相关活性成分的测定研究报道,如Chen等[15]报道了高效液相色谱法分析紫苏中的三萜类化合物的方法,马尧等[16]报道了紫外分光光度法测定紫苏中总黄酮含量的方法,黄亮辉等[17]报道了高速逆流色谱分离纯化紫苏叶中迷迭香酸的方法;但同时分离测定紫苏中有机酸和黄酮的方法尚未见报道,本研究采用超声辅助萃取及高效液相色谱(high performance liquid chromatography,HPLC)法分离同时测定了紫苏中咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 种有效成分。
1.1 材料与试剂
紫苏原药材(经西南大学周光明教授鉴定) 当地药房;咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素对照品(纯度均≥99%) 上海晶纯实业有限公司;1-丁基-3-甲基咪唑六氟磷酸盐(纯度≥99%) 中国科学院兰州化学物理研究所;甲醇、乙醇、冰醋酸(均为分析纯) 重庆川东化工有限公司化学试剂厂;磷酸(分析纯) 成都市科龙化工试剂厂。
1.2 仪器与设备
LC-20AT液相色谱输液泵、SPD-20A紫外检测器、CTO-10AS柱温箱、LC-Solution色谱数据处理系统 日本岛津公司;KH-3200B型超声波清洗器 昆山禾创超声仪器有限公司;TGL-16G高速离心机 上海安亭科学仪器厂;SZ-2自动双重纯化水蒸馏器 上海泸西分析仪器厂有限公司;LIDA pH计 上海理达仪器厂;FA2004A型分析天平 上海精天电子仪器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 色谱条件
色谱柱为Phenomenex C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:A为体积分数0.1%冰醋酸溶液,B为甲醇;梯度洗脱程序:0~5 min,45%~53% B;5~10 min,53%~55% B;10~15 min,55%~60% B;15~20 min,60%~45% B。流速1 mL/min;进样量20 μL;检测波长320 nm;柱温35 ℃。
1.3.2 对照品溶液的配制
对照品溶液的制备:分别精密称取咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素对照品适量,甲醇溶解,分别配制成610 μg/mL咖啡酸、530 μg/mL阿魏酸、640 μg/mL迷迭香酸、600 μg/mL木犀草素、560 μg/mL芹菜素的溶液对照品储备液,避光保存,待用。
混合对照品溶液:分别准确吸取3 种对照品储备液适量,用流动相配制成一系列不同质量浓度的混合对照品溶液,置于冰箱(4 ℃)内避光保存备用。
1.3.3 供试品溶液的制备
将紫苏于60 ℃干燥至恒质量后粉碎,过60 目筛(0.5~1.2 mm),干燥条件下保存备用。准确称取0.1 g紫苏粉末,加入10 mL甲醇,浸泡4 h,超声萃取30 min,过滤取滤液,离心10 min(3 500 r/min),取上清液经0.45 μm有机滤膜过滤,进样分析。
2.1 色谱条件的选择
为选择最佳的检测条件,本实验比较了CH3OHH2O、CH3OH-CH3COOH、CH3CN-CH3COOH,CH3CNH3PO4体系对5 种目标分析物的分离效果。当流动相为CH3OH-H2O体系时,调节流动相比例,咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸3 种组分峰不能完全分离,且木犀草素、芹菜素2 种组分峰拖尾严重。当流动相为CH3OH-CH3COOH时,在合适的梯度条件下,5 种目标物出峰时间适宜,分离度良好,且峰形对称性好。在以CH3CN-CH3COOH、CH3CN-H3PO4为流动相时,不断改变梯度条件,5 种组分峰峰形和分离度均未有较大改善,且CH3CN毒性远大于甲醇,而H3PO4易损坏色谱柱,故选择CH3OHCH3COOH体系为流动相。在色谱柱允许的pH值范围内,考察了醋酸比例对峰形的影响,当醋酸比例为0.1%时,峰形最佳,分离度均大于2.0(图1),故最终选择CH3OH-0.1% CH3COOH体系为流动相。
图1 混合对照品溶液HPLC图Fig.1 Chromatogram of standard solution mixture
2.2 提取溶剂的选择
为了选择合适的提取剂提高萃取率,本实验分别采用离子液体[BMIm]PF6、[OMIm]PF6、[HMIm]PF6以及甲醇、乙醇溶液为提取剂,在相同萃取条件下比较对目标分析物的提取效果。结果表明,以乙醇和离子液体为萃取剂时,5 种目标分析物的提取率下降,且离子液体会影响HPLC分析时的分离度;当以甲醇溶液作为提取剂时,咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的提取率均明显提高。故本实验最终采用甲醇溶液作为萃取剂。此外,本实验还考察了不同浸泡时间对提取效果的影响,通过浸泡不同时间后提取分析比较,表明浸泡4 h提取效果最佳。
2.3 固液比的选择
为了得到最佳的提取效果,本实验考察不同的固液比对提取率的影响。固液比分别为1∶20、1∶30、1∶50、1∶80、1∶100(g/mL)时,当固液比为1∶80(g/mL)时5 种目标分析物的提取率显著提高,因此,本实验以1∶80(g/mL)为最佳固液比(图2)。
图2 紫苏供试品溶液HPLC图Fig.2 Chromatogram of Perilla frutescens sample
2.4 线性关系的考察
分别精密量取1.3.2节混合对照品溶液,用甲醇稀释至不同质量浓度。从低质量浓度到高质量浓度,依次进样,每个质量浓度进样3 次,每次20 μL,按1.3.1节色谱条件进行HPLC分析,以峰面积(Y)为纵坐标,对照品质量浓度(X)为横坐标,进行线性回归。回归方程、相关系数和线性范围见表1。
表1 线性关系实验结果(n=3)Table 1 Regression equations, linear ranges and LODs (n=3)
2.5 精密度实验
精密吸取咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的质量浓度分别为12.2、10.6、12.8、12.0、11.2 μg/mL的对照品混合液20 μL,按照1.3.1节色谱条件进行HPLC分析。重复进样6 次,测定各个对照品的峰面积,结果咖啡酸峰面积相对标准偏差(relative standard deviation,RSD)为1.05%,阿魏酸峰面积RSD为1.32%,迷迭香酸峰面积RSD为1.84%,木犀草素峰面积RSD为1.72%,芹菜素峰面积RSD为1.33%,表明仪器精密度良好。
2.6 稳定性实验
精密吸取1.3.3节供试品溶液20 μL,在避光条件下,于0、4、8、12、16、20、24、48 h分别进样,测定咖啡酸的峰面积RSD为0.97%,阿魏酸的峰面积RSD为1.72%,迷迭香酸的峰面积RSD为1.68%,木犀草素的峰面积RSD为1.79%,芹菜素的峰面积RSD为1.29%,表明该方法稳定性良好。
2.7 重复性实验
精密称取同一批紫苏样品6 份,按照1.3.3节方法制备,1.3.1节色谱条件测定。结果咖啡酸峰面积RSD为1.34%,阿魏酸峰面积RSD为2.25%,迷迭香酸峰面积RSD为1.18%,木犀草素峰面积RSD为1.96%,芹菜素峰面积RSD为2.48%,表明该方法重复性良好。
2.8 回收率实验
精密称取已知含量的同一批紫苏样品0.1 g 9 份,分成3 组,每组按照低、中、高3 个标准准确加入对照品混合液,按1.3.3节方法制备,1.3.1节色谱条件测定。咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素的回收率测定结果,见表2。
表2 回收率实验结果Table 2 Recoveries of five compounds in spiked samples
2.9 样品含量的测定
取同一批紫苏样品3 份,按照1.3.3节方法制备,1.3.1节色谱条件测定,样品含量测定结果见表3。记录紫苏样品色谱图,见图2。
表3 样品含量测定结果 (n=3)Table 3 Results of determination of samples (n=3)
3.1 本实验采用分析纯的甲醇作为流动相,与使用色谱纯的甲醇作流动相的文献报道相比,目标分析物峰形良好,且无杂质干扰峰,大大降低了实验研究成本。
3.2 为了选择合适的流动相体系,本实验选择了CH3OH-H2O、CH3OH-CH3COOH、CH3CN-CH3COOH、CH3CN-H3PO44 种流动相体系对5 种目标分析物的分离效果进行比较。在不断调节流动相比例的前提下,以CH3OH-H2O为流动相时,咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸3 种组分峰不能完全分离,且木犀草素、芹菜素2 种组分峰拖尾严重;而其他3 种流动相体系在合适的梯度条件下,5 种目标分析物分析时间短,且分离度均达到2.0以上,但乙腈比甲醇的毒性和成本更高,而磷酸对色谱柱的损害较大,故最终选择CH3OH-CH3COOH作流动相。黄亮辉等[18]在对不同采收期的紫苏叶和白苏叶中迷迭香酸的含量研究中,采用了甲醇-0.1%磷酸水溶液作流动相,迷迭香酸出峰时间在25 min左右,而本实验中5 种目标分析物的出峰时间均在16 min以内。
3.3 由于目标分析物易溶于甲醇、乙醇等有机溶剂及溶解性能良好的离子液体,本实验分别采用离子液体[BMIm]PF6、[OMIm]PF6、[HMIm]PF6以及甲醇、乙醇溶液为提取剂,在相同萃取条件下比较对目标分析物的提取效果,与以甲醇作萃取剂相比,以离子液体为萃取剂时,5 种目标分析物的提取率明显降低,且离子液体黏度太大不利于色谱分析;以乙醇作萃取剂,虽然能够降低毒性,但5 种目标分析物的总提取率显著低于甲醇,故最终采用甲醇作萃取剂。与荣维燕等[19]用乙醇超声辅助提取紫苏叶黄酮的研究相比,本实验中总黄酮提取率更高,并有效提取了紫苏中的有机酸。
3.4 相关紫苏中有机酸和黄酮的文献报道不一,如张蕾蕾等[20]采用微波法提取测定紫苏中的黄酮,亦有采用HPLC测定紫苏中有机酸的含量[21],但鲜有关于紫苏中咖啡酸、阿魏酸、芹菜素的报道,且尚未有对于紫苏中黄酮和有机酸的同时分离测定。本实验建立了以甲醇溶液为萃取剂,结合超声辅助萃取,利用HPLC同时分离测定紫苏中的咖啡酸、阿魏酸、迷迭香酸、木犀草素和芹菜素5 种有效成分的方法。在优化的最佳实验条件下,5 种目标成分萃取率高,分离完全。该方法操作简便、检出限低、定量准确,为紫苏的有效成分的质量评价和控制提供了科学依据。
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Determination of Five Organic Acids and Flavonoids in Perilla frutescens by High Performance Liquid Chromatography
QIN Hong-ying, ZHOU Guang-ming*, PENG Gui-long, LI Jun-ping
(Key Laboratory on Luminescence and Real-Time Analysis, Ministry of Education, College of Chemistry and Chemical Engineering, Southwest University, Chongqing 400715, China)
Objective: A simple high performance liquid chromatography (HPLC) method has been developed for the simultaneous quantif i cation of caffeic acid, ferulic acid, rosmarinic acid, luteolin and apigenin from Perilla frutescens using methanol as extractant with ultrasonic-assisted extraction. Methods: The fi ve compounds were isolated by using a Phenomenex C18column by gradient elution, and the mobile phase was methanol-0.1% acetic acid solution with a fl ow rate of 1.0 mL/min. The UV detection wavelength was performed at 320 nm. Results: The linear ranges for caffeic acid, ferulic acid, rosmarinic acid, luteolin and apigenin were determined to be 0.001 22-61.00, 0.001 06-53.00, 0.001 28-64.00, 0.001 20-60.00 and 0.001 12-56.00 μg/mL, respectively, and the correlation coeff i cients were 0.999 99, 0.999 99, 0.999 91, 0.999 94 and 0.999 95, respectively. The limits of detection (LOD) were 0.101 9, 0.392 6, 0.355 9, 0.286 2 and 0.202 5 ng/mL, respectively. The average recoveries of these compounds in spiked real samples were in the range of 95.79%-101.41%. Conclusion: The proposed method is simple, precise, specif i c, sensitive and accurate. It provides a new and scientif i c means for routine quality control of Perilla frutescens.
organic acids; fl avonoids; ultrasonic-assisted extraction; high performance liquid chromatography; Perilla frutescens
O652.62
A
1002-6630(2014)14-0102-04
10.7506/spkx1002-6630-201414020
2013-10-10
国家自然科学基金面上项目(21277110)
秦红英(1989—),女,硕士研究生,研究方向为色谱分析。E-mail:qinruobing@sina.cn
*通信作者:周光明(1964—),男,教授,博士,研究方向为色谱及其联用技术。E-mail:gmzhou@swu.edu.cn