孙艳辉,李京皖,贾小丽,龚建国
(1.滁州学院生物与食品工程学院,安徽滁州239012;2.滁州市金玉滁菊生态科技有限公司,安徽滁州239000)
滁菊(Chuju Chrysanthemum morifolium)是菊科菊属的一个栽培种,是安徽省滁州的传统特产,又名“甘菊”、“白菊”等,为中国“四大名菊”之一,已通过中国名牌农产品和地理标志产品认证。滁菊性温和,气味清香,既可入药,又可作清凉饮料[1]。滁菊富含黄酮类化合物和多酚类化合物等有效成分[2]。黄酮和多酚类物质多具有抑制α-葡萄糖苷酶活性的作用,在治疗餐后高血糖症、提高糖耐量和缓解高胰岛素血症等方面具有潜力[3]。已有的报道多集中在对滁菊总黄酮的提取分离纯化等方面[4-6],而对以制备滁菊饮料为目的提取工艺研究及其对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用尚未见报道。高温浸提可提高生产效率和提取率,是活性成分提取过程中经常采用的工艺。高温浸提条件下,有益物质大量溶出的同时,一些在低温下不易溶出的蛋白质、果胶等杂质也被大量溶出,增加提取液过滤难度,并且更容易引起茶饮料的冷后浑浊。另外,高温浸提不但增加了能耗,而且不利于浸出茶汁色泽保持[7-8]。低温浸提可以避免这些问题的发生,同时减少了生产成本[9]。因此,本研究采用单因素及正交实验设计方法,探讨滁菊低温浸提工艺,同时考察滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用,为滁菊饮料产业化提供技术支持。
滁菊 由滁州市金玉滁菊生态科技有限公司提供,4℃保存;α-葡萄糖苷酶 上海佳和生物科技有限公司;pNPG 美国Sigma公司;芦丁 标准分析品,中国药品生物制品检定所;焦性没食子酸、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠、酒石酸钾钠、七水硫酸亚铁、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠均为分析纯 天津市科密欧化学试剂有限公司。
JJ200型电子天平 美国双杰兄弟(集团)有限公司;721型可见分光光度计 上海佑科仪器表有限公司;数显恒温水浴锅 金坛市瑞尔电器有限公司;玻璃仪器气流烘干器 长城科工贸有限公司。
1.2.1 滁菊的低温浸提 滁菊干燥粉碎过40目筛,准确称取一定质量的滁菊,按比例加入纯水,在一定温度下振荡提取一定时间,抽滤,将滤液定容,得到提取液。
1.2.2 滁菊总黄酮及总多酚得率的测定
1.2.2.1 总黄酮及总多酚标准曲线的绘制 总黄酮含量测定[10-11]采用亚硝酸钠-硝酸铝比色法,以芦丁为标样,在510nm处测定,绘制得到标准曲线为:A1=0.1876C1-0.014,R2=0.9998,式中 A1为样品在510nm处的吸光度,C1为样品浓度(mg/mL)。
总多酚含量测定[12-13]采用酒石酸亚铁比色法,以焦性没食子酸为标样在540nm处测定,绘制得到标准曲线为:A2=0.3208C2-0.0154,R2=0.9992。式中A2为样品在540nm处的吸光度,C2为样品浓度(mg/mL)。
1.2.2.2 总黄酮及总多酚得率的测定 对1.2.1中的提取液按1.2.2.1方法进行测定,计算总黄酮类物质、总多酚含量,并按式(1)、式(2)计算得率。
式中,V1为供试液体积(mL),C1为样品浓度(mg/mL),m为滁菊粉末质量(g),2.5为测定时吸取提取液的体积(mL)。
式中,V2为供试液体积(mL),C2为样品浓度(mg/mL),m为滁菊粉末质量(g),5为测定时吸取提取液的体积(mL)。
1.2.3 滁菊活性成分浸提工艺的优化
1.2.3.1 浸提时间的影响 称取7份2.00g干燥粉碎的菊花置于7个烧杯中,加40mL水,50℃恒温振荡浸提,每20min取出一个烧杯,抽滤得滤液定容至100mL。按1.2.2.2方法测定得率。每个实验重复3次。
1.2.3.2 浸提温度的影响 称取9份2.00g干燥粉碎的菊花置于9个烧杯中,加40mL水,分别在30、35、40、45、50、55、60、65、70℃水浴中,恒温振荡浸提 1h,抽滤,滤液定容至50mL,按1.2.2.2方法测定提取率。每个实验重复3次。
1.2.3.3 液固比的影响 称取5份2.00g干燥粉碎的菊花置于5 个烧杯中,依次加20、40、60、80、100mL 水,50℃恒温振荡浸提1h,抽滤得滤液定容至100mL。按1.2.2.2方法测定提取率。每个实验重复3次。
1.2.3.4 正交实验优化浸提工艺 以滁菊总黄酮及总多酚含量为考察指标,选择浸提温度、浸提时间和液固比作为考察的三个影响因素,在不考虑交互作用情况下进行正交实验设计,因素水平见表1。
1.2.4 α-葡萄糖苷酶抑制活性研究 α-葡萄糖苷酶抑制活性测定参照张丽的研究方法略有改进[14]。1mL 0.2U/mL α-葡萄糖苷酶溶入磷酸钾缓冲液(pH6.8)5mL,1mL 样品溶液,37℃ 恒温 15min,加入2.5mmol/L PNPG 0.2L,37℃恒温反应 15min,再加入0.2mol/L Na2CO3终止液 2mL,稀释至 10mL测定405nm处的吸光度。每个实验重复3次。
表1 正交实验因素及水平表Table 1 Factors and levels of orthogonal experiments
1.2.5 数据统计分析 采用Microsoft office Excel 2003软件绘制表格和图形,采用正交设计助手3.1进行显著性方差分析。
浸提时间对滁菊活性成分浸提效果的影响如图1所示。随浸提时间的增加黄酮类物质及多酚类物质的得率先增加后减少,60min时二者的得率相对较高。这可能是在浸提初始时细胞内外存在溶质浓度差,浸提一段时间后,细胞内外溶质达到平衡;浸提时间过长溶质分解导致浸提液中溶质含量降低。所以后续的单因素实验选定提取时间为60min。
图1 浸提时间对滁菊活性成分得率的影响Fig.1 Effect of extract time on extraction rate of Chuju Chrysanthemum morifolium
浸提温度对滁菊活性成分浸提效果的影响如图2所示。由图2可知,随浸提温度的增加二者得率均逐渐增加,这主要是因为温度升高,加速分子运动,能够促使有效物质的溶出。但70℃以上由于温度较高黄酮类物质及多酚类物质可能会发生氧化反应,同时引起杂质的溶出。所以,后续的单因素实验选定60℃为浸提温度。
液固比对滁菊活性成分得率的影响如图3所示。由图3可知,随着液固比的增加,总黄酮和总多酚的得率均增加;液固比在30∶1时总多酚的得率趋于稳定、液固比达到40∶1时总黄酮的得率趋于稳定。这可能是滁菊粉末一定的情况下,溶剂量的增加使得样品颗粒周围溶质浓度降低,增大了细胞内外两侧的浓度差,从而促进滁菊有效成分的溶出[15]。所以40∶1为最优液固比。
图2 浸提温度对滁菊活性成分得率的影响Fig.2 Effect of extract temperature on extraction rate of Chuju Chrysanthemum morifolium
图3 液固比对滁菊活性成分得率的影响Fig.3 Effect of the ratio of liquid to solid on extraction rate of Chuju Chrysanthemum morifolium
以滁菊总黄酮及总多酚含量为考察指标,以浸提温度、浸提时间和液固比作为变量,进行正交实验设计[10],因素水平见表1,实验方案及结果见表2。
表2 正交实验结果与极差分析表Table 2 Result of orthogonal experiments and extreme difference analysis
对正交实验结果进行极差分析,结果如表2所示,在低温浸提滁菊总多酚及总黄酮的影响因素中,影响大小为 A >B>C,最优水平为 A3、B2、C3。方差分析结果如表3、表4所示,三个影响因素中,温度的影响显著,其他两个因素不显著。考虑到液固比对实验结果影响不显著和液固比增大使浓缩成本增加,采用A3B2C1工艺,即用60℃按30∶1的液固比浸提50min为最佳工艺,在此条件下总多酚得率最高可达到5.905mg/g、总黄酮得率可达到53.138mg/g。
滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用如图4所示。由图4可以看出,滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性具有很强的抑制作用,并且随着滁菊浸提液浓度增加,抑制作用增加。当滁菊浸提液浓度为10μg/mL时,对 α-葡萄糖苷酶的抑制率为8.5%,100μg/mL时,抑制率达到97.3%。滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性的IC50为32μg/mL。
表3 总多酚正交实验结果的方差分析Table 3 Results of variance analysis of total polyphenol
表4 总黄酮正交实验结果的方差分析Table 4 Results of variance analysis of total flavonoids
图4 滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用Fig.4 Inhibitory activities of Chuju Chrysanthemum morifolium extract against α-glucosidase
通过单因素实验和正交实验,得出影响低温浸提滁菊效果的因素依次为浸提温度>浸提时间>液固比,从成本角度考虑,最优浸提工艺为浸提时间50min、浸提温度60℃、液固比为30∶1。在此工艺条件下,总多酚及总黄酮最高得率分别为 5.905、53.138mg/g。滁菊浸提液对α-葡萄糖苷酶活性的IC50为32μg/mL。本研究为滁菊饮料开发提供了理论依据和技术支持。
[1]国家药典委员会.中华人民共和国药典2005年版第一部[S].北京:化学工业出版社,2005:218.
[2]贾凌云,孙启时,黄顺旺.滁菊花中黄酮类化学成分的分离与鉴定[J].中国药物化学杂志,2003,13(3):159-161.
[3]聂莹,陈俊帆,苏东海,等.α-葡萄糖苷酶抑制剂的研究进展及食品源抑制剂的开发前景[J].农产品加工·学刊,2012(3):18-23.
[4]王松,鲍方印,郑玉华.滁菊中黄酮类化合物提取方法的优化[J].食品科学,2010,31(12):80-82.
[5]卫强,汪庆健.滁菊中茎、叶中总黄酮的提取工艺研究[J].中兽医医药杂志,2009(1):39-40.
[6].袁敏,刘道芳.正交实验优选滁菊总黄酮的提取工艺[J].安徽医药,2006,10(8):569-570.
[7]安凤平,刘燕,宋江良.白茶低温浸提工艺[J].福建农林大学学报:自然科学版,2010,39(6):595-599.
[8]史玉汉,罗栋源,万端极.速溶红茶粉的低温浸提工艺[J].食品研究与开发,2010,31(10):71-74.
[9]李凤娟,丁兆堂,杜金华.低温浸提茶汁的最优工艺条件[J].食品与发酵工业,2004,30(4):114-116.
[10]梁新红,赵功玲,赵瑞香.分光光度法测定仙人掌酒中总黄酮含量[J].中国酿造,2007(6):67-69.
[11]赵佳,霍俊伟.蓝果忍冬总黄酮提取工艺研究[J].食品工业科技,2010,31(11):243-244.
[12]王丽珠,吴棱,姚元根,等.酒石酸亚铁分光光度法测定茶多酚[J].光谱实验室,1997,14(3):26-29.
[13]胡玲玲,韩丽丽,张超霞,等.茶叶废料中茶多酚提取工艺优化研究[J].广东化工,2011,38(6):30-31.
[14]张丽,李彩芳,李晓梅,等.加拿大蓬α-葡萄糖苷酶的抑制作用[J].河南大学学报:医学版,2008,27(4):39-41.
[15]王倩,常丽新,贾长虹,等.狗枣猕猴桃叶黄酮提取工艺的研究[J].食品工业科技,2011,32(5):235-237.