三种加工方式海带中砷形态和含量的比较

2013-02-19 06:53赵梦醒江志刚
食品与生物技术学报 2013年5期
关键词:盐渍海带海藻

赵梦醒, 刘 淇, 江志刚, 雷 敏, 曹 荣

(1.中国水产科学研究院 黄海水产研究所,山东 青岛 266071;2.青岛农业大学 食品科学与工程学院,山东 青岛 266109;3.山东出入境检验检疫局,山东 青岛 266001)

砷元素普遍存在于自然界各种生物体及环境组分中,砷复杂的新陈代谢方式和生物积累导致这一元素有超过25种不同的形态,并且有广泛的浓度范围[1]。砷的毒性与其化合物的性质,尤其与砷元素的化合价有关[2]。许多砷化合物对动植物都有毒性,其中无机砷被证明是人类的致癌物,而有机砷的毒性较小[3];砷化合物毒性由大到小的顺序为:砷化氢>三氧化二砷>亚砷酸>砷酸>有机砷[4]。因此,在评价食品安全性时,食品中砷元素的形态是重要因素。

海藻是一种高纤维、高矿物质、低脂肪食品[5]。2002年,联合国粮农组织(FAO)调查显示,在亚洲,习惯上把海藻作为食品和药品的天然来源,中国、日本、韩国、越南和印度尼西亚是海藻的最大消费区[6]。我国藻类加工品产量增长迅速,2010年比2007年增长42.78%。近几年,我国海带(Laminaria japonica)每年海水养殖产量占藻类海水养殖产量的一半以上[7-8]。海带是提取海藻酸盐等物质的重要原料,也有相当一部分海带仅经过简单预处理(如晒干)后直接进入市场供消费者食用,海带在实际生产中主要以淡干海带或盐渍海带为主。

海藻中的砷含量较高,一般在20~60 mg/kg(以干重计)之间[9],2006年海藻中无机砷超标问题对海藻加工企业造成严重损失[10]。砷的毒性与其形态密切相关,很多学者采用高效液相色谱(HPLC)、离子色谱(IC)、毛细管电泳(CE)等分离技术,结合电感耦合等离子体质谱(ICP-MS)、原子荧光光谱(AES)等检测技术分析不同形态砷化合物[11-17],但有关海带加工过程中砷形态和含量的变化情况研究较少。因此,本实验以不同加工方式的海带为研究对象,采用高效液相色谱-电感耦合等离子体质谱法(HPLC-ICP-MS)测定海带中的砷形态,并进行定量分析,为海带加工品的开发提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验原料 新鲜海带 (Laminaria japonica),2011年5月采自山东荣成。将新鲜海带按以下3种方式加工处理。

Ⅰ组,直接干燥组:鲜海带冲洗后直接晒干,然后烘干粉碎至40目备用;

Ⅱ组,漂烫组:鲜海带100℃漂烫2 min,自来水冷却后晒干,最后烘干粉碎至40目备用;

Ⅲ组,漂烫-盐渍-水洗组:鲜海带100℃漂烫2 min,自来水冷却,沥水,盐渍(无碘盐质量分数)25%,盐渍时间72 h),冲洗3次,自来水浸泡12 h,再冲洗3次后晒干,最后烘干粉碎至40目备用。

1.1.2 仪器 BSA 224S-CW型分析天平,德国Sartorius公司产品;MARS EXPRESS微波消解仪,美国CEM公司产品;7500cx型电感耦合等离子体质谱仪,美国Agilent公司产品;1260型高效液相色谱仪,美国Agilent公司产品;AFS-2201双道氢化物发生原子荧光光度计,北京海光仪器厂产品;SA-10原子荧光形态分析仪,北京吉天仪器有限公司产品;Milli-Q超纯水系统,美国Millipore公司产品;KQ5200DE型数控超声波清洗器,昆山市超声仪器有限公司产品;TGL-20B型离心机,上海安亭科学仪器厂产品;InoLab pH740型pH计,德国WTW公司产品;涡旋混合器,德国IKA公司产品。

Halmilton PRP-X100阴离子色谱柱 (10 μm,250 mm×4.1 mm),PEEK 管 (φ=0.18 mm);0.45 μm水相微孔滤膜,天津市科亿隆实验设备有限公司提供。

1.1.3 试剂 标准品:亚砷酸根(AsⅢ)、砷酸根(AsⅤ)、一甲基砷(MMA)、二甲基砷(DMA)、砷胆碱(AsC)、砷甜菜碱(AsB),购于中国计量科学研究院;磷酸氢二铵(分析纯),上海试剂二厂产品;甲酸(优级纯),天津市光复精细化工研究所提供;硝酸(优级纯),德国MERCK公司产品。

1.2 方法

1.2.1 海带中总砷含量测定方法 准确称取烘干后的海带粉0.5 g(精确至0.001 g),放入微波消解罐中;加入5 mL HNO3,静置30 min,将消解罐放入微波消解仪中,设定消解程序和参数(如表1所示)并消解;消解后用超纯水定容至50 mL;用ICP-MS测定消解液中的总砷含量,同时测定试剂空白。

表1 微波消解操作程序Table 1 Operating program for microwave digestion system

1.2.2 海带中无机砷含量测定方法 采用高效液相色谱-氢化物发生原子荧光联用技术[18]。

1.2.3 砷形态测定方法

1)流动相的配制

20 mmol/L磷酸氢二铵:称取2.6412 g磷酸氢二铵,加水溶解并定容至1 L。用质量分数10%甲酸调 pH 至 6.0(±0.1),0.45 μm 水相微孔滤膜过滤,超声20 min脱气。

2)标准溶液的配制

砷标准储备液:亚砷酸根、砷酸根、一甲基砷、二甲基砷、砷胆碱(以下简称5种砷)及砷甜菜碱,用超纯水配制每种标准储备液的质量浓度为5 μg/mL,于4℃冰箱保存;

砷标准溶液:将5种砷的标准储备液及砷甜菜碱标准储备液逐级稀释,以20 mmol/L(NH4)2HPO4溶液(pH 6.0)为介质,配制成质量浓度分别为5、10、20、40、100 ng/mL 的混合标准溶液。 利用 ICPMS色谱软件计算色谱峰的积分面积,得到不同浓度梯度的砷形态标准曲线。

3)ICP-MS 工作条件

RF功率1 510 W;雾化器为同心雾化器,用PEEK管将色谱柱与雾化器的入口连接;雾化室温度2℃;蠕动泵转速12 r/min;采样深度7.4 mm;载气流量0.84 L/min;辅助气流量0.31 L/min。

4)色谱条件

色谱柱:Halmilton PRP-X100阴离子色谱柱(10 μm,250 mm× 4.1 mm);流动相:20 mmol/L 磷酸氢二铵,pH 6.0,等度洗脱;进样体积 50 μL;体积流量1.0 mL/min。

5)样品前处理

称取0.1 g左右(精确至0.001 g)海带粉,加入10 mL 20 mmol/L (NH4)2HPO4溶液(pH 6.0),涡旋混匀,超声萃取40 min;8 000 r/min离心10 min,吸取上清液,用0.45 μm滤膜过滤,此滤液即为样品提取液。

1.2.4 样品提取液中总砷含量测定方法 移取0.5 mL样品提取液,加入1 mL硝酸,用超纯水定容至10 mL。采用ICP-MS测定提取液中的总砷含量。

1.2.5 标准曲线绘制方法 对质量浓度分别为5、10、20、40、100 ng/mL 的 5 种砷混合标准溶液和砷甜菜碱标准溶液的砷形态进行HPLC-ICP-MS分析,以砷质量浓度为横坐标,峰面积为纵坐标绘制标准曲线。

1.2.6 数据处理 采用SPSS 17.0统计软件对数据进行 T-检验比较分析,结果用平均值±标准差(±s)表示。

2 结果与分析

2.1 海带样品中的总砷和无机砷含量

表2是不同加工方式海带样品的总砷和无机砷含量。从表中可知,无机砷含量占总砷含量的百分比小于1%;与直接干燥海带相比,漂烫后海带的总砷和无机砷含量均减少,无显著差异(P>0.05);漂烫-盐渍-水洗组海带的总砷含量下降了45.75%,差异极显著(P<0.01)。海带经盐渍水洗后砷含量明显减少,与孙建璋等[19]认为在热烫、盐渍过程中海带含砷量降低的结论相一致。

表2 不同加工方式海带样品中总砷和无机砷含量Table 2 Contents of total arsenic and inorganic arsenic in kelps

2.2 海带样品中不同砷的形态及含量

2.2.1 标准曲线的绘制 图1、2分别是40 ng/mL的5种砷混合标准溶液和砷甜菜碱标准溶液的色谱图,线性回归方程如表3所示,各种形态砷的线性回归方程相关系数R≥0.999 8,在5.0~100.0 ng/mL范围内具有良好的线性关系。

图1 40 ng/mL 5种砷混合标准溶液HPLC-ICP-MS色谱图Fig.1 HPLC-ICP-MS chromatogram of 40 ng/mL mixed standard solution

图2 40 ng/mL AsB标准溶液HPLC-ICP-MS色谱图Fig.2 HPLC-ICP-MS chromatogram of 40 ng/mL AsB standard solution

表3 不同形态砷的线性回归方程Table 3 Linear regression equations of different arsenics

2.2.2 样品分析 不同海带样品中的砷形态及含量如表4所示。结果表明,海带中的砷主要以有机砷形态存在,包括3种未知砷化合物;直接干燥海带中的已知砷形态为AsC、AsB、DMA和少量AsⅤ;与直接干燥海带比较,漂烫海带和漂烫-盐渍-水洗海带中的AsC含量明显下降,差异显著(P<0.05),漂烫海带中的As1和As2含量显著下降(P<0.01或P<0.05),漂烫-盐渍-水洗海带中的砷化合物As1、As2 和 As3 含量下降明显(P<0.01 或 P<0.05);海带经漂烫、盐渍水洗后AsⅤ含量降低;含量毒性相对较大的AsⅢ在3种海带样品中均未检出。海藻中的砷主要以有机形态存在,无机砷含量很低,约占总砷含量的5%以内[20-21],李卫华等[22]、韦超[23]在海带样品提取液中均未检出无机砷。高继庆[24]采用氢化物发生原子荧光技术对干海带、盐渍海带和鲜海带(以湿重计)中的无机砷进行了测定,在扣除水分的影响后,盐渍海带中的无机砷含量下降,与本研究结果趋势相一致。

表4 不同海带样品中砷形态及含量Table 4 Species and contents of arsenic in kelps

图3是直接干燥海带样品的HPLC-ICP-MS色谱图,通过保留时间可以判定,As1、As2、As3三种化合物均为有机砷。因此,海带中的砷主要以有机砷形态存在。从表4可知,漂烫海带中As1、As2与直接干燥海带相比有明显减少,而漂烫-盐渍-水洗海带中As1、As2、As3含量均有所下降,与海带中总砷含量变化趋势相一致,可见砷含量的减少主要是有机砷含量的减少。研究表明,海藻中砷化合物的主要形态是砷糖。孟昭宇[9]研究了水产品中不同价态的砷,发现海藻中砷糖是最主要的砷化物形态,与Toni Llorente-Mirandes等[17]检测结果一致;李卫华等[22]研究发现海带中的砷形态是砷糖PO4、砷糖OH、砷糖 SO3和 DMA;Rehema Tukai等[25]采用微波辅助提取、HPLC-ICP-MS技术检测了褐藻中的砷形态包括砷糖PO4、砷糖OH、砷糖SO3及少量DMA、AsⅢ和MMA;韦超[23]对海带样品中砷形态进行了研究,在样品提取液中检测到砷糖PO4、砷糖OH、砷糖SO3和DMA,其中3种砷糖与本实验中As1、As2、As3的出峰位置相似,据此推测这3种有机砷是砷糖。由于砷糖标准品没有商品化,因此无法对砷化合物As1、As2、As3进行定性和定量。目前,已经有学者从天然物质中分离出砷糖作为标准品[22,25],或者采用高效液相色谱-飞行时间质谱联用技术测定未知砷化物的精确分子量[16],以此来对砷糖进行定性。由于有机砷的C-As键结合牢固,在人体内不能分解和蓄积,毒性很低,基本以原形排除体外[26],砷糖是海带中的主要砷形态,因此未见有食用海带而发生砷中毒的报道。

图3 直接干燥海带样品的HPLC-ICP-MS色谱图Fig.3 HPLC-ICP-MS chromatograms of direct drying kelp

图4是3种海带提取液中不同砷形态含量测定结果的比较。结果显示,海带提取液中3种砷糖化合物含量总和均占总砷含量的95%以上,因此对海带的毒性影响较小;直接干燥海带、漂烫海带和漂烫-盐渍-水洗海带样品的提取效率(提取液中总砷含量与样品中总砷含量的比值)分别是88.59%、58.00%和29.95%,说明不同样品用相同方法提取时,提取效率存在较大差异,与余晶晶等[27]、Slejkovec等[28]的研究结果一致。

图4 海带中不同形态砷含量结果Fig.4 Results of contents of arsenic in extract

3 结语

1)采用ICP-MS方法对不同加工方式的海带进行总砷测定,直接干燥海带、漂烫海带和漂烫-盐渍-水洗海带的总砷含量分别为47.23、42.91 mg/kg和25.62 mg/kg;与直接干燥海带相比,漂烫后海带总砷含量下降9.15%;漂烫-盐渍-水洗海带总砷含量下降45.75%。

2)通过对海带加工过程中砷形态和含量的比较,HPLC-ICP-MS色谱图显示,直接干燥海带和漂烫海带中含有砷胆碱、砷甜菜碱、二甲基砷和少量五价无机砷;漂烫-盐渍-水洗海带中含有砷胆碱、二甲基砷、少量一甲基砷和五价无机砷;3种不同加工方式海带中均含有3种砷糖化合物,其质量约占总砷质量的95%以上,无机砷所占比例小于总砷质量的1%。

3)随着漂烫或盐渍水洗次数的增加,海带中总砷含量下降,且3种砷糖化合物对总砷含量的降低起主要作用。因此,在直接食用或加工海带时可进行漂洗或水洗,以减少海带砷的摄入量。

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