(辽宁医学院附属第一医院,辽宁锦州121001)
勃起功能障碍(ED)是男性糖尿病(DM)患者常见的并发症之一,也是男性DM患者生活质量降低的重要因素。据估计男性DM患者的发病率为35% ~75%,是非DM患者的3倍。目前研究认为,糖尿病性ED(DM-ED)的形成是多因素造成的,其中NO-GC-cGMP信号通路受损和氧化应激失衡在DM-ED的病理机制中具有重要作用。近年来,血红素加氧酶(HO)在勃起功能中的作用备受关注[1]。一氧化碳(CO)是HO催化降解血红素的产物之一,与一氧化氮(NO)有类似的生物学活性,具有浓度依赖性舒张阴茎海绵体平滑肌的作用[2];并且,HO表达与机体的氧化应激水平有密切关系[3],但关于HO与DM-ED的相关研究少见。2010年9月~2011年10月,我们建立DM-ED大鼠模型,观察该模型大鼠阴茎海绵组织中HO的表达变化,探讨其与DM-ED的关系。
1.1 主要试剂及仪器 链脲佐菌素(STZ)、阿扑吗啡(APO),均为 Sigma公司产品;兔抗大鼠 HO-1、HO-2多克隆抗体和免疫组化染色试剂盒,购自北京博奥森生物技术有限公司;三诺安稳型血糖仪及配套试纸;GENE GENIUS凝胶图像分析系统。
1.2 动物模型制备及分组 雄性SD大鼠40只(购自辽宁医学院实验动物中心),体质量260~300 g,为同一批繁殖并与发情雌鼠交配试验证实具有正常的性功能。随机取30只经腹腔注射STZ(65 mg/kg)制作DM模型,余10只作为正常对照组(NC组)。72 h后采用断尾取血法测定血糖,血糖 >16.7 mmol/L为造模成功。每周测定大鼠血糖1次,血糖<16.7 mmol/L者剔除。大鼠自由饮食水,昼夜交替饲养。造模8周后,采用APO诱导试验(大鼠颈部皮下注射 APO 80μg/kg)[4]评价 DM 大鼠的勃起功能,15只发生ED者为DM-ED组,12只(3只死亡)未发生ED者为单纯DM组。
1.3 HO-1、HO-2的检测方法 两组大鼠麻醉后取阴茎海绵体组织,4%甲醛固定,常规石蜡包埋并切片,予以免疫组化SP法染色,观察HO-1、HO-2表达部位,阳性细胞表达呈棕黄色。按试剂说明书操作,用胰酶抗原修复,室温修复20 min,封片后光镜下观察并摄片。采用Western blot法检测HO-1和HO-2表达水平:取冻存大鼠阴茎海绵体组织进行蛋白样品制备,采用BCA法测定蛋白浓度,以β-actin为内参,12%SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,偏二氟乙烯膜转移。常规显影、定影,用GENE GENIUS凝胶成像系统分析其灰度值,以相应内参灰度值进行标准化。以目的蛋白与内参灰度值比值×100作为蛋白相对表达量。
1.4 统计学方法 采用SPSS16.0统计软件。数据以±s表示,两组比较采用t检验。P≤0.05为差异有统计学意义。
各组中均有HO-1、HO-2表达,主要表达于海绵体平滑肌细胞和血管内皮细胞胞质中。各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较,见表1。
表1 各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较(±s)
表1 各组阴茎海绵体组织中HO-1、HO-2相对表达量比较(±s)
注:与NC 组比较,*P <0.01;与单纯 DM组比较,#P <0.05,△P<0.01
HO-1 HO-2 NC组组别11.38 ±1.77 27.69 ±5.07单纯 DM 组 28.49 ±4.74* 16.41 ±2.75*DM-ED 组 18.02 ±3.19*# 7.04 ±2.94*△
HO在体内有丰富的生物学作用,且与氧化应激关系密切,多见于DM相关并发症的研究中[5],其与DM-ED关系的研究少见。Hedlund等[6]研究发现,阴茎海绵体中含有HO-1神经纤维,阴茎血管内皮中存在HO-1和HO-2的表达,认为HO/CO系统与NOS/NO系统在阴茎勃起机制中一定的互补作用。
氧化应激被认为是DM-ED的发病机制之一[7]。高血糖状态使阴茎海绵体局部晚期糖基化终末产物增加,诱导细胞内氧化应激反应,活性氧(ROS)生成增多;ROS随着DM病程的延长而增加,抗氧化物的表达及活性下降,且与DM-ED的严重程度相关[8]。氧化应激损伤DM大鼠血管内皮和海绵体结构;大量的ROS与NO反应,生成高毒性的过氧亚硝酸盐(ONOO-),降低NO的生物利用度,对组织的结构和功能造成进一步损害,且反馈生成更多的ROS,恶性循环最终诱导ED的发生。ROS还可通过其他途径参与ED的病理机制,ROS使eNOS磷酸化受阻,降低eNOS的活性;活化Rho/Rho激酶通路,增强海绵体平滑肌收缩敏感性等[9]。有研究结果证明,抗氧化物还原性谷胱甘肽[10]和过氧化物歧化酶类似物[11]可改善DM大鼠的勃起功能,也间接验证了氧化应激在DM-ED发病机制中的重要性。
高血糖诱导氧化应激损害可适应性上调HO-1的表达,减弱氧化应激造成的损伤;HO-1的表达增加常与应激刺激有关,且对机体常起到保护作用[12]。实验[13]证明,上调 HO-1 表达能诱导抗氧化基因的表达,比如细胞外超氧化物歧化酶(ECSOD)和胞质内过氧化氢酶等,提高细胞抗氧化活性,降低氧自由基的生成;提高血管对乙酰胆碱的舒张反应,改善DM导致的血管内皮功能损害。有学者[14]发现,HO-1的表达能抑制烟酰胺腺嘌呤二核苷酸基磷酸盐(NADPH)氧化酶的活性,减少过氧化物的形成,减轻氧化应激损伤。有研究[15]证实,姜黄素通过提高阴茎海绵体内HO-1的活性、增加cGMP的含量和阴茎海绵体内压,调节大鼠的勃起功能。
HO-2与HO-1具有共同的生物学作用,为结构型酶,其表达基本不被诱导。内源性的CO主要由HO-2催化生成。NO/GC/cGMP信号通路在勃起功能中的作用已被公认。CO是与NO类似的气体分子,在体内有和NO相似的生物学活性,CO可通过活化鸟苷酸环化酶(GC)刺激cGMP的生成,起到舒张阴茎海绵体平滑肌的作用,在勃起功能中有重要作用[8,9]。HO-2基因缺陷的动物,DM 相关氧化应激水平增加,对局部组织或器官结构和功能造成损害[16]。HO-2的表达下降,使胆绿(红)素等有抗氧化活性的内源性物质生成减少,氧化应激水平失衡;且CO生成减少,阴茎海绵体平滑肌结构受损及舒张功能受限,不利于阴茎的正常勃起。有研究[17]认为,慢性肾衰大鼠勃起功能受损可能与阴茎海绵体中HO-2的表达降低有关。
本研究发现,HO-1、HO-2主要表达于大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞和血管内皮细胞胞质中。与正常对照大鼠,单纯DM大鼠和DM-ED大鼠阴茎海绵体组织中HO-1表达均增加,HO-2的表达均降低;而与单纯DM大鼠相比,DM-ED大鼠HO-1、HO-2的表达均降低。我们认为,DM大鼠在高血糖的应激状态下氧化应激水平增加,适应性诱导HO-1的表达增加,氧化应激对平滑肌和血管内皮的损伤使HO-2的表达降低;上调的HO-1可增强局部的抗氧化能力,对机体有保护作用,单纯DM大鼠HO-1代偿能力较强,且HO-2的表达下降不明显,能对抗氧化应激造成的损害,维持正常的勃起功能;与单纯DM大鼠相比,DM-ED大鼠HO-1的代偿增加不足,HO-2表达又进一步降低,局部抗氧化能力显著下降;且HO表达降低导致CO生成减少,进而cGMP的生成量也减少,阴茎海绵体平滑肌的结构受损和舒张功能受限,不利于勃起机制的发生,最终形成ED。
综上所述,DM-ED大鼠阴茎海绵体组织中HO-1表达代偿不足、HO-2表达明显下调;HO-1、HO-2可能参与DM-ED的发生发展,其具体机制仍待进一步研究。
[1]Abdel AMT,Mostafa T,Atta H,et al.Oral phosphodiesterase-5 inhibitors:effect of heme oxygenase inhibition on cGMP signalling in rat cavernous tissue[J].Andrologia,2007,39(2):66-70.
[2]郭玉刚,秦文波,宋文君,等.内源性一氧化碳对离体犬阴茎海绵体平滑肌的作用[J].中华男科学杂志,2006,12(8):685-688.
[3]Ryter SW,Otterbein LE,Morse D,etal.Heme oxygenase/carbon monoxide signaling pathways:regulation and functionalsignificance[J].Mol Cell Biochem,2002,234(1-2):249-263.
[4]Chen Y,Li SX,Yao LS,et al.Valsartan treatment reverses erectile dysfunction in diabetic rats[J].Int J Impot Res,2007,19(4):366-370.
[5]Ndisang JF.Role of heme oxygenase in inflammation,insulin-signalling,diabetes and obesity[J].Mediators Inflamm,2010,2010:359732.
[6]Hedlund P,Ny L,Alm P,etal.Cholinergic nerves in human corpus cavernosum and spongiosum contain nitric oxidesynthase and heme oxygenase[J].JUrol,2000,164(3 Pt1):868-875.
[7]Moore CR,Wang R.Pathophysiology and treatment of diabetic erectile dysfunction[J].Asian JAndrol,2006,8(6):675-684.
[8]Jin L,Burnett AL.NADPH oxidase:recentevidence for its role in erectile dysfunction[J].Asian JAndrol,2008,10(1):6-13.
[9]张琪,易婧雅,商学军.活性氧与勃起功能障碍[J].中华男科学杂志,2009,15(12):1124-1127.
[10]姚乐申,李燕,陈赟,等.还原型谷胱甘肽对糖尿病大鼠阴茎海绵体氧化损伤的影响[J].中国男科学杂志,2009,23(10):5-9,17.
[11]Kawakami T,Urakami S,Hirata H,et al.Superoxide dismutase analog(Tempol:4-hydroxy-2,2,6,6-tetramethylpiperidine1-oxyl)treatment restores erectile function in diabetes-induced impotence[J].Int J Impot Res,2009,21(6):348-355.
[12]Choi KM,Gibbons SJ,Nguyen TV,et al.Heme oxygenase-1 protects interstitial cells of Cajal from oxidative stress andreverses diabetic gastroparesis[J].Gastroenterology,2008,135(6):2055-2064.
[13]Turkseven S,Kruger A,Mingone CJ,et al.Antioxidantmechanism of heme oxygenase-1 involves an increase in superoxidedismutase and catalase in experimental diabetes[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2005,289(2):701-707.
[14]Han Y,Platonov AG,Mia A,et al.Tissue-specific changes in heme oxygenase activity and level of nonprotein thiolsin C57Bl/6 mice afterwhole-body gamma-irradiation[J].Bull Exp Biol Med,2005,140(3):341-344.
[15]Abdel AMT,El AMF,Rezq A,et al.Novel water-soluble curcumin derivativemediating erectile signaling[J].JSex Med,2010,7(8):2714-2722.
[16]Abdel AMT,Mostafa T,Atta H,et al.Putative role of carbon monoxide signaling pathway in penile erectile function[J].J Sex Med,2009,6(1):49-60.
[17]Goodman AI,Chander PN,Rezzani R,et al.Heme oxygenase-2 deficiency contributes to diabetes-mediated increase insuperoxide anion and renal dysfunction[J].J Am Soc Nephrol,2006,17(4):1073-1081.
[18]王潇然,姜睿.血红素氧合酶2在慢性肾衰大鼠阴茎海绵体中的表达[J].中华男科学杂志,2008,14(5):401-405.