一起牛出血性败血症的诊治与体会

田玉栋 任丽萍 高长青 （山东省济南市动物疫病预防与控制中心 250101）

牛出血性败血症，是由多杀性巴氏杆菌引起的一种急性、热性传染病，常以高热、肺炎、急性胃肠炎及内脏广泛出血为主要特征，慢性病例则表现为皮下、关节以及各脏器的局灶性、化脓性炎症。根据病症可以分为败血性、浮肿型和肺炎型。浮肿型及肺炎型是在败血型的基础上发展起来的，本病的死亡率高达80%以上，痊愈牛可以产生坚强的免疫力，但其生产性能会大幅度的下降。笔者参与诊治了一病例。现将该病的发病、诊断及治疗情况报告如下。

1 发病情况

笔者于2004年3月份到该畜牧技术推广站实习，该畜牧技术推广站共有20多头西门达尔种公牛和50头荷斯坦奶牛。2004年9月份10多头发病，死亡9头，其中6头母牛、3头种公牛。初期症状不明显未引起注意，病牛稍喘，体温正常。后期严重哮喘，呼吸次数增加。体温升高，最高42.7℃。反刍次数减少，吃料时咳嗽。鼻镜正常，流延，喜饮水，饮水较多，流延越多，尿发黄，粪便初期含未消化的饲料，后期变黑变稀，并混有血液。倒地不起，四肢蹬直，3～4d死亡。奶牛多在干奶期后严重消瘦。早期应用多种药物，如卡那霉素、磺胺嘧啶钠、双黄连、四环素等治疗均无效。

2 剖检变化

呈急性败血性病变，浆膜及黏膜上均有出血点；咽喉部肿胀，淋巴结肿大。胸腔积液，心包积水。肝脏大，土黄色。特征性病变有肺表面黑红色，圆形黑色坏死灶，边缘肉变，切开可见有大量的泡沫，切面血红色，肺部坏死，轮廓不明显。

3 实验室诊断

3.1 涂片镜检 采取心血、支气管泡沫、肝、肺、脾等病料，进行革兰氏染色和瑞氏染色。结果可见大量革兰氏阴性短小杆菌，瑞氏染色可见明显的两极着色。

3.2 细菌及支原体培养 无菌采集病料，划线接种麦康凯培养基、血琼脂培养基和Hartleys支原体培养基。37℃培养结果为：麦康凯培养基和支原体培养基均无菌落出现，而琼脂培养基上出现水滴样小菌落，不溶血。经涂片镜检，为革兰氏阴性，瑞氏染色同病料中细菌形态相同，为明显的两极着色。

3.3 小白鼠接种试验 将病料研磨，与无菌生理盐水以1:5混合，腹腔内接种每只0.2ml。结果小白鼠于24h内全部死亡。剖检可见败血性出血性变化，病变脏器和心血涂片镜检，革兰氏染色为阴性，瑞氏为两极着色。

经临床症状、剖检变化和实验室诊断确诊为多杀性巴氏杆菌引起的牛出血性败血症。

4 治疗

青链霉素、葡萄糖、生理盐水及维生素C的静脉注射，3～5d。同时用长效土霉素，肌肉深层注射。中草药制剂：鱼腥草45g、双花45g、连翘30g、薄荷35g、桔梗40g、黄连20g、黄苓30g、黄柏35g、石菖莆40g、青黛25g、甘草15g水煎后，加蜂蜜200g、酒200g灌服。1剂/d，连用3剂。1周后病情全部得到控制。

5 讨论

本次发病延续时间长，并且死亡具有一定的间隔时间。由于未能及时诊断该病，因而造成了巨大损失。巴氏杆菌广泛分布于周围环境中，寒冷、闷热、气候剧变、潮湿、拥挤、圈舍通风不良、阴雨连绵、营养不良、饲料突变、寄生虫病等多种因素都可诱发该病。本次发病可能是因为日常管理不善而造成。

根据本病的传播特点，应该首先增强持续抵抗力。平时应加强饲养管理，避免拥挤和受寒，进行定期的消毒。因该根据本地的血清型选择相应的疫苗，制定合适的免疫程序。发病初期，应进行及时隔离和封锁，有条件的使用巴氏杆菌高免血清和抗生素同时使用。也可以使用疫苗进行紧急免疫。