大孔树脂分离纯化羟基酪醇工艺研究

2012-01-25 07:34党建章金元宝毛友枚代建国金刚
中成药 2012年9期
关键词:大孔橄榄羟基

党建章,金元宝,毛友枚,代建国,金刚

(深圳职业技术学院应用生物技术系,广东深圳518055)

欧橄榄(Olea europaea L.)也称油橄榄是地中海国家著名的亚热带果树和重要经济林木,含丰富优质食用植物油—橄榄油,同时含有丰富多样的酚类化合物[1-3]。大量研究表明:该酚类化合物具有抗菌、抗肿瘤、抗动脉粥样硬化、抑制DNA氧化损伤、保护皮肤光损伤以及抗炎等活性[4-6]。研究还表明:橄榄叶中含有的抗氧化活性的酚类化合物的量明显高于橄榄果、树皮和橄榄油。近年来全国欧橄榄种植面积逐年增加,预计今后10年我国欧橄榄产业将进入蓬勃发展期[7],届时将有大量廉价的橄榄叶供应,为橄榄叶提取物产业的发展提供了广阔的空间,具有良好的发展前景。

羟基酪醇(Hydroxytyrosol)化学名为3,4-二羟基苯乙醇,属两性分子,既脂溶也水溶。羟基酪醇有很强的抗氧化作用,能阻止多不饱和脂肪酸的自氧化,羟基酪醇对自由基的清除能力比其他抗氧化物质都高,可有效地清除内源性和外源性的自由基和氧化物,包括过氧化氢、超氧化物阴离子以及次氯酸等,是一种值得研究和大力开发的天然食品抗氧化剂。自然界中天然的羟基酪醇很少以游离的形式存在,由于橄榄叶中含有0.5%~2.0%的橄榄苦苷(oleuropein),因此国外实验室多用硫酸或盐酸来酸解橄榄苦苷生产羟基酪醇[8],酸解过程见图1。

图1 橄榄苦苷酸解生成羟基酪醇

目前从橄榄叶中分离纯化羟基酪醇,国内还刚起步,本实验在现有的工作基础上[9-10],筛选适用的大孔吸附树脂进一步分离纯化羟基酪醇,为羟基酪醇的产业化生产奠定基础。

1 仪器、材料和试剂

LC-20A岛津高效液相色谱仪:包括二元泵、DAD检测器、柱温箱、真空脱气机、自动进样器;LR4000旋转蒸发仪(Heidolph);SHZ-D(Ⅲ)循环式真空泵;美国PALL cascada IX型超纯水制备仪;KQ3200DE型数控超声波清洗器;日本TOMY KOGYO CO,LD自动高压灭菌锅。

羟基酪醇对照品购自成都普瑞法科技开发有限公司,批号为080928,纯度≥98%;橄榄叶由深圳市力可生物技术有限公司提供(西班牙进口),橄榄苦苷质量分数为1.7%,羟基酪醇质量分数为0.05%;Ⅱ型ZTC1+1天然澄清剂购自天津正天成澄清技术有限公司;大孔吸附树脂AMBERLITE-XAD4(简称XAD4)由深圳市力可生物技术有限公司提供,HP20、LX-18C、HPD400A购自天津市光复精细化工研究所;色谱纯三氟乙酸、甲醇、乙腈购自天津协和昊鹏色谱科技有限公司;水为重蒸蒸馏水;其余试剂均为国产分析纯。

2 羟基酪醇定量测定[9]

2.1 色谱条件流动相:A为三氟乙酸水溶液(pH 2.5),B为乙腈,体积流量:1 mL/min,检测波长:280 nm,柱温:30℃,检测时间:30 min,进样量:5 μL,羟基酪醇保留时间约为10.5 min左右,梯度洗脱程序为:流动相B:0 min 5%;30 min 25%。

2.2 对照品贮备液的制备精密称取羟基酪醇对照品10.0 mg,置100 mL量瓶中,用体积分数60%甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,配成0.1 mg/mL的贮备液备用。

2.3 对照品标准曲线的确定用LC-20A岛津高效液相色谱仪检测,对照品的进样量为1、5、10、20、40 μL,以对照品进样量为横坐标,以峰面积为纵坐标计算回归方程,结果表明羟基酪醇在0.1 μg~4μg范围内呈良好的线性关系。回归方程为:Y=748 755X-7 166.6(r=0.999 2)。

2.4 样品羟基酪醇纯度的测定精密称取经过真空旋转蒸发,干燥至恒质量的样品,用60%甲醇定容,HPLC检测,根据回归方程计算得到橄榄苦苷含有量,按下式计算橄榄苦苷纯度。橄榄苦苷纯度=固形物中橄榄苦苷质量/固形物质量×100%。

3 方法与结果

3.1 羟基酪醇的粗提取称取干燥并粉碎的橄榄叶,按照料液比1∶30加入0.5 mol/L HCl,在温度105℃、压力20.79 kPa(高压灭菌锅表压)条件下水解15 min,趁热过滤,滤液冷却至室温后,用5 mol/L NaOH调节至pH 5,加入经预处理的ZTC1+1天然澄清剂,ZTC1+1添加量为:B组分的最终质量浓度为0.2 g/L;A组分的最终质量浓度为0.1 g/L,添加顺序为先加B组分后再加A组分,加完每一种组分后都放置在100℃的水浴锅中水浴2 h,水浴完成后,冷却至室温,真空抽滤,除去滤渣,按上述条件澄清3次后备用,称为粗提液,粗提液羟基酪醇质量浓度为0.62 mg/mL。

3.2 大孔树脂预处理大孔树脂用95%乙醇浸泡过夜,清洗后,再换用95%乙醇浸泡120min,然后用蒸馏水洗至无醇味后备用。

3.3 大孔树脂筛选分别称取预处理的HP20、LX-18C、AMBERLITE-XAD4(简称XAD4)、HPD400A树脂各10 g,装具塞瓶中,每种树脂称取两份,每份树脂中加粗提液50 mL(经前期试验确定的加量),30℃,120 r/min振荡吸附过夜,真空抽滤,抽滤后每份树脂中加蒸馏水50 mL,30℃振荡洗涤5 min,然后抽滤,分别检测吸附液和水洗液。在吸附后的树脂中各加入40%乙醇50 mL,30℃振荡120 min解析,然后真空抽滤,解析液取样检测,重复上述解析过程,共解析3次,平均结果见表1。

表1 4种树脂吸附和解析率的实验结果

从上述结果可知:XAD4树脂和LX-18C树脂的吸附率、水洗率、解析率都较理想,从树脂来源和成本综合考虑我们选择XAD4树脂继续以下实验。

3.4 XAD4树脂的吸附时间称取预处理的XAD4树脂100 g,加粗提液500 mL,每隔30 min,取样检测羟基酪醇的峰面积,计算吸附率。结果见表2(表中的实验数据为平行实验2次的平均结果)。

表2 XAD4树脂吸附时间的选择

从上述结果可知:XAD4树脂吸附120 min后,吸附率可达90.2%,因此吸附时间以120 min为宜。

3.5 乙醇解析浓度的确定取上述吸附羟基酪醇的树脂100 g,加蒸馏水500 mL洗涤,真空抽滤,洗水取样检测,峰面积为55 985,羟基酪醇损失率为2.4%;称取上述抽滤后的树脂10 g,共3份,每份中分别加入20%、40%、60%的乙醇50 mL,37℃振荡解析,解析120 min后取样检测,按上述条件再重复解析一次,结果见表3(表中的实验数据为平行实验2次的平均结果)。

从上述结果可知:选用60%乙醇解析,两次解析率之和为89.3%。

3.6 XAD4树脂的放大实验称100 g经处理的XAD4树脂,加入500 mL上述澄清液,吸附饱和、洗涤后加入60%乙醇500 mL,37℃振荡解析120 min,抽滤收集解析液,按以上条件再解析一次,将两次解析液合并,取样待检,然后将合并的解析液浓缩至45 mL,取样待检。用乙酸乙酯进行萃取,经3次萃取后合并萃取液,总体积为300 mL,将萃取液置旋转蒸发仪中蒸干,干燥器干燥24 h称质量(蒸发干燥后的瓶质量减去蒸发前的瓶质量),得到羟基酪醇的干质量为438.7 mg,蒸馏瓶用60%甲醇溶解并洗涤,溶解样定容到30 mL,取样待检,结果见表4。

表3 不同含乙醇量解析的解析结果

表4 XAD4树脂的放大实验结果

从上述结果可知:采用XAD4树脂分离纯化羟基酪醇其吸附率为91.1%,解析率为91.6%,纯度可达44.1%。

4 讨论

4.1 本实验采用树脂静态吸附和静态解析,简化了工艺,工业上只需带搅拌的搪瓷罐进行吸附和解析,省去了树脂柱,降低了成本,具有实用价值。

4.2 羟基酪醇为油状物,浓缩后不能用常规的喷雾干燥器干燥,在浓缩物中加入适当的填充剂,使产品成粉末状,还有待进一步研究。

[1]柏方敏.油橄榄产业考察报告[J].湖南林业科技,2008,35(1):36-38.

[2]Keys A.Mediterranean diet and public health:personal reflections[J].Am J Clin Nutr,1995,61(6):1321–1323.

[3]Fernández-Bolaños JG,López Ó,Fernández-Bolaños J,et al.Hydroxytyrosol and derivatives:isolation,synthesis,and biological properties[J].Current Organic Chemistry,2008,12(6):442-463.

[4]Vissers MN,Zock PL,Katan MB.Bioavailability and antioxidant effects of olive oil phenols in humans:a review[J].Eur J Clin Nutr,2004,58:955-965.

[5]张小梅.羟基酪醇生物学作用的细胞与分子机制研究[D].大连:大连医科大学,2008.

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[7]张东升,黄易,夏自谦.论我国油橄榄产业发展规划[J].林产工业,2010,37(2):50-55.

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[9]党建章,侯金星,黄志斌,等.盐酸水解橄榄苦苷粗提物制备羟基酪醇[J].中药材,2011,34(6):983-985.

[10]金元宝,党建章,代建国,等.羟基酪醇分离纯化方法研究进展[J].食品科技,2011,36(7):174-177.

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