脱细胞鸡肌腱的制备与体外生物力学测定的实验研究

2011-11-11 03:55胡成栋刘曦张伯勋周玉军陈怀志李东风王飞
河北医药 2011年18期
关键词:胶原肌腱力学性能

胡成栋 刘曦 张伯勋 周玉军 陈怀志 李东风 王飞

同种异体肌腱较自体肌腱来源广泛,是目前肌腱替代品的主要来源。常用的冻干肌腱制作保存较方便,但细胞外结构破坏明显,而低温冷冻肌腱操作较为复杂、费时,冷冻过程中形成大量冰晶,致使所保存的肌腱活性较低,同时两者均存在一定程度的免疫排斥反应,而肌腱脱细胞处理在明显降低免疫原性的同时,较好的保留了肌腱的细胞外结构,本文探索同种异体肌腱脱细胞处理的可行性。

1 材料与方法

1.1 设计 以来亨鸡屈趾深肌腱为研究对象,首先应用正交设计法筛选适于进行肌腱脱细胞保存的化学方法,并应用图像分析系统予以判定,随后将脱细胞肌腱进行生物力学测定,并采用单盲法与正常肌腱进行随机对照的验证性研究。所有实验人员均接受过培训。

1.2 材料 3~4个月龄来亨鸡18只,雌雄不拘,体重2.0 kg左右(由解放军总医院实验动物中心提供,普通级),随机分为2组:以脱细胞处理的鸡屈趾深肌腱为实验组,以新鲜鸡屈趾深肌腱为对照组,每组9只。

1.3 方法

1.3.1 切取标本:来亨鸡俯卧位固定,双下肢外展,常规消毒铺巾,以1%利多卡因进行局部趾神经阻滞,取双侧第1趾掌侧正中切口,长约6 cm,切开皮肤及皮下组织,显露屈趾肌腱鞘,游离并切取屈趾深肌腱,将脱细胞组肌腱置入D-Hank’s液,于-10℃冷冻24 h后备用,新鲜组肌腱于实验前切取应用。

1.3.2 脱细胞肌腱的制备:主要以Courtman等[1]提出的方法为基础完成。①将冻存的左侧第1趾屈肌腱取出,37℃水浴复温,反复冻融3次。②将复温的鸡屈肌腱然后将肌腱置于37℃、5%CO2的环境下,经过0.25%胰蛋白酶 +0.01%EDTA作用12 h。③将胰蛋白酶消化后的肌腱应用D-Hank’s液反复漂洗后,放入1%Triton-X100(D-Hank’s为溶剂)溶液中,在25℃、5%CO2的环境下,水浴振荡(150 r/min)的条件下作用120 h。④再将屈肌腱以无菌蒸馏水持续冲洗48 h。完成了脱细胞肌腱的制备。

1.3.3 脱细胞肌腱形态学观察:分别将新鲜肌腱与脱细胞肌腱,以10%甲醛固定,常规脱水、包埋、切片,苏木素-伊红(HE)染色及Masson三色染色,于光学显微镜下观察。将新鲜肌腱与脱细胞肌腱制成超薄切片,于透射电镜下观察肌腱的超微结构。

1.3.4 羟脯氨酸(Hyp)含量测定:应用碱解比色法[2],配制标准羟脯氨酸溶液,制备羟脯氨酸标准曲线,然后将2组肌腱(n=6)切成长20 mm腱段,进行体外冷干、称重、研磨、超声破碎、高压水解、加氯氨-T及Ehrlich’s试剂显色、分光光度计检测及计算。

1.3.5 2组肌腱间力学性能比较:将肌腱(n=6)分别固定于生物力学试验机上,进行滞后环、应力松弛试验、破坏试肌腱验测定,并测定的肌腱截面积(将破裂肌腱应用10%甲醛预固定,在破裂肌腱断端邻接处,截取厚约0.5 mm肌腱,于低倍镜下测量肌腱横断面的长轴与横轴,并应用数码相机记录,然后应用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件计算横断面的面积),计算肌腱的残余载荷比(%)、破裂伸长率(%)、弹性模量与破裂强度。

1.4统计学分析应用SPSS 12.0统计软件,计量资料以±s表示,采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 大体观察 实验组肌腱为乳白色长索状组织,表面光滑,弹性韧性良好。但对照组肌腱形态稍显松弛。

2.2 光镜观察 实验组可见粗大的胶原纤维沿纵轴平行分布,排列规整,相互间有交叉,可见沿胶原纤维周围呈串珠状纵向分布的肌腱细胞,核呈椭圆形,横切面显示,断面呈网格状,多根胶原纤维连接较紧密呈束状,周围有完整的结缔组织包绕。试验组无肌腱细胞,胶原纤维排列规整,横切面显示胶原纤维周围包绕的结缔组织较疏松,余与对照组基本一致。

2.3 透射电镜观察 对照组肌腱内胶原原纤维排列规整,多呈波浪状,纤维间相互交联,纤维上有明暗交替的周期性横纹,肌腱细胞数量少,分布于胶原原纤维间,肌腱细胞有多个树状突起与胶原原纤维紧密相连,肌腱细胞内胞核为1个,体积较大,核旁可见线粒体和大量粗面内质网,内含絮状物质。实验组内无肌腱细胞,胶原原纤维排列较规整,但较新鲜组松散。

2.4 Hyp含量测定 实验组Hyp含量为(69±6)mg/g,对照组为(68±6)mg/g,2组比较差异无统计学意义(t=0.18,P >0.05)。

2.5 肌腱生物力学性能测定

2.5.1 滞后环:2组肌腱均存在滞后环。

2.5.2 应力松弛试验:肌腱临界载荷与峰值载荷的比值为残余载荷比,此比值反映肌腱应力松弛幅度之间的差别。2组间差异无统计学意义(P>0.05)。见表1。

2.5.3 破坏试验:2组间破裂伸长率差异无统计学意义(P>0.05)。

2.5.4 2组肌腱力学性能比较:在肌腱的应力-应变曲线的第二段(线区)内,其弹性模量保持基本不变。2组间的弹性模量与破裂强度差异均无统计学意义(P>0.05)。见表1。

表12组肌腱相关生物力学性能比较n=9,±s

表12组肌腱相关生物力学性能比较n=9,±s

组别 残余载荷比(%)破裂伸长率(%)弹性模量(GPa)破裂强度(MPa)81 ±5 18 ±1.6 1.47 ±0.18 160 ±19 76 ±5 20.0 ±2.2 1.34 ±0.12 172 ±17实验组对照组

3 讨论

对肌腱脱细胞处理的主要目的在于减少免疫原性的同时,较好的保持肌腱基本结构与力学性能,能够为肌腱及髌腱的修复提供移植物,为组织工程化肌腱提供细胞外基质。

3.1 肌腱脱细胞处理的原理 研究发现,同种异体肌腱是一种“结构性”移植,植入的肌腱只起到“生长支架”的作用,肌腱胶原纤维不表达免疫原性,肌腱细胞及抗原呈递细胞 (APC)是产生免疫排斥的主要来源[3-5]。因此,应用化学法对同种异体肌腱进行脱细胞处理后,将有效降低肌腱的免疫原性,同时保留肌腱的胶原纤维结构,为滑膜外肌腱及跟腱、髌腱缺损提供了新的移植材料。

合格的脱细胞肌腱应该达到以下标准:(1)去除异体肌腱的免疫原性;(2)保留肌腱的胶原结构成分;(3)保持肌腱的生物力学特性。常规脱细胞的物质有2种[6,7]:(1)去垢剂:去垢剂是一类可溶于水的脂类,能够裂解脂膜,溶解抗原,清除免疫复合物。去垢剂分为:①离子型:包括SDS、LiDS、胆酸钠、脱氧胆酸钠等。其缺点是使蛋白质高度变性,并使蛋白质以单体形式分离。②非离子型:包括 Triton-X 100、Triton-X 114、NP-40、辛葡糖苷等。对蛋白质的干扰及蛋白质变性的作用较弱。③两性型:包括CHAPS、Zwitterget等。(2)消化酶:应用胰蛋白酶、脱氧核糖核酸酶和核糖核酸酶等作为脱细胞剂。我们根据肌腱组织的结构特点,通过预实验发现联合应用胰蛋白酶、Triton-X 100能够较好的达到实验要求。

3.2 2组肌腱形态结构比较 本实验中,在光镜下观察发现,脱细胞肌腱内无肌腱细胞,而胶原纤维排列稍欠规整,胶原纤维间隙较新鲜组稍宽,出现这种结构的差别的原因,可能在于非离子型去垢剂及消化酶在完成脱细胞过程中,对于胶原结构稍有影响,而这种差别在电镜下较为明显,表现为胶原原纤维间的间隙增宽,排列较紊乱。总之,肌腱经脱细胞处理后,肌腱细胞去除较为彻底,细胞外结构获得较好的保存。

3.3 2组肌腱Hyp测定比较 Hyp是胶原蛋白中的特征性氨基酸,约占胶原总量的10%,主要参与胶原分子间的交联,是胶原分子两股螺旋空间构象的一级结构基础[8]。通过测量肌腱中的Hyp含量可以了解脱细胞处理是否会对肌腱内成分产生影响。本实验应用碱解比色法来测定Hyp结果显示2组肌腱的Hyp含量无统计学意义(P>0.05)。因此,可以认为脱细胞处理对肌腱的胶原含量无明显影响。

3.4 2组肌腱生物力学性能比较 在本实验中,通过体外单轴纵向拉伸试验,探讨脱细胞处理对肌腱力学性能的影响,结果显示脱细胞肌腱保留了肌腱作为粘弹体的力学特征,存在滞后环和应力松弛现象,2组肌腱间的残余载荷比无统计学意义(P>0.05)。在破裂实验中,2组肌腱的应力-应变曲线形态基本一致,在曲线的第二段内,应力-应变线性关系明显,其弹性模量差异无统计学意义(P>0.05)。肌腱的破裂伸长率反映胶原纤维的极限伸展情况,结果显示,2组肌腱破裂伸长率差异无统计学意义(P >0.05)。

在软组织的生物力学测试中,软组织截面积的准确测算非常困难,在本实验中,尝试应用了物理测距法、石蜡切片法、冰冻切片法等方法,发现结果误差均较大。最终选择应用10%甲醛预固定,以增加其硬度及脆性,低倍镜下测量截面的长、短径,图像分析软件下测量截面积的方法,获得较为准确的数据,为生物力学计算提供良好的基础。

总之,经过脱细胞处理处理,在去除肌腱细胞的同时,肌腱细胞外胶原结构及力学性能均得以较好保留。

1 Courtman DW,Pereira CA,Kashef V,et al.Development of a pericardial acellular matrix biomaterial:biochemical and mechanical effects of cell extraction.J Biomed Mater Res,1994,28:655-666.

2 Reddy GK,Enwemeka CS.A simplified method for the analysis of hydroxyproline in biological tissues.Clin Biochem,1996,29:225-229.

3 Jackson DW,Simon TM,Kurzweil P.Survival of cells after intraarticular transplantation of fresh allografts of the patellar and anterior cruciate ligaments.J Bone Joint Surg(Am),1992,74:112-118.

4 Arnoczky SP,Warren RF,Ashlock MA.Replacement of the anterior cruciate ligaments using a patellar tendon allograft.J Bone Joint Surg(Am),1986,68:376-385.

5 Nellas ZJ,Loder BG,Wertheimer SJ.Reconstruction of an achilles tendon defect utilizing an Achilles tendon allograft.J Foot Ankle Surg,1996,35:144-148.

5 Nyland J,Larsen N,Burden R,et al.Biomechanical and tissue handling property comparison of decellularized and cryopreserved tibialis anterior tendons following extreme incubation and rehydration.Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc,2009,17:83-91.

6 Elder BD,Eleswarapu SV,Athanasiou KA.Extraction techniques for the decellularization of tissue engineered articular cartilage constructs.Biomaterials,2009,30:3749-3756.

7 Cartmell JS,Dunn MG.Effect of chemical treatments on tendon cellularity and mechanical properties.J Biomed Mater Res,2000,49:134-140.

8 Patino MG,Neiders ME,Andreana S,et al.Collagen as an implantable material in medicine and dentistry.J Oral Implantol,2002,28:220-225.

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