2,3-吲哚醌对小鼠PD模型黑质BAX基因表达影响*

2011-01-23 07:23宋丽萍朱秀丽张继国
关键词:黑质免疫组化特异性

张 芳 宋丽萍 朱秀丽 张继国 岳 旺

(1.青岛大学医学院药理学教研室,山东 青岛 266021;2.泰山医学院药理学教研室,山东 泰安 271016)

1982年,人们发现一些吸毒者注射了被1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶(1-methyl-4-pheny-1,2,3,6-tetrahyrdropyridine,MPTP)污染的的毒品后出现了帕金森综合症[1],从此MPTP作为一种神经毒素被人们所认识,MPTP有高度的亲脂性,虽然本身不具有神经毒性,但可以穿越血脑屏障,并主要在星形胶质细胞和5-羟色胺能神经元内的单胺氧化酶B作用下转变为有毒性的1-甲基-4-苯基吡啶离子(1-methyl-4-phenylpyridium,MPP+),然后释放到细胞外,经由多巴胺转运体(Dopamine transporter,DAT)进入多巴胺能神经末梢和胞体,选择性破坏黑质多巴胺能神经元,导致黑质细胞体、纹状体神经末梢多巴胺递质的大量减少[2]。

生命有机体的生长发育离不开细胞的增殖、分化和凋亡,BCL-2家族成员在细胞凋亡的基因调控过程中起着至关重要的作用,该家族可以分为两类:一类是抗细胞凋亡基因,代表基因是BCL-2基因;另一类是促细胞凋亡基因,代表基因是BAX基因,他们通过激活一系列下游基因发挥调节凋亡作用[3]。研究发现BAX蛋白水平与凋亡调控直接相关,BAX蛋白高表达决定细胞在受到凋亡刺激信号后趋于凋亡[4]。

2,3-吲哚醌(isatin,ISA),又名靛红,是近年发现存在于人和动物体内的一种内源性活性因子,具有多种生物学活性。先前我们在多种动物模型证实ISA可提高脑内DA含量,减轻大鼠6-OHDA损毁模型的旋转行为[5],然而有关其对脑内DA神经元的保护作用尚未见报道,为了探讨ISA对PD模型小鼠是否具有保护作用,本实验在C57BL/6J小鼠PD模型,检测黑质BAX基因的表达情况。

1 材料与方法

1.1动 物

健康雄性C57BL/6J小鼠,10-12w,体重21±2g,由北京维通利华动物实验中心提供,合格证号:scxk(京)2002-2003。置于室温19±2℃,12:12小时昼夜循环光照条件下生活,自由饮水、取食。动物于实验前适应实验室一周。

1.2仪器与药品

MPTP,美国Sigma公司产品,规格:100mg/瓶,批号:085k4616,纯度≥98%(HPLC);ISA,北京化工厂生产,批号:I0080,纯度≥97.5%(T);柠檬酸、柠檬酸钠:均为北京化工厂产分析纯。甲醇:山东禹王化工厂,色谱纯,多聚甲醛,山东禹王化工厂,用0.1 M磷酸盐缓冲液(PBS)配成浓度为4%的溶液,PH值为7.4。

电子天平:德国SARTORIUS产品。冰冻切片机:德国Leitz公司制造。2.5、10、20、200、1000 l微量加样器:德国Eppendorf产品。

1.3模型制作

C57BL/6J小鼠随机均分为5组,n=6:①NS 10 ml/kg,灌胃(ig),连续10 d;② NS,10 ml/kg,ig,连续10 d;③ ISA 50 mg/kg ig,连续10 d;④ ISA 100 mg/kg ig,连续10 d;⑤ ISA 200 mg/kg ig,连续10 d;后四组于末次给药次日MPTP15 mg/kg腹腔注射(ip),每隔2 h 1次,共四次;①组ip等体积NS。每次注射后观察小鼠行为变化。于末次注射MPTP 24 h后处死小鼠,灌注固定取脑。

1.4免疫组化染色

用水合氯醛将小鼠深度麻醉后,从左心室插管快速灌注37℃ NS 150~200 ml冲洗至小鼠肝脏发白,随即灌注4℃ 4%多聚甲醛约150 ml,至头与四肢已发硬。然后断头取脑,置于4%多聚甲醛,于4℃固定6 h,置入4℃20%蔗糖磷酸缓冲液内,脑块沉入瓶底后再移入30%蔗糖磷酸缓冲液,待脑块沉底后进行切片。

修整中脑组织块进行冠状连续冰冻切片,片厚16μm,载玻片预先用多聚赖氨酸铺被。进行BAX免疫组织化学染色。

从冰箱中取出脑片,晾干→放在玻璃片盒中0.3%甲醇溶液-H2O2溶液30 min(1 ml 30% H2O2+99 ml甲醇)→0.01 MPBS冲洗5 min×3次→加入抗原修复液,高火沸腾→低火10~15 min→室温冷却→擦干,滴加SABC中的A液,置37℃水浴温孵30 min(A液,蓝色)→0.01 M PBS稀释一抗→滴加一抗(每片约20μL),4℃冰箱过夜(约12 h)时间可调整→0.01M PBS冲洗5 min×3→擦干,滴加二抗(黄色),37℃水浴1 h(室温2 h或4℃过夜)→0.01 M PBS冲洗5 min×3→擦干。滴加SABC中C液(红色)→37℃水浴1 h,0.01 M PBS冲洗5 min×3次→DAB显色后镜下观察无新的阳性C出现时,0.01 MPBS冲洗(注:DAB有毒,现用现配,避光)

BAX染色进行吸光度值测定,切片拍照后simple PCI 软件分别测定SN区和皮层的吸光度值。按Franklin-Paxinos 编著的小鼠脑图谱,镜下辨认核团,用鼠标勾画图像相应核团边界。计算BAX特异性免疫反应结合率,即用SN区测得的吸光度值减去皮层非特异性染色的吸光度值为特异性染色,免疫反应结合率=特异性染色/非特异性染色,进行比较。

2 结 果

给予MPTP的各组小鼠均表现出运动障碍,动作迟缓,前肢抬举伴震颤、竖毛,对外界反映低下,短暂性活动减少等症状,经ISA 100 mg/kg、200 mg/kg预处理的小鼠,上述表现明显减轻。

2.1ISA对MPTP模型小鼠BAX免疫反应活性影响

BAX基因表达在黑质细胞的胞质。PD模型组BAX免疫组化染色灰度值明显高于对照组;经ISA100 mg/kg、200 mg/kg处理的PD组BAX免疫组化染色灰度值显著低于未经处理的PD组,且随着ISA剂量的增加灰度值减小(表1)。

表1 ISA对PD模型小鼠黑质BAX免疫组化染色灰度值的影响(n=6)

GroupSpecific grey levelControl4.35±1.4MPTP16.42±3.7*MPTP+ISA 50mg/kg14.49±2.3MPTP+ISA 100mg/kg12.33±2.2#MPTP+ISA 200mg/kg8.33±1.3#

*P<0.01, compared with Control;#P<0.05, compared with MPTP group

MPTP模型组与正常组对照组相比,黑质致密部特异性BAX免疫反应结合率显著增高;ISA 100 mg/kg、200 mg/kg组特异性BAX免疫反应结合率与MPTP模型组相比有明显地降低(图1)。

图 1 C57BL/6J小鼠黑质区BAX免疫组化照片(10×10)

1: control; 2: MPTP; 3: ISA 50 mg/kg+MPTP; 4: ISA 100 mg/kg+MPTP;5: ISA 200 mg/kg+MPTP

3 讨 论

本实验以MPTP作为损伤因素,造成小鼠PD模型进行研究。MPTP本身对神经元并无毒性,因其具有高度的亲脂性,外周给药很容易进入脑内,在胶质细胞的MAO-B催化,经短暂的中间代谢产物生成MPP+才对DA能神经元表现出选择性毒性作用[6]。MPP+进入DA能神经元后,被线粒体主动摄取而浓集,特异性抑制氧化呼吸链复合体I和电子传递,产生反应氧族和一氧化氮等导致黑质DA能神经元坏死,在多种动物中产生类似于PD的症状和病理改变,是目前常用的PD动物模型。

在黑质多巴胺能神经元凋亡过程的研究中,BCL-2和BAX成为抑制凋亡基因和促进凋亡基因是研究热点。BCL-2家族是多基因家族,它包括抗凋亡蛋白BCL-2和BAX以及促进凋亡基因BAX、BCL-Xs、Bad,双方的比值在细胞凋亡过程中起作用[7]。BCL-2蛋白是一种膜整合蛋白,存在于细胞的线粒体、核膜、内质网膜上;BAX蛋白是Otter等[8]在研究BCL-2等其他蛋白相互作用同时发现的,它有6个外显子,编码相对分子质量21000的BAX蛋白,在组织中广泛表达。当BAX同源二聚体形成,促进凋亡;当BCL-2蛋白表达增加,越来越多的BAX二聚体分开,与BCL-2形成更稳定的异源二聚体,中和了BAX二聚体诱导凋亡的作用,即细胞内BCL-2和BAX的比例调节了凋亡的发生。因此,可以通过观察BAX蛋白来观察ISA对PD模型小鼠的保护作用。

本实验结果显示,MPTP处理的小鼠SN内BAX免疫组化染色明显高于正常组,BAX表达水平明显增高,提示MPTP导致了DA能神经元大量变性坏死,小鼠表现出的前肢抬举伴震颤、竖毛及短暂性活动减少等症状,成功制备了PD的小鼠模型。在ISA 100mg/kg、200mg/kg预处理组,免疫组化结果显示SN内BAX蛋白表达水平降低,提示存活的DA能神经元数目增多,表现出对MPTP损伤的小鼠PD模型的保护作用。

因MPTP须首先经MAO-B催化代谢为MPP+,而后产生过氧化物导致黑质DA能神经元坏死,故对保护MPTP造成的神经元损伤可以通过两种途径:抑制MAO-B,或者减少过氧化物的量,减轻对神经元的氧化损伤[9]。ISA对MPTP导致的多巴胺能神经元损伤有明显的保护作用,其机制尚需进一步深入研究。

[1] Hofele K, Sedelis M, Auburger GW, et al. Evidence for a dissociation between MPTP and tyrosinase activity based on congenic mouse strain susceptibility [J]. Exp Neurol,2001, 168: 116-122.

[2] Kopinion U, Markey SP. MPTP toxicity:impication for research in Parkinson'sdisease [J]. Annu Rev Neurosci, 1985, 11:81-90.

[3] Martin L J. Neuronal cell death in nervous system development,disease,and injury [J]. Int J Mol Med, 2001, 7: 455.

[4] 赵军等. 凋亡相关基因BAX与TH蛋白在帕金森病大鼠黑质和纹状体细胞中的表达 [J]. 实用医学杂志,2008, 24:1690-1692.

[5] 张芳,岳旺. 2, 3-吲哚醌对MPTP损伤的C57小鼠的抗氧化酶活性的作用[J]. 中国药房, 2008, 19 (22): 1696-1697.

[6] Muroyama A, Kobayashi S, Mitsumoto Y. Loss of striatal dopaminergic terminals during the early stage in response to MPTP injection in C57BL/6 mice[J]. Neurosci Res, 2011, 69 (4): 352-355.

[7] Sharifi AM, Hoda FE, Noor AM. Studying the effect of LPS on cytotoxicity and apoptosis in PC12 neuronal cells: role of Bax, Bcl-2, and Caspase-3 protein expression[J]. Toxicol Mech Methods, 2010, 20 (6): 316-20.

[8] Otter l, Conus S, Ravn U, et al. The binding propertises and biological activites of BCL-2 and BAXin cells exposed to apoptotic stimumi [J]. J Biol Chen, 1998, 273; 6110-6120.

[9] Sun L, Xu S, Zhou M, Wang C, et al. Effects of cysteamine on MPTP-induced dopaminergic neurodegeneration in mice [J]. Brain Res, 2010, 1335 (4): 74-82.

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