雏鹅痛风的病因及其防治措施

梁馨一

吉林市农业科学院,吉林吉林市 132000

1 雏鹅痛风病

雏鹅痛风多为慢性发病，根据临床调查统计，鹅痛风主要侵染20 日龄以下雏鹅，感染鹅群发病率高达80%，死亡率高达73.2%，具有明显的传染性，一旦在鹅群中出现便可快速传播。雏鹅痛风病包括内脏型痛风及关节型痛风两种类型。

1.1 内脏型痛风

雏鹅内脏型痛风主要表现为血液中尿酸和尿素水平升高、营养代谢紊乱，因其传染性高故在临床上不易诊断。发病初期，病鹅临床症状不明显。发病末期，病鹅则出现食欲废绝、精神萎靡、日渐消瘦、活动量显著下降等临床症状。此外，病鹅常出现排稀便、肛门污浊，且粪便内含大量尿酸盐沉积物，严重时会造成大量雏鹅死亡。

1.2 关节型痛风

雏鹅关节型痛风病由尿酸盐在关节处沉积所致，主要表现为行动迟缓、关节肿大等。发病初期，病鹅无任何症状，健康状态良好。随着病程进展，大量黏稠的尿酸盐在关节处堆积，病鹅则会出现关节肿胀、变形，导致行动迟缓、跛行等现象，严重者可能出现瘫痪。随着病情发展至晚期，尿酸盐沉积的关节部位界线会逐渐清晰并形成可移动的结节，导致病鹅的日常活动受限，甚至出现尿酸盐结节破裂、尿酸盐结晶暴露，加剧病鹅的疼痛和临床症状。

2 雏鹅痛风的发病原因

2.1 营养性因素

目前肉鹅饲料成分多为骨粉、豆粉、鱼粉、玉米粉、麸皮，其嘌呤与蛋白质含量过高。当雏鹅体内尿酸浓度升高超出机体排泄能力时，大量的尿酸盐就会沉积在关节及脏器中，从而形成痛风。维生素A 能够参与糖蛋白和皮肤细胞合成，对上皮细胞的形态完整和功能健全至关重要。当家禽在日常饲料中摄入维生素A 不足时，肾小管上皮细胞的完整性受到破坏，导致肾小管的吸收、排泄功能受阻，进而导致尿酸盐在体内大量沉积引起痛风。贝壳粉是常用畜禽饲料添加剂，其主要成分是碳酸钙。当禽类饲料中贝壳粉含量过高，贝壳粉中的钙盐超出雏鹅吸收及排泄能力，导致其在体内累积并沉积在关节及脏器中形成钙盐性痛风。

2.2 中毒因素

饲料存放不当导致饲料中毒素产生，毒素大多通过肾脏代谢，长期食用会使肾脏造成损伤，无法排泄尿酸形成痛风。药物的滥用及大剂量长时间的使用，同样会导致肾脏功能受损继而诱发雏鹅痛风。

2.3 传染性因素

鹅星状病毒（GAstV）是主要引起雏鹅脏器尿酸盐沉积、致死性痛风的一种传染性疾病病原，通过水平传播途径粪-口传播和垂直传播。此外，其他病毒及细菌继发感染后导致肾功能损伤也能引起雏鹅痛风，如鸡传染性支气管炎病毒（IBV）、小鹅瘟病毒（GPV）、高致病性禽流感（HPAI）病毒等。

2.4 环境因素

饲养条件简陋，空间密闭狭小、阴冷潮湿、空气不流通、饲养密度过大、供水不足均会导致雏鹅代谢下降从而引发痛风。

3 临床症状

雏鹅痛风主要以关节及脏器沉积大量尿酸盐为主要特征。患病雏鹅可见被毛凌乱，精神委顿，采食量显著降低或不食，多见排水样便，肛门松弛污浊，体重约为正常雏鹅的1/2 ～1/3，患病雏鹅活动量减少、喜卧，死亡率较高。剖检可见脏器及关节间大量白色渣样尿酸盐沉积，消化道与各脏器粘连，脏器肿大，肾脏可见花斑样改变。

4 诊断方法

4.1 实验室诊断

无菌条件下，采集患病雏鹅肝脏、肾脏、心脏等病料，将采集好的组织进行研磨，样本处理后接种于培养基中37 ℃恒温培养，于48 h 进行观察是否有菌落产生。取患病雏鹅关节处、输尿管沉积物进行显微镜下观察是否有尿酸盐结晶，从而判断是否患有雏鹅痛风。

4.2 实时荧光定量多聚核苷酸链式反应（qPCR）

聚合酶链式反应（PCR）是通过控制温度的变化控制DNA 的变性和复性，从而达到特异性扩增基因的目的。qPCR 则是在PCR 反应体系中加入荧光基团，并通过荧光信号的强弱对PCR 反应进程实时检测，以检测目的基因的量表达量。我国学者建立了一种RT-qPCR 检测方法对GAstV 载量进行检测，其阳性检出率为73.08%，而后分别建立了TaqMan和SYBR Green I 两种荧光定量PCR 方法，其阳性检出率分别为69.91%和60.18%。张景辉[1]成功建立检测GAstV 与新型鸭呼肠孤病毒的双重RT-PCR检测方法，此法具有灵敏度更高、特异性强，可用于后续GAstV 的快速检测。

4.3 环介导等温扩增技术（LAMP）

LAMP 是指在等温条件下，短时间内进行核酸扩增，其特点是特异性高、分析速度快、成本低、突变率低、无须升温降温过程、生物危害风险小、方便诊断。我国学者率先以鹅 AstV ORF1b 基因的保守序列设计引物建立了GAstV 的LAMP 检测方法。陈钦玺[2]在2021 年利用RT-LAMP 技术对GAstV 进行特异性检测，结果显示RT-LAMP 对GAstV 的检测技术操作简便，灵敏性高，特异性好，非常适合在实验室进行推广。

4.4 酶联免疫吸附试验（ELISA)

ELISA具有高特异性、稳定性、操作简便等优点，被广泛应用于临床诊断和流行病学调查。山东大学率先使用GAstV 建立其抗体竞争ELISA，其合格率为80%。李清欣等[3]建立了血清学GAstV 抗体的间接ELISA 法，为后续对GAstV 的诊断提供了新思路。

4.5 胶体金免疫层析法（GICA)

GICA 是以胶体金作为示踪标志物用以检测特异性抗原或抗体的新型免疫学检测技术，具有特异性强、灵敏度高、简便快速等优势，广泛应用于各种疾病的特异性诊断。山东大学以制备的单克隆抗体作为金标抗体，多克隆抗体作为包被抗体，建立胶体金层析方法检测N-GAstV，其样品阳性检出率与PCR 方法符合率高达92.5%，结果表明，GICA 是一种对GAstV 检测的可靠方法。

5 防治措施

5.1 调整日粮配比

饲料配比对鹅群的养殖起到关键性作用，要合理搭配日粮中蛋白质及微量元素的配比。按鹅的日龄及时调整饲料配比，鹅为草食性禽，故可以适量添加青草，避免因饲料中蛋白含量过高导致雏鹅痛风。同时也要保证鹅舍内饮水充足，避免由于引水量过少产生的雏鹅痛风。对饲料也要进行严格把关，存放妥当，避免由于饲料中毒素较多导致鹅群发病。

5.2 加强饲养管理

在雏鹅养殖过程中，应当保持鹅舍内部环境良好，及时清洁，保持通风良好且温度适宜。同时也要对饲养人员进行定期培训，普及雏鹅高发的疾病。鹅舍内湿度及有害气体含量要每日进行检测，按需对鹅群进行免疫接种，从而降低疾病的发生率。此外，鹅群中一旦发现病鹅、死鹅要及时进行处理。病鹅隔离饲养，对死鹅进行深埋或焚烧等方法进行处理。对病鹅的发病原因进行记录，为日后饲养提供经验。

5.3 药物预防

中药作为新药开发中药来源之一，是治疗雏鹅痛风的重点研究对象。研究发现经过处理的中药发酵制剂的实验组，通过灌服发病率仅为5%，死亡率为0%，可以作为预防雏鹅痛风的重要方法之一。

5.4 治疗方法

5.4.1 促进雏鹅体内尿酸盐排出

向清洁的饮用水中添加0.2% ～0.3% 的NaHCO3，同时搭配青饲料喂养从而促进雏鹅体内尿酸盐的排出。

5.4.2 中药治疗

目前尚未发现有针对雏鹅痛风的特效药及疫苗。中草药作为我国医药宝库对新药的研发起到决定性作用，且主要具有毒性低、副作用小，不会造成药物残留等特性，在畜牧业中已经被广泛应用。研究表明，使用中药组方水煎剂对雏鹅进行饲喂，死亡率明显降低，鹅群恢复健康。最新研究发现中药组方和益生菌均可防治雏鹅痛风病，可以应用于后续雏鹅痛风的治疗。