狐臭柴中精油GC-MS测定及其抑制肺癌细胞增殖的研究

李 爽，向 东，崔令军，周大寨，朱玉昌

狐臭柴中精油GC-MS测定及其抑制肺癌细胞增殖的研究

李 爽1, 2，向 东1, 2，崔令军1，周大寨1*，朱玉昌1, 2*

1. 生物资源保护与利用湖北省重点实验室（湖北民族大学），湖北 恩施 445000 2. 湖北民族大学生物科学与技术学院，湖北 恩施 445000

研究狐臭柴叶片精油的化学成分、含量、抗氧化、抑菌及抗肿瘤的能力，为狐臭柴开发利用提供一定的研究基础。采用气相色谱-质谱（gas chromatography-mass spectrometry，GC-MS）联用仪鉴定狐臭柴叶片精油的化学成分；以对1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）和2,2′-联氮双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二铵盐（ABTS）自由基的清除能力，结合总还原力为指标评价精油的抗氧化活性；以抑菌圈法探究其对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞杆菌、白色念珠菌的抑制作用；采用细胞增殖/毒性检测试剂盒法（Cell Counting Kit-8，CCK-8）测定其对人肺癌A549细胞的抑制作用。狐臭柴叶片精油中共鉴定出72种化合物，约占精油总成分的99.36%，其主要成分为左旋-β-蒎烯（15.27%）、1-辛烯-3-醇（14.46%）、蒎烯（14.29%）、1-石竹烯（6.26%）、α-石竹烯（4.47%）和芳樟醇（3.12%）。抗氧化实验结果表明，狐臭柴叶片精油具有较强的总还原力，且对DPPH及ABTS自由基的半数抑制浓度（half inhibitory concentration，IC50）分别为8.48、3.10 mg/mL。狐臭柴叶片精油对白色念珠菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞杆菌和大肠杆菌有较强的抑菌作用，最低抑菌浓度（minimum inhibitory concentration，MIC）分别为30%、30%、30%、40%。狐臭柴叶片精油作用于人肺癌A549细胞3、4、5 h下的IC50分别为0.11%、0.10%、0.06%。狐臭柴叶片精油中成分丰富，具有较强的抗氧化、抗菌和抗肿瘤活性，在食品、制药和化妆品行业具有潜在的应用前景。

狐臭柴；精油；1-辛烯-3-醇；蒎烯；抗氧化；抑菌；抗肿瘤

狐臭柴Pamp别名豆腐柴、臭黄荆、臭树、水白腊等，属马鞭草科豆腐柴属植物，一般生长于山坡林下或林缘，在我国广泛分布于华东、中南、华南及西南等地，是一种药食兼用植物[1-2]，贵州地区将其根与叶入药，清湿热、解毒，治月经不调，四川地区用其皮煮水治牙痛；湖北、湖南等地用其叶制作凉粉食用，名曰“神仙豆腐”。目前，狐臭柴在我国部分地区已区域化、规范化种植[3]，如颜跃跃等[4]研究不同扦插材料来源、扦插时期、不同植物生长调节物质及其浓度对狐臭柴扦插成活率的影响，不断优化其扦插繁殖技术。另外，狐臭柴叶片中果胶、蛋白质、多酚及黄酮类化合物含量丰富，李祥栋等[5]通过柠檬酸法提取狐臭柴叶片果胶，响应面法得到果胶粗产率、半乳糖醛酸含量和果胶有效提取率分别为36.72%、32.09%和11.78%；陈晔等[6]研究发现狐臭柴叶片果胶可作为热稳定性增稠剂应用于热食型吞障食品中。陶阿丽等[7]通过优化狐臭柴叶片蛋白的闪式提取工艺，其平均提取率达到叶片蛋白含量的63.06%；杨宁线等[8]测定发现狐臭柴叶中总酚及总黄酮质量分数分别为30.05 mg/g和6.54 mg/g，通过自由基清除实验发现狐臭柴叶片提取物具有良好的抗氧化活性；黄思雨[9]研究发现狐臭柴叶片细粉可以改善小鼠溃疡性结肠炎症，具有肠道益生性。狐臭柴叶片是一种集营养、保健和药用一体的野生资源，作为功能食品开发或者医药原材料开发，均有广阔的发展前景。

植物精油是一种潜在的新型药物化合物及食品添加剂的来源[10]。因化学和结构组成的不同，使得其具有多种生理功能，包括抗氧化[11]、抗菌[12-13]、抗炎[14]、抗肿瘤和驱虫[15]等，徐小青等[16]发现狐臭柴精油中大多成分都具有抑菌作用或抑制害虫作用；Riabov等[17]发现塞尔维亚月桂精油对所有受试微生物显示出更大的抑菌活性，而俄罗斯月桂精油对受试细菌和酵母都有效，对其他受试真菌没有任何抑制作用；席祖卫等[18]发现维吉尼亚雪松精油可显著提高巨噬细胞相关炎症因子的表达量，且呈剂量相关性抑制人结肠癌HT-29细胞株的增殖。而狐臭柴叶片功能性成分的研究主要集中在果胶、蛋白质、多酚及黄酮类化合物的提取与抗氧化活性研究，对狐臭柴叶片精油抗氧化、抗菌及抗肿瘤活性的研究鲜有报道。

本实验以狐臭柴叶片为原料，采用水蒸气蒸馏法采集油品，通过气相色谱-质谱（gas chromate- graphy-mass spectrometry，GC-MS）联用仪分析鉴定其化学成分，同时对其精油的抗氧化、抑菌和抗肿瘤能力进行了研究，以期为狐臭柴资源的开发利用提供一定的研究基础。

1 仪器与材料

1.1 仪器

HP7890A/5975C型GC-MS联用仪，Cary300型紫外分光光度计（Agilent Technologies公司）；BSA6202S-CW型精密分析天平（赛多利斯科学仪器有限公司，万分之一）；酶标仪（上海光谱仪器有限公司）；SJ-CJ-2FDQ型超净台（苏洁净化）；SPX-1505H-II型生化培养箱（上海新苗医疗器械制造有限公司）；JC80D型立式压力蒸汽灭菌锅（德强净化科技有限公司）；BB15型CO2细胞培养箱（赛默飞世尔科技有限公司）；热泵干燥机（威而信实业有限公司）。

1.2 材料

狐臭柴鲜叶于2021年9月采摘于湖北省利川市湖北雄展农业开发有限公司的种植基地，经湖北民族大学林学园艺学院易咏梅教授鉴定为狐臭柴Pamp。鲜叶洗净后于57 ℃烘干揉碎，于4 ℃遮光密封保存。

平板计数琼脂培养基、马铃薯琼脂培养基、胰酪大豆胨液体培养基（杭州百思生物技术有限公司）；大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞杆菌、白色念珠菌）广东环凯微生物科技有限公司）；人肺癌A549细胞（中国医学科学院细胞研究所）；细胞增殖/毒性检测试剂盒（Cell Counting Kit-8，CCK-8）、RPMI 1640培养基、胎牛血清、胰蛋白酶EDTA消化液（生工生物股份有限公司）；抗坏血酸（vitamin C，Vc）、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）、2,2′-联氮双（3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸）二铵盐[2,2′-azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)，ABTS]、二甲基亚砜（DMSO，国药集团化学试剂有限公司）。

2 方法

2.1 精油提取

将1.0 kg的狐臭柴干叶按照1∶15的料液比装入水蒸馏及冷凝回收装置中，加热沸腾后开始计时，5 h后停止加热。待提取器静置分层，收集上层油状物质，下层水层用10 mL的乙醚萃取3次，合并3次滤液，室温下挥发多余乙醚，得精油得率为0.29%。取适量精油用无水乙醚溶解，并加入适量无水硫酸钠干燥，待GC-MS检测；剩余精油保存在棕色玻璃瓶中，置于4 ℃冰箱中保存。

2.2 精油GC-MS测定

2.2.1 色谱条件 DB-5MS石英毛细管色谱柱（30 m×320 μm×0.25 μm）；载气为高纯氦气，载气体积流量1.0 mL/min；分流比60∶1，进样量1.0 μL；进样口温度250 ℃；程序升温：初始温度60 ℃，保持3 min；8 ℃/min升温至100 ℃；再以2 ℃/min升温至150 ℃；10 ℃/min升温至180 ℃，保持2 min；4 ℃/min升温至190 ℃；8 ℃/min升温至280 ℃，保持5 min。

2.2.2 质谱条件 溶剂延迟时间为2 min；电离方式为EI，电离能量70 eV，离子源温度为230 ℃，四极杆温度为150 ℃；质量扫描范围为/35～550；采用NIST2014标准谱库进行检索。

2.3 精油抗氧化活性的测定

2.3.1 总还原能力的测定 参考卢彩会等[19]的方法，用无水乙醇稀释精油得到质量浓度分别为1、2、3、4、5 mg/mL的精油-乙醇溶液。取0.4 mL样品液和4.0 mL磷钼试剂（0.6 mol/L硫酸、28 mmol/L磷酸钠、4 mmol/L钼酸铵）于干净试管，摇匀后在95 ℃恒温加热90 min，冷却至室温后，于紫外分光光度计695 nm波长处测定吸光度（）。用0.4 mL无水乙醇代替样品液作空白，Vc作为阳性对照，平行操作重复3次。

2.3.2 清除DPPH自由基能力的测定 参考刘梦洁等[20]的方法，并据实验稍加修改。取19.716 mg DPPH于500 mL量瓶中，加无水乙醇定容，得到0.1 mmol/L DPPH乙醇溶液。1.0 mL不同质量浓度（1、2、3、4、5 mg/mL）的精油-乙醇溶液与2.0 mL DPPH溶液混合后，避光反应30 min，517 nm下测定吸光值（1）；2.0 mL无水乙醇代替DPPH溶液测得吸光值（2）；1.0 mL乙醇代替样品液测得吸光值（0）。Vc作为阳性对照，操作同上。平行操作重复3次。DPPH自由基清除率按公式（1）计算。

DPPH自由基清除率＝1－(1－2)/0（1）

2.3.3 清除ABTS自由基能力的测定 参考刘梦洁等[20]的方法，并据实验稍加修改。取7 mmol/L ABTS溶液与2.45 mmol/L过硫酸钾溶液各5.0 mL混合，在室温避光条件下静置过夜，将混合液用磷酸缓冲液（pH值为7.4）稀释至波长在734 nm处吸光度值为（0.70±0.02），即为ABTS测定液。取0.2 mL不同质量浓度（1、2、3、4、5 mg/mL）的精油-乙醇溶液与2.0 mL上述ABTS测定液混合后暗处反应30 min，734 nm处测定吸光值（1）；2.0 mL无水乙醇代替ABTS溶液测得吸光值（2）；1.0 mL乙醇代替样品液测得吸光值（0）。Vc作为阳性对照，操作同上。平行操作重复3次。ABTS自由基清除率按公式（2）计算。

ABTS自由基清除率＝1－(1－2)/0（2）

2.4 精油抑菌活性的测定

2.4.1 菌种活化及菌悬液制备 参考《中国药典》2020年版[21]，将大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞杆菌、白色念珠菌分别接种到胰酪大豆胨液体培养基中进行活化，于37 ℃恒温培养箱中振荡培养24 h，得到一代菌悬液。在无菌操作台内吸取100 μL已活化好的菌种接种到上述培养基中，操作同上，得到二代菌悬液，供实验使用。

2.4.2 抑菌圈法测定抑菌活性 参考张玉龙等[22]的方法，并据实验稍加修改。在无菌操作台中将熔化并灭菌的培养基倒入已灭菌的培养皿中，冷却凝固后，加入菌悬液100 μL，用滚珠涂布均匀。将直径为9 mm的无菌滤纸片放于培养基上，将狐臭柴精油用DMSO分别配成含精油添加量10%、20%、30%、40%和50%的溶液，用移液枪吸取40 μL溶液，缓慢滴加在滤纸片上，令其完全浸润且不外溢，以空白平板为阴性对照，以DMSO为阳性对照，37 ℃正置培养24 h后测量抑菌圈直径，首次出现抑菌圈所对应的狐臭柴叶片精油浓度即为最低抑菌浓度（minimum inhibitory concentration，MIC），平行重复3次，取平均值。

2.5 精油对A549细胞的抑制作用

2.5.1 细胞培养 复苏A549细胞，在超净工作台上将其接种于25 mL培养瓶中，加入含体积分数为10%的胎牛血清及青霉素100 U/mL、链霉素100 U/mL的RPMI 1640培养液5 mL，用枪头小心反复吹打，使细胞分散均匀。将培养瓶置于培养箱（温度为37 ℃、饱和湿度为95%、CO2体积分数为5%）中培养，每2～3 d换液传代培养。

2.5.2 CCK-8法测定狐臭柴叶片精油对A549肺癌细胞的抑制率 参考刘岸等[23]的方法，并据实验稍加修改。收集对数期细胞，吸弃培养液，用PBS液清洗悬浮死细胞并弃去，加0.25%的胰酶消化2 min，加RPMI 1640培养液1.0 mL中止消化，小心反复吹打，制成单层细胞悬液，调整细胞浓度至1×104个/mL。将细胞接种于96孔培养板中，每孔的体积为100 μL，并设置仅加入RPMI 1640培养液的孔作为阴性对照组（C0），置于CO2培养箱中培养24 h后，吸弃孔中液体，分别加入不同浓度的用RPMI 1640培养液混匀的精油混悬液（精油的体积比浓度分别为0.05%、0.10%、0.20%、0.30%和0.40%），作为实验组（C1）。在加入细胞悬液的孔中加RPMI 1640培养液100 μL，作为阳性对照组（C2）。在所有组别的周围孔中加入RPMI 1640培养液100 μL，减少蒸发对实验的影响。每个浓度分别设6个平行孔，置于CO2培养箱中分别培养3、4、5 h。加入10%体积浓度的CCK-8溶液，震荡2 min，继续培养1 h，在450 nm波长下，利用酶标仪测定96孔培养板上各孔的吸光度值（），记录实验结果。抑制率按公式（3）计算。

抑制率＝[(C2－C0)－(C1－C0)]/(C2－C0) （3）

2.6 数据处理

运用SPSS23.0软件对实验结果进行统计分析（One-way ANOVA），利用邓肯式多重比较对差异显著性进行比较分析，＜0.05表示差异显著；运用Origin2021b进行作图分析。

3 结果与分析

3.1 精油GC-MS成分分析

使用GC-MS技术对狐臭柴叶片精油成分进行分析，色谱峰信息依据NIST14标准谱库检索和文献报道的的保留指数进行比对定性，保留匹配度高于80%的化学成分，采用峰面积归一化法计算各组分的相对含量，定性结果及相对含量见表1，总离子流图见图1。

表1 狐臭柴叶片精油的化学成分与相对含量

续表1

序号tR/min化合物分子式相对质量分数/% 24 9.653-(4-甲基-3-戊烯-1-基)-呋喃C10H14O0.08 25 9.79芳樟醇C10H18O3.12 2610.451-松香酚C10H16O0.23 2710.85匹诺香芹酮C10H14O0.25 2811.41水杨酸甲酯C8H8O30.24 2911.48桃金娘烯醛C10H14O0.16 3011.561-甲基-3-(1-甲基乙烯基)环己烯C10H170.91 3111.801,1,4,5-四甲基茚满C13H180.09 3211.99β-环柠檬醛C10H16O0.36 3312.19橙花醇C10H18O0.16 3412.82香叶醇C10H18O0.46 3513.59乙酸冰片酯C12H20O20.16 3614.274-乙烯基-2-甲氧基苯酚C9H10O20.53 3715.40α-荜澄茄油烯C15H240.19 3815.53丁香酚C10H12O20.26 3916.34α-可巴烯C15H243.20 4016.44大马士酮C13H18O0.62 4116.73荜澄茄油烯C15H240.75 4216.82β-榄香烯C15H240.52 4317.871-石竹烯C15H246.26 4417.99α-紫罗兰酮C13H20O0.36 4518.47[1S-(1α,4α,7α)]-1,2,3,4,5,6,7,8-八氢化-1,4-二甲基-7-(1-甲基乙烯基)奥C15H240.98 4619.18α-石竹烯C15H244.47 4719.35(+)-香橙烯C15H241.77 4820.031-异丙基-7-甲基-4-亚甲基-1,2,3,4,4a,5,6,8a-八氢萘C15H241.51 4920.19β-紫罗兰酮C13H20O2.13 5020.76双环锗烯C15H240.87 5121.12(1S,7R,8aS)-1,2,3,5,6,7,8,8a-八氢-1,4-二甲基-7-(1-甲基乙烯基)-天竺葵C15H241.68 5221.87d-卡丁烯C15H241.93 5322.65α-卡拉柯烯C15H200.28 5423.08反式倍半萜C15H26O0.44 5524.17反式-橙花叔醇C15H26O2.02 5624.34芥菜酚C15H24O1.88 5724.43氧化石竹烯C15H24O1.34 5825.63葎草烯C15H24O1.12 5926.541,2,3,4,4a,7-六氢-1,6-二甲基-4-(1-甲基乙基)-萘C15H240.18 6027.52α-蒎烯C15H240.33 6127.87g-古朱烯C15H240.31 6228.88b-红没药醇C15H26O0.35 6331.253,7,11-三甲基-2,6,10-十二烷三烯-1-醇C15H26O0.21 6438.97金合欢基丙酮C18H30O0.16 6539.46棕榈酸甲酯C17H34O20.21 6639.80邻苯二甲酸二丁酯C16H22O40.15 6740.73棕榈酸C16H32O21.66 6843.418,11-十八碳二烯酸甲酯C19H34O20.14 6943.54亚麻酸甲酯C19H32O20.48 7043.87叶绿醇C20H40O0.62 7144.62亚麻酸C18H30O20.72 7249.17三苯基氧化膦C18H15OP0.13

由表1和图1可知，从狐臭柴叶片精油中共鉴定出72个成分，占精油总量的99.36%。精油含有烯烃、醇、酮、醛、酸、酯类等，以萜类化合物为主，精油中含量较高成分有左旋-β-蒎烯（15.27%）、蒎烯（14.29%）、1-辛烯-3-醇（13.83%）、石竹烯（10.73%）、芳樟醇（3.12%）和亚麻酸（0.72%）等。

3.2 精油的抗氧化作用

由图2-A可知，狐臭柴叶片精油具有显著的DPPH自由基清除能力。在1～5 mg/mL内，精油对DPPH自由基清除率从10.98%上升至31.45%，表现出明显的剂量效应。精油质量浓度（）与清除率（）间的回归方程为＝5.105 1＋6.693 8，2＝0.990 8，精油对DPPH自由基清除作用的半数抑制浓度（half inhibitory concentration，IC50）为8.48 mg/mL。

不同小写字母表示具有显著性差异（P＜0.05），下同 A、B、C-总还原能力

由图2-B可知，精油具有显著的ABTS自由基清除能力。在1～5 mg/mL，精油对ABTS自由基清除率从27.90%上升至69.31%，表现出明显的剂量效应。精油质量浓度（）与清除率（）间的回归方程为＝10.305＋18.104，2＝0.995 1，精油对ABTS自由基清除作用的IC50值为3.10 mg/mL。

由图2-C可知，狐臭柴叶片精油具有较好的总还原能力，在1～5 mg/mL内，随着精油浓度的增加，其还原能力不断增强，呈明显的剂量相关性，且差异显著。当精油质量浓度为5 mg/mL时，还原能力值为0.43，但还原能力低于同质量浓度的Vc（其为0.59）。

3.3 精油的抑菌作用

表2及图3为狐臭柴叶片精油在不同体积百分比浓度下作用于4种供试菌种24 h后出现的抑菌圈的直径大小。在同一浓度下，精油对白色念珠菌的抑制性最强，对大肠杆菌的抑制性较弱，不同菌的抑菌圈直径呈现出显著性差异。对于同一种菌，随着精油浓度的增大，抑菌圈直径增大，表明抑菌作用增强。白色念珠菌、金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞杆菌及大肠杆菌的MIC分别为30%、30%、30%和40%。

3.4 精油对A549细胞的抑制作用

通过CCK-8法测定在不同作用浓度和不同作用时间下的狐臭柴叶片精油对人肺癌A549细胞增殖的影响，结果如表3与图4所示。由表3及图4可知，相同作用时间下，随着狐臭柴叶片精油浓度的加大，对癌细胞的抑制率逐渐上升，具有显著的药物浓度相关性；相同作用浓度下，不同作用时间的癌细胞抑制率为5 h＞4 h＞3 h，说明其抑制效果具有时间相关性；当狐臭柴叶片精油浓度达到0.3% 将药物浓度的对数与抑制率进行曲线拟合，通过回归方程计算，不同浓度狐臭柴叶片精油分别作用于人肺癌A549细胞3、4、5 h的IC50值分别为0.11%、0.10%和0.06%；随着狐臭柴叶片精油作用于A549细胞的时间延长，IC50也随之降低。

表2 狐臭柴叶片精油对细菌和真菌的抑菌活性及其MIC值()

—表示无抑菌圈；小写字母表示同一浓度下不同菌种的抑菌圈直径具有显著性差异（＜0.05）

—means no bacteriostatic effect; Lowercase letters indicate that the diameter of the inhibition zone of different strains at the same concentration is significantly different (< 0.05)

图3 狐臭柴叶片精油对不同菌种的抑菌效果

表3 狐臭柴叶片精油对肺癌A549细胞的抑制率及其IC50值()

4 讨论

本实验采用GC-MS分析了狐臭柴叶片精油的化学成分，主要成分有蒎烯、1-辛烯-3-醇、石竹烯、芳樟醇等，这与吴永祥等[24]研究的安徽省黄山市豆腐柴叶片精油主要成分差异较大，而与范超敏等[25]研究的四川大竹县臭黄荆叶精油主要成分类似，是由药材产地和品种之间的差异大小导致的。已有的文献显示这些化学成分具有良好的药理活性。其中，蒎烯是天然单萜化合物，研究发现它具有抗菌、抗病毒、抗肿瘤、抗炎、抗过敏及改善溃疡等作用，食品行业常通过蒎烯来合成紫苏糖甜味剂[26]，医药方面可应用于小儿感冒颗粒[27]、桉柠蒎肠溶软胶囊[28]等。β-石竹烯，一种双环倍半萜型的天然产物，存在于许多具有抗炎、抑菌、抑制哮喘功能的植物提取物中[29]。芳樟醇属于链状萜烯醇类，具有抗菌、抗龋齿作用，可以用于合成香料、除臭杀虫等[30]。Rehman等[31]的综述表明，植物精油具有良好的生物功能，除了单独组分的作用，更多的是不同组分协同作用的结果。

图4 狐臭柴叶片精油对A549细胞的抑制作用

采用不同的体外抗氧化试验得到的植物精油抗氧化活性的机制不尽相同[32]。研究发现，植物精油的抗氧化活性归因于精油中酚类和萜类化合物的含量[33]，萜类化合物的抗氧化活性是通过活性氧的清除机制和内源抗氧化系统的修饰能力表现出来的[34]。通过GC-MS分析，狐臭柴叶片精油中蒎烯、石竹烯等萜类化合物的相对质量分数约占50.05%，另外还含有酚、醇及酮类化合物，所以狐臭柴叶片精油在自由基清除率还原能力方面均具有显著作用。其中ABTS自由基的清除率显著高于DPPH自由基清除率，可能是精油在溶剂水与醇的溶解性不同引起的[35]。

由于植物精油具有一定的疏水性，植物精油抗菌活性机制的研究主要集中在对细胞膜结构和功能的破坏方面[36]。狐臭柴叶片精油对白色念珠菌的抑制活性显著高于其他菌，这可能是由于其萜类化合物能改变细胞表面的特性，抑制了孢子萌发，改变了病原菌的正常菌丝形态进而破坏其正常的生命活性[37-38]。而精油对于革兰氏阳性菌及阴性菌的生长繁殖影响不同，原因是其中的活性抗菌化合物通过疏水键和氢键与膜蛋白结合，从而改变膜的通透性[39]。

现代药理研究证明，萜类化合物对乳腺癌、胃癌、肺癌、肝癌等有明显的预防与治疗作用[40-41]；亚麻酸等不饱和脂肪酸能改变肿瘤细胞膜生物特性，影响膜表面活性、受体表达，干扰或阻滞肿瘤细胞内DNA代谢、信号传导，从而诱导肿瘤细胞凋亡[42]，而狐臭柴叶片精油中含有丰富的萜类化合物及少量的亚麻酸等不饱和脂肪酸，所以可能是萜类化合物及少量不饱和脂肪酸作用于肺癌A549细胞，从而抑制癌细胞增殖，体现出狐臭柴叶片精油良好的抗肿瘤活性。

狐臭柴叶片精油中含有丰富的化学成分，并表现出良好的体外抗氧化、抗菌和抗肿瘤能力。此外，狐臭柴叶片精油中的萜类、醇类、酮类等化合物可能具有调节免疫功能，减少脂肪的累积，进而保护心血管系统[43]，以及减少细菌性胃肠炎的感染和减轻缺血性脑卒中时的神经炎症和细胞凋亡[44-45]，鉴于这些有效成分广泛的生物活性及药理作用，可应用于食品保鲜、药品研制及美容保健的开发中；但这些有效成分的具体作用机制仍需进一步探明，这也指明了狐臭柴叶片精油在未来的研究方向。

利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突

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Determination of essential oil inby GC-MS and its inhibitory effect on proliferation of lung cancer cells

LI Shuang1, 2, XIANG Dong1, 2, CUI Ling-jun1, ZHOU Da-zhai1, ZHU Yu-chang1, 2

1. Hubei Key Laboratory of Biologic Resources Protection and Utilization (Hubei Minzu University), Enshi 445000, China 2. College of Biological Sciences and Technology, Hubei Minzu University, Enshi 445000, China

To study the chemical composition, content, antioxidant, antibacterial and anti-tumor abilities of the essential oils from the leaves of, so as to provide a certain research basis for the application and development of..The chemical constituents of the essential oil ofleaves were identified by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). The antioxidant activity of essential oils was evaluated by DPPH and ABTS free radical scavenging capacity and total reducing capacity of essential oils. The inhibition zone method was used to explore the inhibitory effects of the essential oil on,,and. CCK-8 test was used to determine the inhibitory effect of essential oils on human lung cancer A549 cells.A total of 72 compounds were identified in the essential oil ofleaves, accounting for about 99.36% of the total composition. The main components of essential oils are-β-pinene (15.27%), 1-octen-3-ol (14.46%), pinene (14.29%), 1-caryophyllene (6.26%), α-caryophyllene (4.47%) and linalool (3.12%). The results of antioxidant test showed that essential oils had strong total reducing power, and the IC50of DPPH and ABTS free radicals were 8.48 mg/mL and 3.10 mg/mL, respectively. The essential oil ofleaves had antibacterial effect on,,and, and the minimum inhibitory concentration (MIC) were 30%, 30%, 30% and 40%, respectively. The IC50of the essential oil ofleaves had acted on human lung cancer A549 cells at 3 h, 4 h and 5 h were 0.11%, 0.10% and 0.06%, respectively.The essential oil ofleaves were rich in components and had strong antioxidant, antibacterial and antitumor activities, which will have potential application prospects in the food, pharmaceutical and cosmetic industries.

Pamp; essential oil; 1-octen-3-ol; pinene; antioxidant; antibacterial; antitumor

R286.2

A

0253 - 2670(2023)06 - 1870 - 09

10.7501/j.issn.0253-2670.2023.06.019

2022-08-09

湖北省教育厅项目（Q20131908）；恩施州科技计划项目（XYJ2020000022）；生物资源保护与利用湖北省重点实验室开放基金（PT012015）

李 爽（1996—），女，硕士研究生，研究方向为特色生物资源食品加工与开发。E-mail: 1820160341@qq.com

周大寨（1976—），男，高级实验师，研究方向为天然产物的研究与开发。E-mail: sws0048@163.com

朱玉昌（1980—），女，副教授，研究方向为农产品质量与食物安全。E-mail: zycandly@163.com

[责任编辑 时圣明]