苦豆子总碱对大鼠慢性酒精性肝损伤的保护作用研究

2022-12-21 08:03董佳妮谢华祎康松松邬国栋
中国民族民间医药 2022年21期
关键词:酒精性肝细胞酒精

张 东 董佳妮 谢华祎 康松松 邬国栋*

1.内蒙古科技大学包头医学院基础医学与法医学院,内蒙古 包头 014040;2.内蒙古科技大学包头医学院药学院,内蒙古 包头 014040

1965年,Lieber和他的同事的开创性工作证实了酒精的肝毒性作用[1]。在大多数工业化国家中,酒精是继丙型肝炎之后最常见的慢性肝病病因[2]。酒精性肝病包括一系列疾病,如单纯性脂肪变性、脂肪性肝炎、肝硬化和晚期肝细胞癌等[3]。酒精性肝病的预防及治疗是迫切需要解决的问题。

苦豆子(SophoraalopecuroidesL.)系豆科(Leguminosae)槐属植物,药用部位可以是全草,也可以是根及种子,是一种常用的中蒙药材,主要成分有生物碱、黄酮和挥发油等,其中生物碱是其重要活性成分,本文称为苦豆子总碱(total alkaloids of sophora alopecuroides,TASA)[4]。在我国,主要分布于内蒙古、宁夏、新疆、甘肃、青海、西藏等地区,分布范围较广[5]。TASA具有抗炎、抗癌、抗菌和免疫调节等作用[6-8]。黄华等[9]研究发现苦豆子总碱对化学性肝损伤模型(如四氯化碳和D半乳糖氨所引起的)和免疫性肝损伤模型(卡介苗加脂多糖引起)具有保护作用,可使ALT和AST水平下降。本实验拟应用56%乙醇制备大鼠慢性酒精性肝损伤模型,从不同角度探讨TASA对大鼠慢性酒精性肝损伤是否具有保护作用及其可能的作用机制。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 动物 Wistar雄性大鼠,体重200~220 g,从斯贝福(北京)生物技术有限公司购买,合格证号:SCXK(京)2016-0002。

1.1.2 药品与试剂 苦豆子总碱(西安立森生物科技有限公司,含量为80%,批号20191107);联苯双酯(万邦德制药集团股份有限公司,生产批号:A02J181109);红星二锅头(56°)(北京红星股份有限公司,生产批号:0955101120180219)。谷丙转氨酶(ALT,生产批号:20191106)试剂盒、谷草转氨酶(AST,生产批号:20191105)试剂盒、丙二醛(MDA,生产批号:20191108)试剂盒、超氧化物酶(SOD,生产批号:20191013)均购自南京建成生物工程研究所。白细胞介素6测定试剂盒(IL-6,生产批号:20191012),肿瘤坏死因子α测定试剂盒(TNF-α,生产批号:20191012),购自中生北控生物科技股份有限公司。转化生长因子β1试剂盒(TGF-β1,生产批号:E-30634),购自北京奥维亚生物技术有限公司。γ干扰素试剂盒(IFN-γ,批号:20190803),购自北京华英生物技术研究所。

1.1.3 主要仪器 AU640全自动生化分析仪( 日本奥林巴斯公司),MultiSkan3酶标仪(赛默飞世尔科技有限责任公司),Sartorius BSA224S-CW电子天平(北京赛多利斯科学仪器有限公司),TDZ5—WS多管架自动平衡离心机(长沙湘仪离心机仪器有限公司)。

1.2 给药方案与模型制备 48只大鼠随机分为6组,分别是空白组,模型组,联苯双酯组2.4 mg·kg-1,苦豆子总碱14 mg·kg-1、28 mg·kg-1和56 mg·kg-1组,每组8只。空白组和模型组给予蒸馏水,其它组给予相应药物,每天1次,连续8周。给药1 h后,除空白组给蒸馏水外,其余各组均用 56° 的二锅头白酒灌胃,第1周8 mL·kg-1, 以后每周增加 1 mL,直至15 mL·kg-1,连续灌胃8周。

1.3 观察指标

1.3.1 血清中相关生化指标测定 末次给酒和药物后禁食不禁水12 h,脱臼处死,腹主动脉取血,分离血清, 根据试剂盒说明书测定ALT、AST、MDA和SOD。

1.3.2 肝脏指数的测定 摘取肝脏,用电子天平秤肝湿重,计算肝脏指数[肝脏指数(%)=肝脏质量(g)/体重(g)×100%]。

1.3.3 IL-6、TNF-α、IFN-γ和TGF-β1含量检测 采用 ELISA法检测大鼠血清 TNF-α,IL-6、IFN-γ和TGF-β1含量。严格按试剂盒说明书步骤操作。

1.3.4 组织病理学检查 每只鼠都摘取肝右叶,用4% 的甲醛固定,制备石蜡切片,HE 染色,进行病理组织学检查。

2 结果

2.1 TASA对大鼠肝脏指数的影响 与空白组相比,模型组大鼠肝脏指数显著增加(P<0.05);与模型组相比,TASA各组大鼠肝脏指数显著减小(P<0.05或P<0.01)。结果见表1。

表1 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠肝脏指数的影响

2.2 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠肝功指标的影响 与空白组相比,模型组大鼠ALT和AST显著升高(P<0.01);与模型组相比,TASA大、中剂量组ALT和AST显著降低(P<0.05或P<0.01)。见表2。

表2 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠肝功指标的影响

2.3 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠血清MDA含量和SOD活性的影响 与空白组相比,模型组大鼠MDA含量显著升高(P<0.01),SOD活性显著降低(P<0.01);与模型组相比,TASA大、中剂量组MDA含量显著降低(P<0.01),SOD活性显著升高(P<0.01)。见表3。

表3 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠MDA含量和SOD活性的影响

2.4 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠细胞因子的影响 与空白组相比,模型组IL-6、TNF-α、IFN-γ和TGF-β显著升高(P<0.01);与模型组相比,TASA给药组可以显著的降低IL-6、IFN-γ和TGF-β1的含量(P<0.05或P<0.01),TNF-α有降低的趋势。见表4。

表4 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠细胞因子的影响

2.5 TASA对慢性酒精性肝损伤大鼠肝组织病理学形态的影响 正常组大鼠肝组织结构正常,肝细胞排列整齐、有序,无细胞肿胀、脂肪变性、炎症细胞浸润等现象。酒精模型组肝细胞排列疏松,各结构层次模糊不清,炎症细胞浸润,细胞中着色深浅不一。与酒精模型组相比,联苯双酯组,TASA高、中、低剂量组肝组织病理学形态有较大改善,肝细胞排列较为整齐,炎症细胞浸润等现象减轻。

3 讨论

临床上判断肝功能是否受损及受损的程度通常以ALT及AST水平的变化作为主要指标,而酒精性肝损伤患者的肝功能水平也会发生变化,ALT及AST水平会升高[10]。本研究结果显示,模型组大鼠ALT和AST显著升高,肝脏指数显著增加,给予TASA组大鼠ALT、AST和肝脏指数显著降低,说明TASA对慢性酒精性肝损伤具有保护作用。从病理学组织切片能看出模型组肝细胞排列疏松,各结构层次模糊不清,炎症细胞浸润,细胞中着色深浅不一。与模型组相比,TASA各剂量组肝组织病理学形态有较大改善,肝细胞排列较为整齐,炎症细胞浸润等现象减轻。这也说明TASA对慢性酒精性肝损伤具有保护作用。

关于酒精性肝损伤的发病机理比较多,其中氧化应激是导致酒精性肝损伤非常重要的发病机制之一,体内的氧化应激反应可以通过酒精来激活,从而使肝组织遭到破坏[11]。氧化应激导致的肝损伤最终会产生大量的脂质过氧化产物——MDA,所以可以用MDA反映组织过氧化损伤的程度,同时MDA还可以造成细胞代谢和功能障碍;酒精和它的代谢产物乙醛都可以引起肝细胞膜脂质过氧化,进而产生MDA[12]。SOD是体内的抗氧化酶,可以清除细胞内自由基,降低 MDA 的产生,保护细胞免受氧化损伤,其活力可间接反映机体清除氧自由基的能力,SOD水平的高低是衡量机体抗氧化能力大小非常重要的一个指标[13]。由本实验研究结果可知,TASA可以显著降低慢性酒精性性肝损伤大鼠血清中MDA含量,显著升高SOD活性,说明TASA可以降低慢性酒精性肝损伤的氧化应激作用,降低酒精对肝细胞的损伤,这可能是TASA发挥肝脏保护作用的原因之一。

TNF-α具有双重作用,在正常生理情况下,机体释放适量 TNF-α参与自动防御,改善机体平衡状态,起积极保护作用;但是在诸如肝功能异常、炎症反应和败血症等条件下,机体释放大量 TNF-α,对机体产生细胞毒性作用[14]。TNF-α作为一种促进炎症进展的因子,通常由肝脏活化的单核巨噬细胞产生,也是多种促炎因子及炎症介质异常释放的关键因子,其主要清除部位位于肝脏[15]。有研究[16]表明,肝脏疾病患者血清TNF-α水平与肝损伤的生化指标具有正相关关系。本实验结果也显示肝损伤模型组TNF-α水平显著升高。TNF-α除了可直接作用肝细胞而产生毒性,造成肝损伤、坏死,还可诱生IFN-γ及IL-6等炎症因子[17]。这些因子又增强了TNF-α的作用,高水平的IL-6与TNF-α协同作用, 加重肝损伤[18]。所以血清中TNF-α和IL-6含量变化可敏感地反映出肝组织损伤的程度[19]。IFN-γ被认为是一把双刃剑,因为它对病毒防御至关重要,但也可能导致肝脏损伤[20]。IFN-γ作为一种炎性细胞因子,可引起肝细胞的细胞周期阻滞和细胞凋亡[21]。本研究结果显示,模型组大鼠 TNF-α、IL-6和 IFN-γ较正常组大鼠显著升高,表明TNF-α 、IL-6和 IFN-γ参与了慢性酒精性肝损伤过程,通过TASA干预后,IL-6和 IFN-γ均显著降低,TNF-α水平有降低趋势,提示TASA能减轻慢性酒精型性肝损伤的炎症反应,这也可能是TASA发挥对肝损伤保护作用机制之一。

TGFβ1 在复杂的纤维化过程扮演着非常重要的角色[22]。TGFβ1是一种多效性的细胞因子参与免疫反应和肝纤维化的发展,导致肝星状细胞的激活和增生,进一步激活肝星状细胞分泌TGFβ1,增加胶原蛋白产生和促进肝纤维化进展,进而加重肝损伤[23]。由本实验结果可知,模型组大鼠TGFβ1显著升高,经过TASA干预后,TGFβ1显著下降,提示TASA可能通过降低TGFβ1水平,促进肝细胞再生,阻止纤维化进程,达到修复肝损伤的目的。

综上所述,TASA对酒精引起的慢性肝损伤具有很好的保护作用,这种保护作用的发挥可能与TASA抗氧化应激和抗炎作用以及促进肝细胞再生作用、阻止纤维化进程有关。

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