耳聋左慈丸在大鼠体内的药代动力学

顾云双，王 瑞，苏 娜，彭 英，阿基业，王广基，郑亦文，孙建国*

（1江苏省药代动力学重点实验室，中国医学科学院“中药复杂组分PK-PD结合研究”创新单元，中国药科大学，南京 210009；2新西兰奥塔哥大学生物医学学院药理毒理学系，达尼丁 9054）

耳鸣是一种常见的耳部听觉异常症状，其病因较多，机制复杂，目前临床主要采用糖皮质激素类药物［1］、扩血管药物［2］、中药［3］、局部麻醉药［4］、针刺［5］、声治疗［6-7］和认知行为疗法［8］等进行干预治疗。耳聋左慈丸是治疗肾虚型耳鸣耳聋的经典名方，由熟地黄、山茱萸（制）、山药、茯苓、牡丹皮、竹叶柴胡、泽泻、磁石（煅）八味药材制成［9］。有研究表明，耳聋左慈丸对老年性耳鸣［10］、神经性耳鸣［11］、药物所致耳鸣［12］等多种耳鸣均具有治疗作用。但目前还没有关于耳聋左慈丸的定量研究。毛蕊花糖苷和松果菊苷是耳聋左慈丸的君药熟地黄中的主要成分，氧化芍药苷和苯甲酰芍药苷来源于牡丹皮，为研究其在体内的代谢行为，建立了耳聋左慈丸中毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷的HPLC-MS/MS共检测定量分析方法并进行方法学验证。并以此方法评价大鼠血浆中4种物质的体内药代动力学行为，为后续耳聋左慈丸的体内研究提供参考。

1 材 料

1.1 药品和试剂

毛蕊花糖苷对照品（批号：RH260383，分析对照品）购自罗恩化学试剂；苯甲酰芍药苷对照品（批号：DST210410-053，HPLC≥98%）、氧化芍药苷对照品（批号：DST201113-074，HPLC≥98%）、松果菊苷对照品（批号：DSTDS003801，HPLC≥98%）购自成都德思特生物技术有限公司；耳聋左慈丸原料药粉末（批号：20210309）受赠于杭州胡庆余堂药业有限公司；甲酸（色谱纯）购自赛默飞世尔科技（中国）有限公司；甲醇（梯度级）购自Merck 公司；水为超纯水。

1.2 仪 器

高效液相色谱-三重四极杆串联质谱仪（含日本岛津高效液相色谱系统LC-30AD；美国AB Sciex质谱系统API5000、电喷雾离子源及Analyst 1.5.1工作站）；Thermo Sorvall Biofuge Stratos 台式低温高速离心机（美国赛默飞世尔公司）；Eppendorf Mix-Mate 混匀小精灵、Eppendorf Minispin AG22331 台式离心机（德国艾本德公司）；Vortex Mixer XW-80A涡旋混合器（海门市其林贝尔仪器制造有限公司）；Milli-Q Gradient A1 超纯水机（美国密理博公司）。

1.3 动 物

健康SD 大鼠18 只，雌雄兼用，日龄42~62 d，购自浙江维通利华实验动物技术有限公司，生产许可证号：SCXK（浙）2019-0001。

2 方 法

2.1 标准溶液的配制

分别精密称取毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、苯甲酰芍药苷、松果菊苷的标准品于1.5 mL 离心管中，用甲醇溶解得到质量浓度为10 mg/mL的4 份母液，将4 份母液分别用甲醇稀释到1 mg/mL。分别从质量浓度为1 mg/mL的母液中取苯甲酰芍药苷100 μL、松果菊苷100 μL、毛蕊花糖苷50 μL、氧化芍药苷50 μL于同一离心管中，用甲醇补足至体积为1 mL，得到苯甲酰芍药苷和松果菊苷质量浓度为100 μg/mL、毛蕊花糖苷、氧化芍药苷质量浓度为50 μg/mL的混合储备液，取此混合储备液100 μL，加入甲醇900 μL，混匀后得到苯甲酰芍药苷和松果菊苷质量浓度为10 μg/mL、毛蕊花糖苷、氧化芍药苷质量浓度为5 μg/mL的工作液母液，存于-20 ℃备用。

2.2 色谱条件

色谱柱：Zorbax Eclipse Plus C18（2.1 mm × 100 mm，1.8 μm）；柱温：40 ℃；水相（A）：超纯水（含0.1%甲酸）；有机相（B）：甲醇；流速：0.4 mL/min；分析时间：7 min；梯度洗脱：0~0.5 min 5%B，0.5~1 min 5% ~ 85%B；1 ~ 4.5 min 85%B；4.5 ~ 5 min 85%~5%B；5~7 min 5%B。

2.3 质谱条件

选用电喷雾离子源，源参数如下：喷雾电压（IS）-4 500 V，辅助气1（GS1）55 Arb，辅助气2（GS2）55 Arb，辅助气加热温度（TEM）550 ℃，气帘气（CUR）40 Arb，碰撞气（CAD）6 Pa。

在负离子、MRM 模式下检测，设定Q0 入口电压（EP）为-10 V，Q2出口电压（CXP）为-15 V，用于定量的离子对及相关质谱信息见表1。

Table 1 Related parameters in MS analysis

2.4 血浆样品处理方法

取大鼠血浆50 μL，加入含华法林内标（1 ng/mL）的甲醇溶液150 μL，振荡5 min，在4 ℃条件下于18 000 r/min转速离心5 min，转移上清液130 μL至1.5 mL 离心管中，再次在4 ℃条件下以18 000 r/min转速离心5 min，取上清液100 μL进样分析。

2.5 方法学考证

2.5.1 专属性和选择性 取空白SD 大鼠，按12 mL/kg的剂量（相当于原药6 g/kg剂量）灌胃给予耳聋左慈丸原药粉末的生理盐水悬浊液，采集给药后5 min的眼眶血，置于含肝素的离心管中。在8 000 r/min的转速下离心5 min，收集上清血浆。取血浆50 μL 按“2.4”项处理后进样分析，得专属性色谱图（图1）。

取6份来源不同的SD大鼠空白血浆50 μL，按照“2.4”项处理后进样分析；取同样6 份来源不同的SD 大鼠空白血浆45 μL，分别加入标曲定量下限处的工作液，得到含毛蕊花糖苷、氧化芍药苷质量浓度0.5 ng/mL、苯甲酰芍药苷和松果菊苷质量浓度为1 ng/mL的加药血浆，同样按照“2.4”项处理后进样分析。

2.5.2 定量下限 取若干份45 μL 大鼠空白血浆，加入工作液5 μL，配制毛蕊花糖苷、氧化芍药苷质量浓度为0.5 ng/mL，苯甲酰芍药苷和松果菊苷质量浓度为1 ng/mL的含药大鼠血浆，按“2.4”项下方法处理后进样分析（n=5）。根据当日随行标准曲线回算各样品中物质浓度，并求算RSD 和RE。

2.5.3 标准曲线 取“2.1”项下的工作液母液，用甲醇逐级稀释配制系列工作液。以空白SD 大鼠的血浆作为基质，按如下方法配制标准曲线（n=3）：取空白基质45 μL 若干份，依次分别加入工作液5 μL，涡旋30 s 混匀，可得到毛蕊花糖苷和氧化芍药苷质量浓度为50，20，10，5，2.5，1，0.5 ng/mL，松果菊苷和苯甲酰芍药苷质量浓度为100，40，20，10，5，2，1 ng/mL的系列含药血浆样本，而后按照“2.4”项的方法处理样品，进样分析。以所测生物样品中的待测物质和内标峰面积的比值为因变量（y），待测物质的血浆终浓度为自变量（x），用最小二乘法（权重系数为1/x2）进行回归运算，得到各物质的回归方程。

2.5.4 精密度和准确度 取若干份45 μL 大鼠空白血浆，加入工作液5 μL，配制毛蕊花糖苷、氧化芍药苷质量浓度为0.5，0.8，8，40 ng/mL，松果菊苷、苯甲酰芍药苷质量浓度为1，1.6，16，80 ng/mL的含药血浆，平行5份，按“2.4”项下方法处理后进样分析，连续测定3 个分析批，每个分析批间隔大于12 h，根据每批随行血浆样品标准曲线计算样本中的物质浓度，求算批间、批内准确度和批间、批内精密度。

2.5.5 基质效应和提取回收率 取6份来源不同的空白SD 大鼠血浆，按如下3种方式进行处置：第1种处置方式，取若干份45 μL空白大鼠血浆，依次分别加入工作液5 μL，振荡30 s，配制成毛蕊花糖苷和氧化芍药苷血浆终浓度分别为0.5 ng/mL、40.0 ng/mL，松果菊苷和苯甲酰芍药苷血浆终浓度为1 ng/mL、80.0 ng/mL的含药血浆样本，加入3 倍体积的含内标的甲醇沉淀剂，按“2.4”项下处理进样分析。第2 种处置方式，预先以3 倍体积甲醇沉淀剂对45 μL的空白大鼠血浆沉淀蛋白处理后，再加入工作液5 μL，振荡混匀，随后按“2.4”项下方法两次离心处理后进样分析；第3 种，用等量超纯水代替大鼠空白血浆，依前述第2 种处置方式，平行操作并进样分析。

进样后第1 种处置方式的样品平均峰面积与第2种处置方式的样品平均峰面积相比，结果即为大鼠血浆中4 种物质的提取回收率；将第2 种处置方式的样品平均峰面积与第3 种处置方法进样后的样品平均峰面积相比，得到大鼠血浆中4种物质的基质效应因子。同时还考察了基质因子的变异系数：用第2 种处置方式的4 种样品和内标物质峰面积与第3种处置方式的样品和内标峰面积做比，计算4 种样品和内标物质的基质因子，然后用4 种样品的基质因子与各自的内标基质因子相比，得到经内标归一化后的基质因子。

2.5.6 稳定性 取若干份空白SD大鼠血浆45 μL，加入工作液5 μL，振荡30 s 混匀，配制成浓度Ⅰ（毛蕊花糖苷和氧化芍药苷终浓度为0.5 ng/mL、松果菊苷和苯甲酰芍药苷终浓度为1 ng/mL）和浓度Ⅱ（毛蕊花糖苷和氧化芍药苷终浓度为40 ng/mL、松果菊苷和苯甲酰芍药苷终浓度为80 ng/mL）的含药血浆，平行5 份，将制备样品分别按照不同处置方法进行处置：包括在室温下放置8 h、超低温（-60 ℃~-80 ℃）冻存30 d、超低温冷冻（-60 ℃~-80 ℃）-解冻（37 ℃）3 次循环，每种考察条件下浓度Ⅰ和Ⅱ平行五份，按“2.4”项下处理进样分析，根据当日随行标准曲线对毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷的含量进行回算。另外同样制备浓度Ⅰ和浓度Ⅱ的含药血浆，平行5 份，按照“2.4”项下处理，然后置于进样盘中（4 ℃）放置，24 h 后进样，并根据当日随行标准曲线回算各物质含量。

2.6 耳聋左慈丸单次给药后的药代动力学研究

2.6.1 制备给药提取液 称取耳聋左慈丸粉末80 g，加入超纯水150 mL 及无水乙醇10 mL，超声提取2 h，提取后在3 000 r/min 下离心10 min，取上清液于18 000 r/min 再次离心5 min，转移出上清液用于给药。另取上清液1 mL 使用0.22 μm 滤膜过滤，用超纯水稀释100倍，取出稀释后的样品50 μL于1.5 mL离心管中，加入含华法林内标（1 ng/mL）的甲醇沉淀剂150 μL，振荡5 min后，于18 000 r/min离心5 min，取出上清液130 μL，再次在18 000 r/min下离心5 min，取上清液100 μL 进样分析，根据随行标准曲线计算各物质浓度。

2.6.2 实验方案 取空白雄性SD 大鼠4 只，按20 mL/kg（相当于原药10 g/kg 剂量）灌胃给予上述提取液。实验前12 h 禁食不禁水，采集给药后0、5、10、20、40 min，及1、2、4、6、8 h的大鼠眼眶静脉血，置于含肝素的离心管中。在8 000 r/min的转速下离心5 min，收集上清血浆，按“2.4”项方法处理后进样分析，根据随行标曲进行浓度计算。将浓度结果导入Phoenix WinNonlin8.3 软件进行非房室模型拟合，求算药代动力学参数。

3 结 果

3.1 专属性和选择性

在空白基质中各物质的响应均低于空白血浆中各物质定量下限的20%，并低于内标响应的5%，表明4 种物质在该方法下的保留情况不受血浆中内源物质的影响。毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷和内标华法林的保留时间分别是1.93、1.87、1.86、2.08、2.27 min。几种物质的特征性色谱图如图1所示。

Figure 1 Characteristic chromatograms of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside,benzoylpaeoniflorin and warfarin(IS)

3.2 定量下限

根据随行标曲计算浓度，计算RSD 和RE（相对偏差），毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷在定量下限处的RSD 依次为3.8%、5.5%、4.3%、7.0%；RE 依 次 为5.8%、5.7%、-1.5%、6.9%。符合生物样本分析的相关标准。

3.3 标准曲线

毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷的标准曲线如表2所示，结果表明各物质在线性范围内的线性良好（r＞0.99），可满足于后续在此范围内的物质含量测定要求。

Table 2 Standard curves and linear ranges of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rat plasma

3.4 精密度和准确度

在定量下限和高、中、低浓度质控浓度下，毛蕊花糖苷的批内精密度RSD 在2.0% ~ 5.7%之间，批间精密度为6.3% ~ 7.2%；氧化芍药苷的批内精密度为3.3% ~ 7.0%，批间精密度为6.2% ~9.0%；松果菊苷的批内精密度为3.9%~6.6%，批间精密度为6.1%~8.0%；苯甲酰芍药苷的批内精密度为2.2%~5.7%，批间精密度为5.0%~8.5%间。4 种物质的批内、批间准确度也都在标示值的±15%之内，表明该方法具有良好的重复性和准确性，符合生物样本测定相关原则。

Table 3 Accuracies and precisions of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rat plasma

3.5 基质效应与提取回收率

在高、低两个浓度下，毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷的平均提取回收率内标归一化后的基质因子列于表4。结果表明这4 种物质的基质效应的RSD 均小于15%，基质效应和提取回收率均符合要求。

Table 4 Matrix effects and extraction recoveries of verbascoside, oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rat plasma

3.6 稳定性

在考察的几种条件下，毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷的低、高两种浓度的RE 均小于15%，说明在室温放置8 h、进样盘放置24 h、以及超低温-80 ℃冻存30 d 和3 次冻存冻融（-80 ℃~37 ℃）的条件下，4 种物质都能够保持足够的储存稳定性，可以满足生物样本测定的要求，数据结果如表5所示。

3.7 单次给药后的药代动力学

将用于给药的提取液进样测定了浓度，其中毛蕊花糖苷质量浓度为32 μg/mL，氧化芍药苷质量浓度为46.3 μg/mL，松果菊苷质量浓度为23.3 μg/mL，苯甲酰芍药苷质量浓度为23.8 μg/mL。按照20 mL/kg的给药剂量换算后毛蕊花糖苷的实际给药浓度为640 μg/kg，氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷的实际给药浓度分别为926、466 和476 μg/kg。

Table 5 Stabilities of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rat plasma(± s,n = 5)

Table 5 Stabilities of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rat plasma(± s,n = 5)

Compd.Verbascoside Oxypaeoniflorin Echinacoside Benzoylpaeonifl-orin c/（ng/mL）0.8 40 0.8 40 1.6 80 1.6 80 Room temperature 8 h RSD/%5.2 3.2 5.8 3.4 4.6 2.8 2.3 2.6 RE/%-3.0-6.0 5.3-2.4-1.0-6.1 0.6-2.0 Automatic(24 h)RSD/%4.1 2.8 6.3 3.0 4.3 4.9 9.2 2.3 RE/%-3.1-0.8 2.6-1.4-2.3-0.4 1.9 5.8 Freeze(-70°C for 30 d)RSD/%5.1 3.4 4.9 2.4 7.3 4.3 8.0 1.8 RE/%0.3 1.7 7.6-2.6 4.4 4.5 0.5 0.2 Freeze-thaw(three times)RSD/%2.0 3.2 3.1 1.4 5.5 4.5 5.2 2.5 RE/%1.0 1.3 10.1-0.9 0.4 1.9 5.0 0.6

通过软件计算得到4 种物质在大鼠体内的药代动力学参数，结果如表6所示。在给予耳聋左慈丸提取液后，氧化芍药苷在大鼠体内浓度较高，cmax1为（24.40 ± 4.78）ng/mL，cmax2为（22.50 ±2.70）ng/mL；毛蕊花糖苷和松果菊苷在大鼠体内消除较快，半衰期在1.8 h 左右，苯甲酰芍药苷的半衰期在3 h 左右。并且绘制了4 种物质的血药浓度-时间曲线，如图2 所示，毛蕊花糖苷在给药后6 min 左右时达峰，而氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷均在给药后出现双峰现象。

Table 6 Pharmacokinetic parameters of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rats after single-dose i.g administration(± s,n = 4)

Table 6 Pharmacokinetic parameters of verbascoside,oxypaeoniflorin,echinacoside and benzoylpaeoniflorin in rats after single-dose i.g administration(± s,n = 4)

Parameter AUC(0-t)/(ng/mL·h)AUC(0-∞)/(ng/mL·h)cmax1/(ng/mL)cmax2/(ng/mL)tmax1/h tmax2/h t1/2z/h CLz/F(L/h/kg)Vz/F(L/kg)14.06±2.24 15.55±3.46 6.14±1.92/0.104±0.036/1.88±0.52 42.91±7.91 111.36±17.87 88.32±19.30 111.66±14.19 24.40±4.78 22.50±2.70 0.083 0.667 2.63±0.69 8.42±0.99 31.55±8.06 18.53±2.53 21.48±2.81 4.71±1.88 3.92±1.00 0.083 0.667 1.82±0.15 22.07±2.87 74.26±26.31 11.88±3.11 15.32±1.89 4.15±1.84 3.51±2.91 0.083 0.667 3.04±1.37 31.54±3.79 142.63±78.63 Verbascoside Oxypaeoniflorin Echinacoside Benzoylpaeoniflorin

4 讨 论

4.1 耳聋左慈丸的提取方法

中药具有服用量大的特点，在动物给药时，直接研磨灌胃困难难以在合适的给药体积内保证给药剂量，需要进行提取，目前耳聋左慈丸常用的的提取方式是高温煎煮［13］，但是高温会影响物质稳定性，导致提取后成分的组成和含量与原药出现差异。在本实验中，采用水醇混合超声提取，溶解范围更广泛，并且能保证某些热不稳定组分的含量不发生明显变化，使提取液的成分组成更接近原药的成分组成。

4.2 药代动力学行为分析

体内实验结果表明，大鼠在耳聋左慈丸提取液灌胃给药后，毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷、苯甲酰芍药苷均能够在体内迅速分布并进行快速消除，与文献报道相符［14-17］。与其他3 种物质相比，氧化芍药苷在大鼠血中的浓度较高。此外，氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷在给药后都出现了双峰，3 种物质在给药后5 min 就出现了1次吸收峰，随后在40 min左右出现第2次吸收峰，肠肝循环导致双峰需要更长时间，所以肠肝循环引起双峰的可能性不大。提取液在给药时为浊液，所以存在部分药物溶解在溶液中的现象，而这部分溶解形式的药物更易通过胃快速吸收，产生1 次快速吸收相。因此推测与其在体内的吸收过程有关，由于吸收不均匀出现双峰。相关研究表明［18-19］在灌胃给予氧化芍药苷和松果菊苷的溶液时，均未出现双峰现象，而Zhou等［20］在进行苯甲酰芍药苷的药代动力学研究时灌胃给予了苯甲酰芍药苷的混悬液，其中部分药物溶解，部分未溶解，给药后也出现了双峰现象，并且第1 个吸收峰也是在给药5 min 后出现的，与本实验结果相似，所以推测这种双峰现象是由于部分溶解的分子形式在灌胃后首先被胃迅速吸收，造成了5 min 处的第1 个吸收峰，而第2 个吸收峰则是由未溶解部分的吸收产生的。

Figure 2 Plasma concentration-time curves of verbascoside(A),oxypaeoniflorin(B),echinacoside(C)and benzoylpaeoniflorin(D)(± s,n = 4 )

5 结 论

耳聋左慈丸是治疗耳聋耳鸣的经典方，目前还未有耳聋左慈丸在体内的定量研究结果报道。本实验中对耳聋左慈丸进行了提取，并且首次建立了毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷这4种物质在大鼠血浆中的LC-MS/MS共检测方法并用于评价耳聋左慈丸提取液在大鼠体内的药代动力学行为。此次实验结果可用于指导在相同的给药剂量下灌胃给予耳聋左慈丸提取液后毛蕊花糖苷、氧化芍药苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷在大鼠体内的药代动力学行为，但实验中毛蕊花糖苷、松果菊苷和苯甲酰芍药苷的浓度较低，可考虑在保证物质稳定性的前提下进一步优化提取方法，提高提取效率。