刘师文,张艳妮,肖 芳,周 珺,刘晓庆,熊 英,吴杨博文,龚 甜
汉坦病毒(Orthohantavirus,HV)是汉坦病毒科,正汉坦病毒属有包膜、分节段的负链RNA病毒,啮齿类动物为其自然宿主,人类通过吸入被HV感染动物的排泄物气溶胶可引起肾综合征出血热(hemorrhagic fever with renal syndrome,HFRS)或汉坦病毒肺综合征[1]。HV在世界范围内流行,对人类造成了严重危害,HFRS也是中国最严重的鼠传疾病之一[2]。HV病毒基因组分为S、M、L 3个基因片段,分别编码核衣壳蛋白、糖蛋白前体及RNA依赖的RNA聚合酶。正汉坦病毒属目前有38个种,在我国流行最广并明确导致肾综合征出血热的种为SEOV和汉滩病毒(Hantaan orthohantavirus,HTNV)。
高安市是江西省历年HFRS发病最严重的区县之一,从2005年开始开展人间和鼠间HFRS监测,为国家级HFRS监测点。2011年本实验室基于HV部分M基因测序分析,发现江西上高(与高安市接壤的县)地区出现了与现有流行SEOV株基因序列差异较大,在基因进化树上独立分支的SEOV(SG42/2011株)[3], 后续在高安市持续监测到与之高度同源的病毒(GAN44/2014、GANS49/2015株等)[4]。因为前期获得的基因序列信息仅为M基因片段(长400 bp左右),对流行株整体变异情况、基因组与疫苗株匹配程度等无法进行更深入的分析,所以本实验室重点对高安市鼠类样本开展HV病毒分离和全基因组测序研究,以期更深入了解高安市流行的SEOV变异株遗传变异信息,为HFRS防控提供科学依据。
1.1 样本 收集2021年江西省高安市鼠肺标本62份,经实时荧光RT-PCR法检测有6份HV阳性,2份SEOV 和4份HTNV,对6份HV核酸阳性样本进行病毒分离。
1.2 主要试剂和仪器 Vero-E6细胞、小牛血清、胎牛血清、MEM、细胞刮刀、荧光素标记的汉坦病毒抗体与文献[5]相同,高通量测序仪ABI Ion Gene Studio S5及测序试剂 (赛默飞)、倒置显微镜和荧光显微镜(尼康),组织破碎仪(美国Next Advance)。
1.3 病毒分离及鉴定 采用灭菌手术剪剪下HV核酸阳性鼠肺至1.5 mL离心管中,加入适量无菌1×PBS溶液,离心管盖好放至组织破碎仪粉碎,制成10%鼠肺样本悬液。用封口膜封住离心管口防止离心管盖弹开。悬液经6 000 g,4 ℃离心10 min后,取上清0.8~1 mL接种长成75%单层的Vero-E6细胞。37 ℃吸附2 h;吸去残留液体加入含2%牛血清的MEM维持液,37 ℃培养。每7 d更换1次维持液,28 d传代1次,传代方法按照细胞传代方式进行。
1.4 培养物鉴定 分别在每次换液前吸取培养物上清进行核酸提取,采用实时荧光RT-PCR检测HV核酸,方法参照文献[6]。当实时荧光RT-PCR法检测Ct值出现明显降低且低于22时,用刮刀刮取少量细胞涂片进行直接免疫荧光检测。抗原片制备及直接免疫荧光检测方法参照文献[5],抗原片出现特异性绿色荧光说明病毒分离成功。若连续传代3次未检出HV则分离结果为阴性。
1.5 鼠种鉴定 采用PCR方法扩增鼠肺样本中鼠线粒体细胞色素氧化酶基因(cytb)并测序,序列通过NCBI Blast比对确定鼠种,引物和扩增方法参照文献[7]。
1.6 分离株全基因组序列测定和分析 采用ABI Ion Gene Studio S5高通量测序仪对分离株核酸进行全基因组序列测定,采用CLC软件对测序仪数据分析获得全基因组序列,从GenBank下载HV参考株全基因序列,采用MEGA7.0、DNASatar等软件对基因序列进行比对分析,以最大似然法构建HV系统进化树(参考株序列信息见表1)。将分离株基因组序列与疫苗株基因组以及文献发表的HV B细胞和T细胞免疫表位进行比对分析,从基因层面分析疫苗保护效果。
表1 进化分析所用参考株的序列信息
2.1 实时荧光RT-PCR法检测培养物上清 每次换液前吸取培养物上清进行核酸提取,经荧光RT-PCR检测发现,2份样本(GAW30/2021,GAW50/2021,均为SEOV型)随着时间推移荧光Ct值明显降低。GAW30/2021,GAW50/2021培养物上清荧光RT-PCR检测扩增曲线图见图1、图2。GAW30/2021随着时间推移荧光强度逐渐增强,Ct值逐渐降低。GAW50/2021培养物核酸在21 d前荧光强度和Ct值变化不大,而在第28 dCt值发生明显变化。其余4份阳性样本培养物培养至3代,经荧光RT-PCR检测仍无特异性荧光信号,病毒分离结果为阴性。
图1 GAW30/2021培养物上清荧光RT-PCR检测图
图2 GAW50/2021培养物上清荧光RT-PCR检测图
2.2 直接免疫荧光检测 分别在接种后28 d、35 d(第2代第7 d)刮取少量GAW30/2021、GAW50/2021细胞制备抗原片,采用直接免疫荧光方法检测细胞内病毒颗粒(图3)。GAW30/2021、GAW50/2021分别在接种后28 d、35 d,大多数细胞内均可见到特异性绿色荧光颗粒。
注:A为GAW30/2021培养物(28 d),B为GAW50/2021(35 d),C为Vero-E6细胞对照。
2.3 鼠种鉴定 扩增GAW30/2021、GAW50/2021鼠肺样本中鼠cytb基因并测序,获得两条长411 bp鼠cytb基因序列,上传至GenBank,登录号分别为:MZ420337、MZ420336。 通过NCBI Blast比对确定,GAW30/2021鼠种为褐家鼠,GAW50/2021鼠种为黄毛鼠(也称罗赛鼠)。
2.4 基因组序列分析 经高通量测序获得分离株GAW30/2021、GAW50/2021基因组序列,2株分离株的3个基因片段大小相同,每个基因编码区长度一致。S、M、L基因分别含1 773、3 651、6 530个核苷酸,分别编码429、1 133、2 151个氨基酸,核苷酸序列同源性分别为99.7%、99.0%、99.4%、氨基酸序列同源性分别为99.8%、99.7%、99.9%。分离株基因序列详细信息可登录NCBI网站,GenBank登录号:MZ504237-MZ504242。
以最大似然法构建的系统进化树(图4、5、6),其中SEOV 参考株S、M、L基因序列分别为21条、17条、11条,HTNV参考株为76-118株,本研究中的序列用黑圆形标志。图中括号内为相应参考株基因序列的GenBank登录号。由图可见,分离株GAW30/2021、GAW50/2021 S、M、L基因进化树上都分布在SEOV进化枝,与SEOV参考株遗传距离较远,呈独立分枝。
图4 汉坦病毒HV S基因核苷酸系统进化分析
图5 汉坦病毒 M基因核苷酸系统进化分析
图6 汉坦病毒 L基因核苷酸系统进化分析
GAW30/2021、GAW50/2021 与21株SEOV 参考株S基因编码区核苷酸同源性为88.8%~94.9%,氨基酸同源性为97.7%~99.8%,与江西上高SG42/2011株关系最近;与HTNV 76-118株的M基因核苷酸同源性均为73.3%,氨基酸同源性分别为84.2%、84.5%;与17株SEOV 参考株M基因编码区核苷酸同源性为84.3%~87.2%,氨基酸同源性为96.1%~98.3%,与HTNV 76-118株的M基因核苷酸同源性分别为71.9%,72.0%,氨基酸同源性分别为77.4%、77.6%;与11株SEOV 参考株L基因编码区核苷酸同源性为84.3%~84.6%,氨基酸同源性为97.2%~97.8%,与HTNV 76-118株的L基因核苷酸同源性均为75.1%,氨基酸同源性均为85.4%。
GAW30/2021株与SEOV疫苗株Z37基因S、M、L基因核苷酸同源性分别为89.7%、84.9%,84.6%,氨基酸同源性分别为98.8%、96.9%、97.6%,氨基酸变异位点数分别为5个、35个、51个; GAW50/2021株与SEOV疫苗株Z37基因S、M、L基因核苷酸同源性分别为89.5%、84.9%,84.7%,氨基酸同源性分别为99.1%、97.0%、97.7%,氨基酸变异为位点数分别为4个、34个、49个。
2.5 核蛋白和糖蛋白免疫表位氨基酸变异位点分析 将分离株S和M基因推导氨基酸序列与已发表的文献[8-12]中关于SEOV 核蛋白和糖蛋白上的免疫表位比较,分析分离株在免疫表位上氨基酸的变异情况。结果分离株核蛋白4 个免疫表位:72GKNIGQDRDPTGVEPGDHLKERSALSYGNTL-DLNSLDID110、165YEDVNGIRKP174、251PIAGSLSGNPVNRD264、338MRNTIMASK346均未发生氨基酸改变。Z37疫苗株与GAW30/2021、GAW50/2021株糖蛋白2个免疫表位(435GQKKTILTKTLVIGQ451、880PFSCPEFGQFRKKC894)中氨基酸序列一致。
HV病毒分离是HV病原学研究非常重要的技术手段,该病毒分离技术早在20世纪80年代就已建立,在可分离的病毒中HV属于较难分离的病毒[13]。因为对样本要求高,分离周期长,病毒分离率低等原因,HV病毒分离技术应用得越来越少。中国现阶段使用的HFRS疫苗毒株主要为20世纪80年代分离,随着病毒的变异,存在现有疫苗对流行株缺乏免疫保护作用的风险。开展病毒分离,储备新的HV毒株,对开展流行毒株的抗原性及疫苗保护效能研究、指导HFRS疫情防控有非常重要的意义。
本研究从江西省HFRS重点疫区高安市分离到2株SEOV,2株分离株与国内外SEOV参考株全基因组核苷酸差异较大,同源性为84.3%~94.9%,氨基酸同源性为96.1%~99.8%,在系统进化树上独立分枝,证实了高安市鼠间流行的SEOV基因组发生了较大变异。目前尚未在人间HFRS疫情中发现该病毒,后期应加强人间疫情的监测。成功分离2株SEOV变异株,丰富了我国SEOV毒种的基因型别。
接种疫苗是预防HFRS最有效的手段。2株分离株与SEOV疫苗株Z37 基因组核苷酸差异较大,同源性为84.6%~89.7%,但氨基酸同源性仍较高,为97.6%~99.1%;核蛋白和糖蛋白的免疫表位氨基酸序列与Z37一致。因此,推断流行株虽然发生了较大变异,但是目前疫苗对流行株仍具有保护力,还应当持续监测病毒变异情况。
HV不同种病毒通常有稳定的宿主,如HTNV宿主主要是黑线姬鼠,SEOV宿主主要为褐家鼠[14]。本研究现场采样时,将GAW50/2021鼠种定为臭鼩鼱,通过鼠cytb基因检测,确定GAW50/2021鼠种为黄毛鼠(也称罗赛鼠)。因此,我们认为仅依靠鼠种外形特征以及采样人员的经验判断鼠种,容易产生误差。在确定病毒来源物种时,尤其是在得出“宿主溢出”[15]“宿主转换”[16]结论时应结合分子生物方法对鼠种进行鉴定。
本研究成功分离到2株SEOV变异株,丰富了我国SEOV毒种的基因型别,经全基因序列分析,推断目前疫苗对变异株仍具有保护力,为HFRS防控提供科学依据。
利益冲突:无
引用本文格式:刘师文,张艳妮,肖芳,等. 江西省高安市两株汉城病毒分离鉴定及全基因组序列分析[J]. 中国人兽共患病学报,2022,38(2):102-107. DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2022.00.023