王友元,石丽颖,孙凯鑫,李前庆,吕文发*,王 军*
(1.现代农业技术教育部国际合作联合实验室,吉林长春 130118;2.动物生产及产品质量安全教育部重点实验室,吉林长春 130118)
在奶牛生产过程中,子宫内膜炎是最为常见的繁殖障碍性疾病,该病可降低奶牛的繁殖性能甚至造成不孕,不仅减少产奶量还增加饲料消耗,给奶牛养殖业造成巨大的经济损失。革兰氏阴性细菌通常认为是损害子宫内膜的病原体[1-2],脂多糖(LPS)是革兰氏阴性细菌细胞壁外膜的组成部分,是免疫系统中最有效的刺激物之一[3],已广泛用于急性肺损伤、乳腺炎、子宫内膜炎等炎症模型的建立[4-5]。据报道,LPS 可以诱导Toll 样受体4(TLR4)信号通路活化,继而导致炎症细胞因子过量表达[6],当LPS 刺激TLR4 表达时,会诱导NF-κB 途径激活[7-8],促进白细胞介素-6(IL-6)、白细胞介素-1β(IL-1β)和肿瘤坏死因子-α(TNF-α)等炎症细胞因子的分泌,从而加剧炎症反应对机体的损伤[9-10]。
表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)是绿茶中的主要活性成分[11],是众多绿茶提取物中对抗细菌、病毒和真菌的最有效物质[12],并且具有强大的抗氧化、抗炎和抗肿瘤作用[13-14]。试验研究和临床研究表明,EGCG 可以有效抑制大鼠乳腺炎及小鼠急性肺损伤的发生[15-16],但在子宫内膜炎上的研究还未见报道。本研究旨在探讨EGCG 对LPS 诱导的小鼠子宫内膜炎的治疗作用及其机制,为EGCG 预防和治疗LPS 诱导的子宫内膜炎的研究和应用提供参考。
1.1 试验材料 EGCG(纯度≥98%,上海源叶生物科技有限公司),LPS(Sigma,美国);抗体均为CST (美国)产品;小白鼠购自沈阳长生生物技术股份有限公司。
1.2 试验设计 选取60 只10 周龄体重为30~35 g、健康状况良好的雌性昆明小白鼠,按体重随机分为5 组,每组12 只,适应7 d 后将小鼠随机分为对照组、LPS 组、EGCG(1、5、10 mg/kg)+LPS 组。将LPS 和EGCG 溶于无菌生理盐水中至所需浓度。麻醉小鼠后用留置针软管向小鼠子宫内注入20 µL LPS(2.5 mg/mL)以建立子宫内膜炎模型[17],灌注LPS 6 h 后,EGCG+LPS 组小鼠腹腔内分别注射不同浓度的EGCG(1、5、10 mg/kg)3 次,每6 h 注射1 次,对照组和LPS 组以相同方式注射生理盐水。24 h 后全部小鼠进行安乐死,并收集子宫组织冻存于-80℃,用于后续检测试验。
1.3 qRT-PCR 分析 采用RNAiso Plus(TaKaRa,日本)提取小鼠子宫组织的总RNA,并反转录为cDNA,用于qRT-PCR 试验。本试验所需的基因引物序列见表1。引物由宝生物工程(大连)有限公司设计及合成。反应条件:95℃预变性120 s;95℃变性15 s,60℃退火30 s,扩增40 个循环。运用 2-△△Ct方法进行数据分析。引物退火温度均为60℃。
1.4 ELISA 检测 严格按照试剂盒(江苏酶免实业有限公司)说明书进行操作,利用连续光谱酶标仪(Biotek,美国)检测所有小鼠子宫组织裂解液中的髓过氧化物酶(MPO)、IL-6、IL-1β和TNF-α含量。
1.5 Western blot 检测 根据蛋白大小分别配制12% 的聚丙烯酰胺凝胶,采用BCA 蛋白浓度测定试剂盒(碧云天生物技术公司)测定蛋白浓度,上样20 μg/ 孔。80 V 电压电泳至分离胶变为160 V 电压至电泳结束。采用半干法转膜,转膜条件为0.12 A 28 min,将目的蛋白转印到硝酸纤维素膜(NC)上。采用封闭液封闭1.5 h,一抗(1:1000)p-p65、p65、p-IκBα和IκBα(3033S、8242S、2859S 和4812S),4℃孵育过夜,TBST 洗5 次,每次5 min。孵育二抗(1:10000),室温1 h,TBST 洗5 次,每次5 min。最后用ECL 发光液显影,用TanonGis 软件进行灰度值分析。
1.6 统计分析 采用SPSS 18.0 软件进行单因素方差分析,比较组间差异性,数据用平均值± 标准差表示,P<0.05 表示差异具有统计学意义,使用GraphPad Prism 8.0 软件作图。
2.1 子宫组织解剖学观察 如图1 所示,对照组小鼠具有健康的组织学形态,无病理学变化;在LPS 组中,子宫表现出明显的病理损伤,伴有严重的充血和肿胀现象;经EGCG 治疗后,充血和肿胀明显减少,子宫状态得到显著改善。
表1 基因引物合成信息
图1 EGCG 治疗效果验证
2.2 EGCG 对TLR4和MPO 活性的影响 如图2 所示,LPS 组中TLR4 和MPO 活性较对照组极显著增加,当EGCG 注射量达到5 mg/kg 时TLR4极显著下降,MPO显著下降,当EGCG 注射量达到10 mg/kg 时,两者均极显著下降。试验结果说明EGCG 缓解LPS 对子宫内膜的侵害具有剂量依赖性。
图2 EGCG 对TLR4 和MPO 表达的影响
2.3 EGCG 对炎症细胞因子表达的影响 如图3 所示,qRT-PCR 检测表明,LPS 组 的IL-6、IL-1β和TNF-αmRNA 水平较对照组极显著上升,在EGCG 治疗组中极显著降低。ELISA 检测显示相同趋势,当EGCG 注射量达为1 mg/kg 时,IL-6、IL-1β和TNF-α显著下降;当EGCG 注射量为5 和10 mg/kg 时,IL-6、IL-1β和TNF-α极显著下降。结果表明EGCG 抑制了LPS 诱导的子宫组织中炎症细胞因子的表达及分泌。
2.4 EGCG 抑制LPS 诱导的NF-κB 途径活化 由图4可知,使用Western blot 分析表明,LPS 极显著诱导了p65 和IκBα蛋白的磷酸化;10 mg/kg EGCG 显著降低了p65 的磷酸化,极显著降低了IκBα的磷酸化。试验结果表明,EGCG 可通过抑制TLR4 介导的NF-κB 活化减轻炎症反应。
子宫内膜炎是子宫的一种炎症状态,大肠杆菌是最常见的病原体之一[1]。LPS 由大肠杆菌分泌,是一种有效的致炎物质[18-19],能够作用于TLR4 从而激活NF-κB信号通路,随后促进IL-6、IL-1β和TNF-α等炎症细胞因子的分泌来诱导炎症反应,导致嗜中性粒细胞的募集,从而加重子宫内膜上皮的损伤。本研究用LPS 诱导小鼠子宫内膜炎模型,随后腹腔注射EGCG 进行治疗试验,结果表明EGCG 可抑制TLR4介导的NF-κB 激活,从而减弱子宫内膜炎发生过程中炎症细胞因子的释放。
图3 EGCG 对炎症细胞因子表达的影响
图4 EGCG 抑制LPS 诱导的NF-κB 途径活化
EGCG 对炎症反应具有一定的抑制作用[16]。本研究的解剖学观察也表明,LPS 可导致子宫组织炎症的发生,而EGCG 可显著改善子宫的病理变化。MPO 活性与嗜中性粒细胞呈正相关关系,可以间接反映炎症的严重性[20],MPO 活性减弱意味着抗炎反应降低,这表明EGCG 对LPS 诱导的子宫内膜炎具有缓解作用。TLR4 是TLR(Toll 样受体)家族之一,是LPS 的受体[21]。研究表明,LPS 可通过TLR4 诱导免疫反应并介导NF-κB 途径的活化[22]。NF-κB 是一种广泛表达的核转录因子,是炎症最重要的调节剂之一[23],当IκBα发生磷酸化时,NF-κB 将被激活,然后迁移至细胞核内,加剧炎症细胞因子的表达[24-25]。本试验结果表明,EGCG 可剂量依赖性地抑制TLR4的mRNA 表达,并抑制p-IκBα和p-p65 的蛋白水平,这表明EGCG 在治疗LPS 诱导的小鼠子宫内膜炎中是通过NF-κB 途径实现的。IL-6 由细胞产生以应对侵袭和伤害,这对白细胞募集和组织动态平衡起着重要作用[26]。IL-1β是炎症的主要介质,主要由活化的巨噬细胞分泌[27]。TNF-α是一种多向性的促炎症细胞因子,由多种细胞分泌,具有多种生物学功能[28]。有研究报道,LPS 诱导的子宫内膜炎可以促进IL-6、IL-1β和TNF-α的表达[29]。本试验结果表明,EGCG 可显著地减少这些炎症细胞因子的表达和分泌,从而减少LPS 对小鼠子宫内膜的侵害。
本试验结果表明,EGCG 可下调TLR4 和MPO 的表达,抑制炎症细胞因子IL-6、IL-1β和TNF-α的分泌,阻止NF-κB 信号通路的激活,提示EGCG 可作为预防和治疗LPS 诱导的子宫内膜炎的潜在药物。