郭明程,聂东兴,汤 涛,李贤宾
(1.农业农村部农药检定所,北京100125;2.浙江省农业科学院农产品质量标准研究所,浙江杭州 310021)
噻嗪酮为噻二嗪类昆虫蜕皮抑制剂,通过抑制昆虫几丁质的合成,干扰昆虫的正常新陈代谢,致使昆虫不能正常蜕皮和变态而死亡,主要用于防治水稻、柑橘、茶树等作物的稻飞虱、介壳虫、茶小绿叶蝉等[1-2]。目前已报道的噻嗪酮在茭白中残留检测方法很少[3]。本研究开发了利用超高效液相色谱-串联质谱测定噻嗪酮在茭白中残留的分析方法。该方法快速、简便,重现性好,适用于大量茭白样品中的噻嗪酮残留检测。
UPLC-XEVO TQ/MS型超高效液相色谱-串联质谱联用仪(美国Waters公司);AB135-S型电子天平(精确至0.000 1 g,梅特勒-托利多公司);SPS402F型电子天平(精确至 0.01 g,奥豪斯公司);VTX-3000L型涡旋仪(杭州雷琪试验器材公司);TYZD-IIA型振荡器(天仪电子仪器有限公司);R-210型旋转蒸发仪(瑞士Buchi公司);V-700型真空泵(瑞士Buchi公司)。
噻嗪酮标准品(纯度98.5%,上海安谱科技有限公司);乙腈、甲醇(色谱纯,德国Merck);甲酸(色谱纯,上海凌峰化学试剂有限公司);无水硫酸钠、氯化钠、丙酮、石油醚(分析纯,国药集团化学试剂有限公司);弗罗里硅土(650 ℃烘4 h,加5%水脱活,天津博纳艾吉尔科技有限公司);试验用水都为用Milli-Q超纯水器纯化处理得到的超纯水。
1.2.1 提取
准确称量5 g(精确至0.01 g)已均质粉粹的茭白植株或茭白样品,转入250 mL锥形瓶中,移入10 mL水,茭白植株样品加入 70 mL乙腈(茭白样品加入50 mL乙腈),振荡30 min,抽滤后滤液转入100 mL具塞量筒,加入氯化钠至10 cm,摇匀2 min,静置10 min,取上清液5 mL至250 mL平底烧瓶中,减压浓缩至近干,待净化。
1.2.2 净化
层析柱(长30 cm,内径1.0 cm)内依次添加5 g弗罗里硅土(茭白植株另加0.10 g活性炭)、2 cm无水硫酸钠。用10 mL石油醚预淋柱子,弃去淋洗液。将以上提取物用10 mL石油醚溶解洗涤2次,转入层析柱中,弃去淋出液,用丙酮∶石油醚(30∶70,体积比) 30 mL洗脱,收集洗脱液,在40 ℃下减压浓缩至干,甲醇定容5 mL,过0.22 µm滤膜,待检测。
1.3.1 色谱条件
流动相:乙腈-0.1%甲酸水;色谱柱:Waters Acquity UPLCTM BEH C18色谱柱(1.7 µm,2.1 mm×50 mm);流速为0.20 mL/min;柱温:40 ℃;进样量:1.0 μL;保留时间:约3.26 min;采用梯度洗脱,洗脱条件见表1。
表1 液相色谱梯度洗脱条件
1.3.2 质谱仪器条件
离子源:正离子(ESI+);毛细管电压:3.5 kV;脱溶剂气流量:800 L/h;一级锥孔电压:40 V;脱溶剂温度:400 ℃;噻嗪酮定性定量离子对:m/z306.2(106.1*,116.1)。
用色谱纯乙腈作为溶剂,配制得到100 mg/L噻嗪酮母液,再依次稀释为500.0、200.0、100.0、50.0、10.0、5.0、1.0、0.50 μg/L系列标准溶液,在上述仪器检测条件下进行测定,以监测离子峰面积与标准溶液浓度作标准曲线。
在空白的茭白和茭白植株样品中分别添加噻嗪酮标准溶液,茭白中添加水平为0.020、0.50、5.0 mg/kg,茭白植株样品中添加水平为 0.020、0.50、5.0、20 mg/kg,每个添加水平浓度重复5次,用上述检测方法测定添加回收率和相对标准偏差。
在流动相为乙腈和水(50∶50,体积比),进样体积为1 μL,流速0.2 mL/min的条件下,将质量浓度为1.0 mg/L噻嗪酮标准溶液,通过蠕动泵进样,分别在电喷雾电离负离子模式(ESI-)和正离子模式(ESI+)下,m/z 100~500范围内对母离子进行全扫描。结果表明,噻嗪酮在ESI+下电离效果最好,信号强度比在ESI-下高,得到了m/z306.2的[M+H]+准分子离子峰。二级质谱扫描[M+H]+准分子离子峰,获得了碎片离子,分别选择m/z306.2/116.1和m/z306.2/106.1作为定性离子对和定量离子对,用18 eV的能量碰撞时,m/z106.1碎片离子的响应值更高,故选定m/z106.1为定量离子。
提取剂的选择是得到较高添加回收率的重点,通过待测物的样品类型和理化性质选定提取剂。依照样品的性质和噻嗪酮的理化特性,在 0.50 mg/kg加标浓度条件下,考察了乙腈、甲醇和乙酸乙酯对茭白和茭白植株中噻嗪酮的提取效率。结果表明,乙腈和乙酸乙酯对茭白和茭白植株中噻嗪酮的提取效率较高,甲醇的提取效率较低,且难与水发生盐析,而乙酸乙酯共提物的杂质较多,都加大了后续净化处理的难度。因此,选择乙腈作为测定噻嗪酮在茭白和茭白植株中残留的提取剂,同时在样品中添加少量水,既减少共提物的基质效应,又提高提取效率。
在上述分析条件下,以峰面积(y)为纵坐标,质量浓度(x)为横坐标,考察噻嗪酮的线性关系。结果表明,在0.5~500 μg/L范围内,噻嗪酮的峰面积与质量浓度表现出良好的线性关系,其标准曲线方程为y=69 664.988 0x+553 363.735 5,相关系数R2=0.995 2。按信噪比(S/N)为3计,噻嗪酮的检出限为5.0×10-13g,以低档添加浓度为准,噻嗪酮在茭白和茭白植株中的定量限为0.02 mg/kg。
在优化的样品前处理条件和仪器条件下,进行空白基质加标回收试验,在各添加浓度下,结果见表2。噻嗪酮在茭白中添加浓度为0.020~5.0 mg/kg时,平均添加回收率为 98%~102%,相对标准偏差(RSD)为7.4%~10.8%;在茭白植株中添加浓度为0.020~20.0 mg/kg时,平均添加回收率为 84%~103%,相对标准偏差(RSD)为3.2%~10.6%。图1~5为噻嗪酮标样、茭白基质空白、茭白添加、茭白植株基质空白和茭白植株添加噻嗪酮的典型谱图。
表2 噻嗪酮在茭白和茭白植株中的添加回收率及相对标准偏差
图1 0.01mg/L噻嗪酮溶剂标样色谱图
图2 茭白基质空白色谱图
图3 茭白中添加0.02mg/kg噻嗪酮色谱图
图4 茭白植株基质空白色谱图
图5 茭白植株中添加0.02mg/kg噻嗪酮色谱图
茭白和茭白植株样品用乙腈提取,弗罗里硅土层析柱净化,在正离子和多反应监测模式下,通过超高效液相色谱-串联质谱测定,建立了茭白和茭白植株中噻嗪酮残留量的检测方法。在优化条件下,噻嗪酮在茭白和茭白植株中的添加回收率为84%~103%,相对标准偏差为3.2%~10.8%,最低检测浓度为0.02mg/kg。该方法灵敏度高,重现性好,达到农药残留分析要求,适用于噻嗪酮在茭白中的残留抽检监测。