有机磷阻燃剂在湖南鲫鱼体内的生物分布研究

2020-12-03 04:02:24胡淑平冯志桥罗鑫钟伟周桢玉武利雪
环境保护与循环经济 2020年10期
关键词:鱼体鲫鱼阻燃剂

胡淑平 冯志桥 罗鑫 钟伟 周桢玉 武利雪

(长沙理工大学水利工程学院,湖南长沙 410114)

1 引言

随着经济的快速发展与社会生产力的进步,越来越多高分子合成材料被运用到产品制造中,例如建材、纺织、塑料、电子、造纸和家装等。由于这类材料具有很强的可燃性,如聚乙烯、酚醛树脂,在为人类的生产和生活带来便利的同时也很容易形成火灾,造成严重的经济损失,给人身安全带来巨大的危害。因此,要安全有效地利用好高分子合成材料,阻燃剂的作用必不可少。有机磷阻燃剂(OPFRs)作为阻燃剂中重要组成部分,因其具有阻燃效果好、不易产生毒烟、易与聚合物基材相容等优点[1-2]被广泛应用。而OPFRs 是一种添加型阻燃剂,即在加工过程中添加到聚合物中,与聚合物不发生化学反应,只是物理地分散于阻燃物体系中的阻燃剂。因此易通过挥发、淋洗等方式扩散[3]到环境中,对人类的生命健康造成威胁。据相关研究发现,东江水域多处沉积物中均检测到了OPFRs[4],珠江三角洲地区沉积物和水生生物中也发现存在OPFRs[5]。目前,国外关于鱼类中OPFRs 的污染已有一些报道,但在国内OPFRs 的环境污染研究刚起步,相关报告较为少见。本文根据典型鱼类鲫鱼本身特性,从样品的前处理、净化、目标检测物质的分离提纯等方面进行研究,探索利用LC-MS/MS 方法检测鱼体中7 种OPFRs。

2 实验材料与方法

2.1 仪器与试剂

2.1.1 实验仪器

液相色谱质谱仪:Agilent1200 快速液相色谱仪,6470TripleQuad 质谱仪,美国;实验室台式歧管冻干机:BenchTopPro,英国;全自动固相萃取仪:HGC,中国;氮吹仪:MTN-2800D,中国。

2.1.2 实验试剂

乙酸乙酯:色谱纯;甲醇:色谱纯;甲酸:分析纯;超纯水;TCPP[磷酸三(2-氯)丙酯];TCEP[磷酸三(2-氯)乙酯];TPHP(磷酸三苯酯);TEP(磷酸三乙基酯);TMP(磷酸三甲基酯);TnBP(磷酸三正丁基酯);TPrP(磷酸三丙基酯)。分别准确称取适量TCPP,TCEP,TPHP,TEP,TMP,TnBP,TPrP 的标准品,用乙酸乙酯配制成200 mg/L 标准储备液,并逐级稀释成适用浓度的混合标准溶液。

2.2 样品采集

2019 年9 月在某大型超市购买6 条大小不等的典型鱼类鲫鱼作为样品,购买后样品装入密封的食品保鲜袋,冷藏保存。次日样品在室温下解冻后,用不锈钢剪刀进行解剖。

2.3 样品处理

将鲫鱼在去离子水中漂洗干净,滤纸吸水后测量长度和称量质量,收集鱼体的背部、腹部肌肉并将肠内物质从肠道组织中去除并收集,分离后的各组织在去离子水中漂洗干净,滤纸吸水后,称重标记,剪碎,用锡箔纸包好,冷冻保存5 h 后取出,冷冻干燥48 h 后加入无水硫酸钠研磨成粉。加入乙酸乙酯搅拌,离心取上清液,重复上述步骤3 次,并将所有的上清液混合均匀。摇匀混合后的样品溶液过HLB固相萃取柱进行净化,HLB 柱使用前依次各用10 mL 甲醇、10 mL 超纯水活化,吸附目标物后的HLB 柱用10 mL 乙酸乙酯洗脱。将洗脱得到的溶液用无水硫酸钠除水后,放入氮吹仪中进行蒸发浓缩至近干,用乙酸乙酯定容至2 mL,并进行保存,用作下一步的液相色谱-质谱(LC-MS)分析。

2.4 仪器分析

2.4.1 色谱条件

柱温40 ℃,流动相A:水[加入0.1%(v/v)甲酸],B:甲醇,流速0.3 mL/min,进样体积10 μL。梯度洗脱,初始比例为A:95%,B:5%;0~3 min 为A:30%,B:70%;3~5 min 为A:20%,B:80%;5~8 min 为A:5%,B:95%;8~10 min 为A:95%,B:5%。

2.4.2 质谱条件

离子源:ESI,正离子扫描;雾化器压力:45 psi;干燥器温度:350 ℃;干燥器流速:11 L/min;毛细管电压:4 000 V;检测方式:多反应检测;扫描方式:MRM;鞘气温度:300 ℃,鞘气流量:11 L/min。检测离子对、保留时间、碰撞能量等,见表1。

表1 7 种OPFRs 的质谱参数

3 结果与讨论

本研究选取不同大小的鲫鱼作为研究对象,通过上述实验步骤检测出了TCPP,TCEP,TPHP,TEP,TMP,TnBP,TPrP 7 种OPFRs。不 同 大 小 的 鲫 鱼OPFRs 浓度水平有一定差异,而且OPFRs 的浓度水平与鲫鱼大小呈正相关,OPFRs 的浓度水平随着鲫鱼体重的增加而升高,如图1 所示。

图1 鲫鱼体内OPFRs 浓度水平

总的来看,鲫鱼的肠组织部位OPFRs 浓度会随着鲫鱼的质量增加而上升,腹部和背部肌肉组织OPFRs 浓度水平随鲫鱼的质量增加而减少。就同一条鱼而言,肠组织部位的OPFRs 浓度水平要高于其他部位,其次是背部肌肉,最低是腹部肌肉,但腹部肌肉和背部肌肉含量相差不大,如图2 所示。

图2 鲫鱼各组织部位OPFRs 浓度水平

由图3 可知,7 种OPFRs 的总浓度范围为0.06~32.91 ng/g,主要污染物为TEP,TCEP。其中,TEP 的浓度水平会随着鲫鱼体重的增加而升高,其他OPFRs 则没有明显特征,可能是因为TEP 常温下较为稳定。

图3 鲫鱼在不同OPFRs 中浓度水平

如图4 所示,在鲫鱼的各个组织部位中,TEP,TCEP,TPHP,TCPP 浓度也是相对较高的,最高的为TEP,由此可见,鲫鱼体内OPFRs 生物富集最为严重的部位是肠组织。

图4 鲫鱼各组织部位在不同OPFRs 中浓度水平

4 结论与展望

研究结果表明,7 种OPFRs 在鲫鱼体内均被检测到,但浓度高低差别相当大。鲫鱼体内OPFRs 的浓度与鱼体的质量成正相关。在鱼体的不同组织部位中,肠组织部位OPFRs 浓度最高,且与鱼体质量相关,因此OPFRs 在典型鱼类鲫鱼体内有一定的生物富集作用。本文仅对典型鱼类鲫鱼进行了OPFRs研究,为增加全面性,可以增加鱼的种类和其他物种,研究OPFRs 在生物体内的分布状况,同时也可以研究OPFRs 在生物体内的代谢情况以及OPFRs通过这些生物体的富集对人类的影响。

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