鲁 彦,居 军,李德红
1.中国人民解放军96604部队医院检验科,甘肃兰州730030;2.甘肃省人民医院检验中心,甘肃兰州 730099
鲁 彦
新型冠状病毒肺炎(COVID-19)是由新型冠状病毒(SARS-CoV-2)引起的传染性极强、主要经飞沫和接触传播、不排除气溶胶和消化道传播可能的急性传染病[1-3]。COVID-19临床特征表现有发热、干咳、乏力,少数患者伴有鼻塞、流涕、咽痛、肌痛和腹泻等症状。重症患者多在发病1周后出现呼吸困难和(或)低氧血症,严重者可快速发展为急性呼吸窘迫综合征、脓毒症休克、难以纠正的代谢性酸中毒和出凝血功能障碍及多器官功能衰竭[1,3-6]。SARS-CoV-2属于β属的新型冠状病毒,有包膜,颗粒呈圆形或椭圆形,常为多形性,直径60~140 nm。SARS-CoV-2基因组的长度为29 881 nt(GenBank MN988668和MN988669,序列读取存档数据库Bioproject登录号PRJNA601736)。系统发育分析表明,SARS-CoV-2与蝙蝠冠状病毒BtCoV/4991(GenBank KP876546)的部分RdRp基因的核苷酸同源性达98.7%[1,7-8]。SARS-CoV-2基因特征与2003 年严重急性呼吸综合征病毒(SARSr-CoV)和2012年的中东呼吸综合征冠状病毒(MERSr-CoV)有明显区别[1]。确诊的患者和无症状隐性感染者是SARS-CoV-2的传染源[3-4,9]。通过流行病学特征、临床特征、影像学特点,以及反转录聚合酶链反应(RT-PCR)或基因测序检测呼吸道分泌物、支气管灌洗液、血液或者粪便标本中SARS-CoV-2核酸是确诊SARS-CoV-2的主要依据[4]。测定SARS-CoV-2核酸常用的方法有RT-PCR、基因测序、恒温扩增等,最常用的仍然是RT-PCR。不同品牌RT-PCR试剂检测SARS-CoV-2的灵敏度有区别,不同类型标本检出率不一致,对临床症状明显、影像学特点符合COVID-19,但核酸检测阴性的患者,应增加标本种类、更换试剂品牌验证SARS-CoV-2是否为阳性。鉴于目前核酸检测有一定的漏诊率,建议将核酸检测和血清学检测结合起来、增加检测标本类型,采用不同品牌试剂盒检测,可提高检测的灵敏度,减少漏检率,达到控制传染源的目的。
病毒的分离和培养是SARS-CoV-2检测的金标准。人体感染后96 h左右呼吸道上皮细胞内即可出现SARS-CoV-2,但体外分离培养需要6 d,且病毒的分离和培养对实验室要求较高,需要在P4实验室进行,绝大多数临床实验室达不到要求[10]。因此,病毒培养虽然特异度高,但对于疾病的早发现、早报告、早隔离、早治疗意义不大。RT-PCR是检测SARS-CoV-2核酸最重要的方法。目前,国内批准的PCR试剂盒扩增的靶区分别为SARS-CoV-2基因组中开放读码框1a/b(ORF1ab)、包膜蛋白(E)和核衣壳蛋白(N),见图1[11]。有的试剂盒仅针对ORF1ab靶区(华大生物),有的试剂盒针对ORF1ab、N基因两个靶区(圣湘、达安基因),有的试剂盒针对3个靶区(ORF1ab、N和E 3个区段,伯杰、捷诺、上海之江)。不同试剂盒的检测灵敏度有区别(102~103copy/mL),判读应严格按照试剂盒说明进行[12]。CORMAN等[13]建议在常规工作流程中可将E基因检测作为一线筛选工具,RdRp基因(位于ORF1ab靶区内)作为确诊工具,也可直接单独检测RdRp基因。E基因检测灵敏度高达3.2 RNA copy/反应 (95%可信区间为2.2~6.8 RNA copy/反应),RdRP基因高达3.7 RNA copy/反应( 95%可信区间为2.8~8.0 RNA copy/反应)。N基因灵敏度稍弱[13]。通过特异性的RdRP-SARSr-P2探针可以有效区分SASrCoV,有较高的特异度。通过确诊的198份标本验证,未出现假阳性[13]。CHU等[14]研究则表明检测临床标本N基因的灵敏度比ORF1ab基因高10倍,可能的原因是临床标本中的细胞被病毒感染后的亚基因组mRNA表达,导致样品中有更多的N基因拷贝。根据检测性能,建议将N基因检测作为筛选试验,ORF1ab基因检测作为确诊试验。N基因阳性/ORF1ab阴性结果应视为不确定,建议将该标本转至WHO参考实验室进行进一步检测[14]。总之,对患者标本进行核酸检测的意义重大。
注:1a/b为阅读框架1a/b;E为编码包膜蛋白的基因;S为编码刺突蛋白的基因;M为编码膜糖蛋白基因;3/6/7a/8/9b为编码辅助蛋白的基因3/6/7a/8/9b;N为核蛋白。
图1 人类SARS-CoV-2和SARSr-CoV基因组示意图[11]
1.1核酸检测是确诊和鉴别诊断SARS-CoV-2的重要依据,也是判断疗效的依据 核酸检测技术具有可早期诊断且灵敏度和特异度高等特点[15]。从《新型冠状病毒肺炎诊疗方案(试行第一版)》到《新型冠状病毒肺炎诊疗方案(试行第七版)》,均将呼吸道标本或血液标本中RT-PCR检测SARS-CoV-2核酸阳性作为重要的依据[3]。测定SARS-CoV-2核酸是与流感病毒、腺病毒、呼吸道合胞病毒感染等其他病毒感染进行鉴别诊断的重要依据。经治疗后,连续2次呼吸道病原体核酸检测阴性(间隔≥24 h)是解除隔离出院的重要依据[4]。
1.2判断病情严重程度 通过判断不同标本病毒检测结果可以判断感染范围。如咽拭子检测病毒核酸为阳性而支气管肺泡灌洗液检测病毒阴性,提示病毒感染灶可能主要限于上呼吸道,患者病情比较轻,易康复[16]。患者肺泡灌洗液中SARS-CoV-2核酸滴度高、持续高病毒载量时间长(1周以上),继发暴发性心肌炎、左室射血分数下降、心室扩大的可能性大。对下呼吸道持续高滴度病毒患者要警惕重症化,特别应警惕病程早期病毒所致的暴发性心肌炎风险[16]。血液中(血清或全血)检测SARS-CoV-2阳性提示患者病情较重,应该引起足够重视[17]。
2.1不同类型标本PCR检测SARS-CoV-2核酸的结果不一致 PCR方法灵敏度和特异度都比较高。根据《新型冠状病毒肺炎诊疗方案(试行第七版)》[4],呼吸道标本或血液标本均可用于检测SARS-CoV-2,但咽拭子、痰液、纤维支气管镜灌洗液、血液、肛门拭子、粪便标本PCR核酸检出率不一致[17-19],痰液标本、支气管镜灌洗液中病毒基因扩增曲线信号均比咽拭子强[19-20]。上述研究提示,在排除COVID-19病例或解除隔离时,单独以咽拭子SARS-CoV-2核酸检测阴性为依据需谨慎,必要时应当采集痰液等下呼吸道标本进行检测。上呼吸道标本存在漏诊的原因可能是SARS-CoV-2作用的靶点ACE2受体主要分布在肺泡Ⅱ型上皮细胞[21]。因此,下呼吸道标本阳性率高于上呼吸道;在留取上呼吸道的标本之前患者准备工作不到位(清理鼻腔、饮水等)也容易造成漏检[21]。另一项研究表明,荧光PCR检测15例确诊的COVID-19患者不同标本中的病毒核酸,其中咽拭子阳性率为53.3%,肛拭子标本阳性率为26.7%,全血标本阳性率为40.0%,血清标本阳性率为20.0%,只有2例患者咽拭子和肛拭子标本均为阳性[17],进一步提示单独检测某一种类标本中的核酸将造成一定的漏检率。
2.2不同品牌PCR试剂盒检出率有差异 有研究表明,同一患者咽拭子标本采用6种不同品牌国产PCR试剂盒检测SARS-CoV-2结果有差异,6个品牌的试剂最低检测限为500 copy/mL,检测的基因均为OFR1ab和N基因,其中3个品牌试剂检测不出OFR1ab,1个品牌试剂检测不出N基因[22]。同时,不同品牌试剂批内变异系数有差异,可能与不同品牌试剂盒引物设计不同、各位点检测灵敏度不同有关[8]。因此,对于有明显的临床症状和(或)符合COVID-19影像学表现,但核酸检测阴性的患者,可以考虑更换不同品牌的试剂盒进行检测,以增加检测的准确性,减少漏诊。
有研究表明,在感染SARS-CoV-2后第5天,IgM和IgG阳性率分别为81%、100%。抗体检测阳性率比核酸检测阳性率(咽拭子:25.0%,肛拭子:37.5%)高[17]。因此,可以考虑动态监测病毒IgM或IgG(4倍增长),作为核酸检测的补充手段。国家感染性疾病临床研究中心、深圳市第三人民医院(南方科技大学第二附属医院)、重庆医科大学联合博奥赛斯生物科技有限公司已研发出SARS-CoV-2血清学检测试剂盒,通过验证发热7~14 d的COVID-19患者有较高的临床符合率(IgM 和IgG均为 96.6%)。达安基因、珠海银科等公司已研制出检测SARS-CoV-2的化学发光免疫检测试剂盒。甘肃省医学科学研究院李克生教授团队成功研发出SARS-CoV-2抗原金标检测试剂盒,为SARS-CoV-2血清学检测奠定了技术基础。
血清学试剂盒最大的优势在于标本采集容易、标本处理和实验操作简单、测试时间短、速度快,适合用于大样本量筛查。基于金标法、ELISA法、化学发光法的血清学试剂盒各有优点。如金标法不需要特殊设备(甚至不需要离心机,将标本静置待血细胞自然沉降,血清析出就可以检测),单个标本即可检测,随时采血随时可以检测,检测的时间很短,20 min内完成检测,成本比较低,对于基层实验室初步判断是否为SARS-CoV-2感染有一定的意义;缺点是灵敏度和特异度没有ELISA法和化学发光法高。ELISA法灵敏度超过金标法,操作时间为1~2 h,能够批量测试,成本低,检测速度快,适合在基层或大中型医院使用。
鉴于目前SARS-CoV-2传染性比较强,早发现、早报告、早隔离、早治疗对于疾病的防控意义重大。核酸检测由于有一定的漏诊率,对SARS-CoV-2早发现、早隔离有一定的影响,因此,建议将血液标本抗体(抗原)检测加入相关的诊疗指南,以弥补RT-PCR核酸检测检出率比较低,容易造成漏诊的缺点。对于咽拭子RT-PCR核酸检测阴性拟作解除隔离出院的患者,可以考虑同时再采集痰液标本、肛拭子标本通过RT-PCR检测核酸,如均为阴性,再检测血清IgM抗体是否转阴,或者IgG抗体滴度是否不再增加,以作为核酸检测补充手段。
由于目前血清学检测SARS-CoV-2的研究报道非常少,因此,本文观点具有一定的局限性,有待后续全国血清学检测报道进行修订。