汾河植物体灰藜中重金属元素Cu的分布特征研究

2020-04-23 08:08李奋强
山西化工 2020年1期
关键词:电热板氧化酶金属元素

李奋强

(太原市城市排水监测站,山西 太原 0300012)

有些重金属元素是植物生长过程中所必需的微量营养元素,也有些重金属元素是植物生长过程中不需要的元素,植物吸收这些重金属元素过量后,会影响植物的生长甚至导致其萎缩致死。Cu是植物正常生命所必需的微量矿物质元素,它所参与的生命活动十分广泛。Cu是细胞色素氧化酶、多酚氧化酶、抗坏血酸氧化酶、多胺氧化酶等氧化酶和过氧化物歧化酶的组分,参与呼吸等代谢中的氧化还原反应[1-2]。

许多学者研究表明重金属元素在植物体内不断循环[3]。重金属离子进入植物根部后,一部分被贮存,一部分被转运到茎叶部分。许多实验证明重金属主要分布在植物的根部,但流动性较大的重金属元素可以通过导管向上迁移到叶片中[4]。植物吸收重金属的生理过程可能有两种方式:一种是重金属在细胞壁质外空间的吸收;另一种是重金属透过细胞质膜进入植物细胞,植物可通过根部直接吸收水溶性重金属。重金属进入根细胞质后,存在游离金属离子形态,但当细胞质中游离金属离子过多时,对细胞会产生毒害作用,干扰细胞的正常代谢。本实验选取了汾河胜利桥段的植物灰藜作为研究对象,利用火焰原子吸收分光光度法对其不同部位重金属元素Cu的含量进行了对比研究,初步探讨了重金属元素Cu在植物体内的分布特征。

1 实验部分

1.1 主要仪器及试剂

仪器:TAS-990型原子吸收分光光度计,北京普析通用仪器有限责任公司;摩尔Molelement元素型超纯水器,上海摩勒生物科技有限公司;电子天平,北京赛多利斯天平有限公司;电热板,湖北英山无线电元件厂;电热恒温干燥箱,天津市津北真空仪器厂。

试剂:实验过程中所用的HClO4,优级纯,西安化工厂;HNO3,优级纯,北京化工厂;重金属Cu标准溶液,北京有色金属研究院,质量浓度为1 000 μg/mL,使用时配制所需浓度。实验均用超纯水。

1.2 植物样品的采集及预处理

在汾河胜利桥段共选2个采样点,主要采集具有代表性的灰藜(藜科)植物,样品皆为整株采集后放入聚乙烯塑料袋中带回实验室,然后将其用自来水洗净和用去离子水冲洗后,用剪刀将植物的根(G)、茎(J)、叶(Y)分离、用搅拌粉碎机粉碎、自然风干、备用。

1.3 植物中重金属Cu的分析方法

把洗好的植物样品,将根、茎、叶、果实剪好,并自然风干后置于消化瓶中,放入烘箱中,在40 ℃下烘12 h;将烘干后的植物样品,放入密封袋中保存备用;称取(1.000±0.012)g待测样品,在通风橱内用(HNO3-HClO4)加热消解,在电热板上灼烧,然后定容到50 mL。消解方法如下:已经剪好烘干的植物样品根、茎、叶、果实,放入干燥器中冷却待用;从干燥器中取出样品,用电子天平称取(1.000±0.012)g植物样品,放入编号对应的消化瓶中;每个消化瓶中加入8 mL优级纯HNO3,盖上玻璃盖,隔夜12 h,第二天加2 mL HClO4;将加好混酸的消化瓶放在电热板上缓慢加热消化,开始有棕色气体释放,在这加热过程中来回移动消化瓶,防止消化瓶局部受热;保持微沸状态,直至冒白烟、溶液变清并近干为止。如没变清可补加适量的硝酸继续煮沸至溶液变清。将消化瓶从电热板上取下,冷却,用2% HNO3冲洗消化液,移入50 mL容量瓶中,并用2% HNO3的定容、摇匀、离心、待测。

样品采用火焰原子吸收光谱仪(TAS-990,北京普析通用仪器有限责任公司)进行测定,试验中标准溶液的配制均为分析纯。把所测得的吸光度数据进行换算为植物体中的重金属含量。工作条件如下表1所示。

表1 TAS-990原子吸收分光光度计工作条件

2 植物体内重金属的分布

利用Originpro软件绘制重金属元素的分布特征图。

植物灰藜根、茎、叶不同部位中重金属元素Cu含量的分布如图1所示。

图1 植物不同部位的Cu含量

铜元素主要以Cu2+的形式被植物吸收,当Cu浓度较高时对植物有明显的毒害作用。一般来说,植物体内铜元素的正常含量是0.4 mg/kg~45.8 mg/kg。

从图1中可以看出:

1) 从曲线变化趋势来看,采样点中的植物体根、茎、叶中Cu元素含量变化趋势大致相同,根>茎>叶;

2) Cu含量最高的是灰藜根(胜利桥东),约22.1 mg/kg左右;含量均在植物体内铜元素的正常含量范围,说明各采样点的植物没受到重金属Cu的污染。

3 结论

1) 灰藜植物体中重金属元素Cu在不同部位中的含量分布是根>茎>叶,说明植物在吸收和累积重金属元素时,其主要在根系。

2) 研究发现该河段植物体灰藜中重金属元素Cu在正常值范围之内,说明没有受到污染。

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