夏启玉 赵辉 贺萍萍 张丽丽 杨小亮 肖苏生 张雨良 郭安平
摘 要:为测定雷州杂草稻的黑色颖壳基因Bh4和红色果皮基因Rc的基因型,本研究对雷州10个杂草稻群体的100个单株的种子的颖壳和果皮颜色进行表型观察,同时通过PCR扩增及序列分析对Bh4和Rc的基因型进行鉴定。结果表明,雷州杂草稻中黑色颖壳和黄色颖壳的种子几乎各占一半,果皮颜色则以红色为主,有少量白色和浅红色果皮的种子。雷州杂草稻的Bh4和Rc的基因型与表型鉴定结果一致。57份黑色颖壳杂草稻的Bh4基因型为39个野生型和18个杂合型,25份黄色颖壳和18份黄色带黑斑颖壳杂草稻的Bh4基因型均为缺失22 bp的突变型;90份红色果皮杂草稻的Rc基因型为73个野生型和17个杂合型,4份白色和6份浅红色果皮杂草稻的Rc基因型均为缺失14 bp的突变型。本研究为分析雷州杂草稻的Bh4和Rc基因的来源提供了分子基础。
关键词:杂草稻;黑壳基因;红皮基因;基因型鉴定
中图分类号:S511 文献标识码:A
Abstract: In order to determine the genotypes of the black hull gene Bh4 and red pericarp gene Rc of weedy rice (Oryza sativa f. spontanea) in Leizhou, the color of seed hull and pericarp of 100 individual plants from 10 weedy rice populations in Leizhou were observed, and the genotypes of Bh4 and Rc genes were identified by PCR amplification and sequence analysis. The seeds of black and yellow hull accounted for nearly half respectively in weedy rice of Leizhou, and the color of the pericarp was mainly red, with a small number of white and light red pericarp seeds. The genotypes of Bh4 and Rc in weedy rice of Leizhou were consistent with those of phenotype identification. The Bh4 genotypes of 57 black hull weedy rice were 39 wild type and 18 heterozygous type, and that of 25 yellow hull and 18 yellow with black spots hull weedy rice were all 22 bp deletion mutant. The Rc genotypes of 90 red pericarp weedy rice were 73 wild type and 17 heterozygous, and that of 4 white and 6 light red pericarp weedy rice were all 14 bp deletion mutant. This study provides a molecular basis for the analysis of the origin of Bh4 and Rc genes of weedy rice in Leizhou.
Keywords: weedy rice (Oryza sativa f. spontanea); black hull gene; red pericarp gene; genotype identification
DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2020.12.005
杂草稻(Oryza sativa f. spontanea)广泛分布于世界各地的稻作产区,是一种形态上介于野生稻(Oryza rufipogon)和栽培稻(Oryza sativa)之间的稻田伴生杂草,在一些稻区已成为仅次于稗草和千金子的第三大杂草。我国自古就有杂草稻的记载,如江苏的“稆稻”“穞稻”,广东的“落禾”“野禾”,海南的“鬼禾”等。研究表明,黑色颖壳、红色果皮、易落粒等是普通野生稻的基本特征,而栽培稻主要为黄色颖壳和白色果皮,难落粒。我国杂草稻的表型丰富多样,一些杂草稻与野生稻相似,具有红色果皮、黑色颖壳等特征,部分杂草稻则具有栽培稻的黄色颖壳和白色果皮。因此,鉴定杂草稻的黑色颖壳和红色果皮的基因型对探索我国杂草稻的来源有重要的意义。
颖壳颜色是野生稻和栽培稻分化的重要表型鉴定指标之一。Maekawa[1]報道了水稻黑色颖壳性状由3对互补基因Bh-a、Bh-b和Bh-c共同调控。Gu等[2]发现了控制水稻颖壳颜色的2个QTL,位于第4染色体上的qHC4是1个主效基因,而第7染色体上的qHC7则起修饰作用。谭禄宾等[3]和邓伟等[4]以野生稻为研究材料,将黑色颖壳基因定位在第4染色体长臂端,为显性单基因控制。黄大辉等[5]发现广西普通野生稻的黑色颖壳性状也受显性单基因控制。Zhu 等[6]克隆了控制普通野生稻黑色颖壳的基因Bh4 ,栽培稻的Bh4 基因的第3外显子上有1个22 bp的缺失,导致该蛋白功能的丧失,使得颖壳变为黄色。另有研究认为水稻黑色颖壳性状受2对互补基因Bh4 和Phr1控制,只有当这2个基因都为野生型时,颖壳才表现为黑色[7-9]。
红色果皮也是普通野生稻和杂草稻的基本特征之一。水稻的红色果皮受2对互补基因Rc和Rd控制[10]。Rc是水稻果皮原花色素积累途径中的调节基因之一,是调控水稻红色果皮最重要的基因,Rc全长约6.4 kb,位于第7染色体上,编码1个具有bHLH结构域的调节蛋白[11-12]。绝大部分水稻白米品种中的Rc基因第7个外显子存在14 bp缺失(rc型),小于3%的白米品种中的Rc等位基因不存在14 bp缺失,而是第7个外显子存在1个单碱基突变(Rc-s型)。rc和Rc-s基因型的水稻因序列突变而提前终止翻译,无法产生完整的蛋白,导致花青素无法合成,从而表现为白色果皮[12-13]。
本研究根据已知的Bh4和Rc基因序列设计了针对缺失位置的特异性引物,对雷州10个杂草稻群体的100株杂草稻种子的Bh4 和Rc的基因型进行了鉴定,探索雷州杂草稻Bh4和Rc基因的来源。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 材料 杂草稻种子来自广东雷州市杂草稻发生严重的10块稻田(1:调风镇;2:雷高镇;3:雷高镇;4:南兴镇;5:南兴镇;6:南兴镇;7:唐家镇;8:唐家镇;9:松竹镇;10:北和镇),每个稻田10个单株,每株1个单穗,共100份杂草稻种子[14]。
1.1.2 試剂 植物基因组DNA提取试剂盒和PCR产物回收试剂盒购自天根生化科技有限公司,PrimeSTAR? Max DNA Polymerase购自TaKaRa公司,引物合成及测序由上海英骏生物技术有限公司完成,其他试剂均为国产分析纯。
1.2 方法
1.2.1 杂草稻种子颖壳和果皮颜色的表型鉴定 取100份杂草稻的种子,手工剥壳,对种子的颖壳颜色和果皮颜色进行表型观察。
1.2.2 DNA提取 由于杂草稻有一定的异交率,种子的基因型可能与母本的基因型不一致,因此本研究取颖壳用于DNA提取。取6~10粒种子的颖壳,用液氮研磨,采用植物基因组提取试剂盒进行DNA提取,DNA的浓度与质量采用NanoDrop 2000超微量紫外分光光度计测定,浓度为10 ng/μL以上,且OD260/OD280值在1.7~1.9之间的DNA样品可作为后续PCR的模板,否则重新提取。并于–20 ℃保存备用。
1.2.3 引物设计、PCR扩增及序列分析 从NCBI(national center for biotechnology information)数据库中下载普通野生稻‘W1943的Bh4基因(GenBank:FQ377546)和普通野生稻‘IRGC105491的Rc基因(GenBank:DQ204737)的序列,分别选取Bh4和Rc基因的缺失突变位点两侧150~500 bp范围内的序列设计引物,PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳检测条带亮度和特异性,分别筛选出1对扩增效率高且特异性好的引物。引物名称、序列及预期片段大小见表1。
PCR扩增使用PrimeSTAR? Max DNA Polymerase,反应体系包括:PrimeSTAR Max Premix 12.5 μL,引物(10 μmol/L)各1 μL,模板DNA 1 μL,加灭菌水至25 μL。反应条件为:95 ℃预变性5 min;98 ℃ 10 s,55 ℃ 15 s,72 ℃ 30 s,共35个循环;72 ℃延伸7 min。PCR产物在2%的琼脂糖凝胶上电泳检测,产物回收后送上海英骏生物技术有限公司测序。Bh4基因的PCR产物用引物Bh4D-R7进行反向测序,Rc基因的PCR产物用引物RcD-F1进行正向测序,通过测序峰图来判断序列是否存在双峰,并将测序结果与Bh4和Rc的序列进行BLAST比对分析,查看目标序列是否存在缺失,序列比对使用的软件为DNAMAN。
2 结果与分析
2.1 种子颖壳和果皮颜色的表型鉴定
取雷州的100份杂草稻的种子,观察记录颖壳颜色,手工剥壳观察果皮颜色。雷州杂草稻种子的表型丰富多样,颖壳颜色可分为:黑色、黄色和黄色带黑斑;果皮颜色可分为红色、浅红色和白色(图1)。在这100份杂草稻中,黑色颖壳的有57份,黄色颖壳的有25份,黄色带黑斑颖壳的有18份;红色果皮的有90份,浅红色果皮的有6份,白色果皮的有4份。而在57份黑色颖壳的种子中,有49份为红色果皮,5份为浅红色果皮,3份为白色果皮;在25份黄色颖壳的种子中,有23份为红色果皮,浅红色果皮和白色果皮各有1份;而18份黄色带黑斑颖壳的种子均为红色果皮。由此可见,雷州的黑色颖壳和黄色颖壳的杂草稻几乎各占一半,以红色果皮的杂草稻为主。
将雷州杂草稻的颖壳和果皮颜色的表型按群体来分类,发现雷州的10个杂草稻群体中,有7个群体以黑色颖壳表型为主,黑色颖壳的杂草稻数量>60%,分别是群体1~4和群体7~9;剩下3个群体则以黄色颖壳(含黄色带黑斑)为主,黄色颖壳的杂草稻数量>80%。雷州的杂草稻群体都是以红色果皮表型为主,每个群体的红色果皮杂草稻数量均>60%。群体2和3中有白色果皮,群体2、6、7和9中有浅红色果皮,其中群体2既有白色果皮也有浅红色果皮。
2.2 Bh4基因型的鉴定
将Bh4基因的PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳进行检测,由于PCR产物较小,通过条带大小可初步判断出目标基因为野生型(Bh4)或突变型(bh4:缺失22 bp),但杂合型(Bh4/bh4)的判断有一定难度。将PCR产物回收,送上海英骏生物技术有限公司测序,得到约160 bp/140 bp左右的核苷酸片段序列。查看测序峰图,发现部分序列约110 bp处存在后双峰,说明存在杂合型Bh4/bh4。查看这100份杂草稻Bh4基因的测序峰图,发现杂合型的有18个。将测序峰图无双峰的序列与野生稻‘W1943的Bh4序列进行比对,发现野生型Bh4有39个,突变型bh4有43个,与PCR产物的琼脂糖凝胶电泳的判断结果一致。雷州的100份杂草稻中,野生型Bh4基因的比例为39%,突变型bh4基因的比例为43%,杂合型Bh4/bh4基因的比例为18%。
2.3 Rc基因型的鉴定
将Rc基因的PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳进行检测,通过条带大小难以判断出目标基因为野生型(Rc)或突变型(rc:缺失14 bp)。将PCR产物回收,送上海英骏生物技术有限公司测序,得到约260 bp/245 bp左右的核苷酸片段序列。查看测序峰图,也发现部分序列约180 bp处存在后双峰,说明存在杂合型Rc/rc。查看这100份杂草稻Rc基因的测序峰图,发现杂合型的有17个。将测序峰图无双峰的序列与普通野生稻‘IRGC105491的Rc序列进行比对,发现野生型Rc有73个,突变型rc有10个。雷州的100份杂草稻中,野生型Rc基因的比例为73%,突变型rc基因的比例为10%,杂合型Rc/rc基因的比例为17%。
2.4 杂草稻种子表型与Bh4和Rc基因型的比对分析
将雷州杂草稻群体的颖壳和果皮颜色与其基因型进行比对分析(表2),发现Bh4和Rc基因的杂合型分别表现为黑色颖壳和红色果皮,说明这2个基因均为显性基因,且18个Bh4杂合型的杂草稻和17个Rc杂合型的杂草稻中有9个相同。
从颖壳和果皮颜色的表型与基因型的比对可知,雷州10个杂草稻群体的颖壳颜色和果皮颜色的表型与基因型是一致的。黑色穎壳杂草稻的Bh4为野生型和杂合型,黄色和黄色带黑斑颖壳杂草稻的Bh4均为突变型,说明黑斑可能为病斑或其它因素造成的。红色果皮杂草稻的Rc为野生型和杂合型,白色和浅红色果皮杂草稻的Rc均为缺失14 bp的突变型,且测序的序列中无其他碱基突变。前人研究报道了1个浅红色果皮的Aus栽培稻,为Rc-S基因型[13],本研究中的浅红色果皮的杂草稻却为rc基因型,推测可能是因为其Rc基因有其他的碱基突变,或者存在另外的控制果皮颜色的基因在起作用。
3 讨论
3.1 水稻黑色颖壳基因Bh4
黑色颖壳是野生稻普遍的性状之一,现在种植的栽培稻主要为黄色颖壳。控制水稻黑色颖壳的基因已经定位到第4染色体上的Bh4,绝大部分黄色颖壳栽培稻的Bh4基因含有22 bp的缺失,此外,Bh4还有2种突变型也表现为黄色颖壳,Bh4基因的多种突变方式说明黄色颖壳可能存在多种起源[6]。研究还发现非洲黄色颖壳水稻的Bh4基因有3种不同于亚洲水稻的突变型[16]。
本研究中,雷州杂草稻的颖壳颜色的表型与Bh4基因型完全一致。黑色颖壳的杂草稻有57份,对应的Bh4为39份野生型和18份杂合型,对其中的1份黑色颖壳杂草稻的Bh4全基因进行了测序(数据未显示),发现其与野生稻‘W1943的Bh4基因序列完全一致,说明雷州杂草稻的野生型Bh4基因很可能来源于野生稻。黄色颖壳(含黄色带黑斑)表型的杂草稻有43份,对应的Bh4的基因型均为缺失22 bp的突变型,不存在其他2种突变型,说明雷州杂草稻的Bh4突变型基因可能有相同的栽培稻来源。雷州的Bh4基因的野生型和突变型杂草稻几乎各占一半,但突变型Bh4基因的杂草稻主要集中在3个群体中,说明雷州10个群体的杂草稻的来源可能并不完全相同。
一些研究认为水稻的落粒性状与黑色颖壳性状是连锁遗传的[6, 17]。Bh4基因与水稻落粒主效基因sh4均位于第4染色体上,结合雷州杂草稻的sh4基因型[14]发现,雷州杂草稻中,除了Bh4和sh4都为野生型或都为突变型的杂草稻外,既有Bh4野生型和sh4突变型的杂草稻,也有Bh4突变型和sh4野生型的杂草稻,因此,推测Bh4和sh4基因是不完全连锁遗传的。
3.2 水稻红色果皮基因Rc
红色果皮也是野生稻显著的特征之一。rc和Rc-s为目前亚洲栽培稻种的驯化等位基因类型,绝大部分亚洲水稻白米品种为rc型[13],非洲白色果皮栽培稻的Rc基因为rc-g1型[18]。还有2种rc基因的回复突变类型Rc-g和Rcr,恢复了红色果皮表型[19-20]。此外,杨行海等[21]发现2个红米稻的Rc为不同于以上类型的自然回复突变型。
国内外学者对杂草稻的Rc的基因型进行了研究。Gross等[22]对Rc基因测序发现,美国杂草稻为Rc野生型,与Aus水稻和普通野生稻亲缘关系更近。Cui 等[23]研究发现,马来西亚杂草稻的Rc单倍型可能至少有3个不同的来源:红色果皮野生稻、红色和白色果皮栽培稻。李潇艳[15]研究发现,江苏省红色果皮杂草稻Rc均为野生型,系统进化树分析表明江苏杂草稻最接近普通野生稻,其次是红色果皮栽培稻;而我国白色果皮杂草稻则来源于当地栽培稻与杂草稻的基因交流。张树林等[24]对Rc基因研究发现,红色果皮杂草稻的Rc均为野生型,在粳稻区,白色果皮杂草稻可能由栽培稻退化返祖形成;在籼稻区,红色果皮杂草稻可能由栽培稻之间或与野生稻杂交演化而来。
本研究中,雷州杂草稻的果皮颜色的表型与Rc基因型基本一致。红色果皮杂草稻有90份,对应的Rc为73份野生型和17份杂合型,说明雷州杂草稻中Rc基因主要为野生型,可能来源于野生稻或红色果皮栽培稻。白色/浅红色果皮杂草稻有10份,对应的Rc基因型均为缺失14 bp的突变型(rc),无其他Rc基因型,说明雷州杂草稻中的突变型rc基因可能有相同的栽培稻来源。
3.3 雷州杂草稻的来源分析
杂草稻的许多性状均介于栽培稻和野生稻之间,这3个物种在进化上有密切的关联。不同地区的杂草稻很可能有着不同的来源,一些研究表明我国杂草稻可能起源于籼梗杂交或栽培稻的去驯化[25-29],而Sun等[30]研究发现亚洲高纬度地区的杂草稻起源于栽培稻的遗传改良阶段,即处于半驯化状态。研究认为美国南部杂草稻有2种起源,一种为亚洲起源,起源于野生稻和栽培稻的杂交或Aus稻的去驯化;另一种为美国起源,来源于美国杂草稻之间或与栽培稻之间的杂交[31]。
本研究中,根据Bh4和Rc基因型来推测,雷州杂草稻的野生型Bh4来源于野生稻,野生型Rc来源于野生稻或红色果皮栽培稻,突变型Bh4和Rc则来源于栽培稻。因此,雷州杂草稻中具有野生型基因(Bh4、Rc和sh4)的杂草稻可能来源于野生稻,可能是野生稻入侵农田,或野生稻的基因渐渗入当地杂草稻,或野生稻與栽培稻的杂交后代。而具有突变型基因(Bh4、Rc和sh4)的杂草稻可能是栽培稻的去驯化或籼梗杂交后代,或者是栽培稻驯化基因渐渗入野生型基因杂草稻的后代。此外,雷州杂草稻中杂合型的Bh4、Rc和sh4的比例分别为18%、17%和15%[14],说明雷州杂草稻之间或杂草稻与栽培稻之间有一定程度的基因交流,从而导致各种杂合性状的杂草稻的产生,使得雷州杂草稻的表型丰富多样。
参考文献
Maekawa M. Geographical distribution of the genes for black hull coloration[J]. Rice Genetics Newsletter, 1984(1) : 104-106.
Gu X Y, Kianian S F, Hareland G A, et al. Genetic analysis of adaptive syndromes interrelated with seed dormancy in weedy rice (Oryza sativa)[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2005, 110(6): 1108-1118.
谭禄宾. 云南元江普通野生稻渗入系的构建及野栽分化性状的基因定位[D]. 北京: 中国农业大学, 2004.
邓 伟, 周家武, 李 静, 等. 长雄野生稻黑壳基因的分子定位及遗传研究[J]. 西南师范大学学报(自然科学版), 2010, 35(3): 186-190.
黄大辉, 刘 驰, 马增风, 等. 普通野生稻黑颖壳遗传分析及育种利用初探[J]. 西南农业学报, 2013, 26(3): 839-842.
Zhu B F, Si L Z, Wang Z X, et al. Genetic control of a transition from black to straw-white seed hull in rice domestica tion[J]. Plant Physiology, 2011, 155(3): 1301 -1311.
Kuriyama H, Kudo M. Complementary genes Ph and Bh controlling ripening black coloration of rice hulls and their geographical distribution[J]. Japanese Journal of Breeding, 1967, 17(1): 13-19.
Yu Y C, Tang T, Qian Q, et al. Independent losses of function in a polyphenol oxidase in rice: Differentiation in grain discoloration between subspecies and the role of positive selection under domestication[J]. The Plant Cell, 2008, 20(11): 2946-2959.
Fukuda A, Shimizu H, Shiratsuchi H, et al. Complementary genes that cause black ripening hulls in F1 plants of crosses between Indica and Japonica rice cultivars[J]. Plant Production Science, 2012, 15(4): 270-273.
Nagao S, Takahashi M. Genetieal studies on rice plant, XXVII: Trial construction of twelve linkage groups in Japanese rice[J]. Journal of the Faculty of Agriculture, Hokkaido University, 1963, 53(1): 72-130.
Furukawa T, Maekawa M, Oki T, et al. The Rc and Rd genes are involved in proanthocyanidin synthesis in rice pericarp[J]. Plant Journal, 2007, 49(1): 91-102.
Sweeney M T, Thomson M J, Pfeil B E, et al. Caught red-handed: Rc encodes a basic helix-loop-helix protein conditioning red pericarp in rice[J]. Plant Cell, 2006, 18(2): 283-294.
Sweeney M T, Thomson M J, Cho Y G, et al. Global dissemination of a single mutation conferring white pericarp in rice[J]. Plos Genetics, 2007, 3(8): 121-133.
夏启玉, 曹 扬, 孔 华, 等. 广东雷州杂草稻sh4和qSH1基因的功能SNP位点序列分析[J]. 热带作物学报, 2020, 41(1): 104-109.
李潇艳. 中国杂草稻果皮色Rc基因位点的等位基因类型分析[D]. 南京: 南京农业大学, 2013.
Vigueira C C, Li W, Olsen K M. The role of Bh4 in parallel evolution of hull colour in domesticated and weedy rice[J]. Journal of Evolutionary Biology, 2013, 26 (8): 1738-1749.
張 玲. 水稻紫黑色颖壳Pbh基因的遗传分析与克隆[D]. 北京: 中国农业科学院, 2011.
Gross B L, Steffen F T, Olsen K M. The molecular basis of white pericarps in African domesticated rice: Novel muta tions at the Rc gene[J]. Journal of Evolutionary Biology, 2010, 23(12): 2747-2753.
Brooks S A, Yan W, Jackson A K, et al. A natural mutation in rc reverts white-rice-pericarp to red and results in a new,dominant, wild-type allele: Rc-g[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2008, 117(4): 575-580.
Lee D, Lupotto E, Powell W. G-string slippage turns white rice red[J]. Genome, 2009, 52(5): 490-495.
杨行海, 农保选, 夏秀忠, 等. 广西地方稻种资源核心种质红色种皮全基因组关联分析及鉴定两个新的Rc等位基因[J]. 分子植物育种, 2017, 15(1): 1-6.
Cui Y X, Song B K, Li L F, et al. Little white lies: Pericarp color provides insights into the origins and evolution of southeast Asian weedy rice[J]. G3-Genes Genomes Genetics, 2016, 6(12): 4105-4114.
Gross B L, Reagon M, Hsu S C, et al. Seeing red: The origin of grain pigmentation in US weedy rice[J]. Molecular Ecology,2010, 19(16): 3380-3393.
张树林, 李 娟, 董陈文华, 等. 亚洲杂草稻红色果皮分子鉴定及其Rc-bHLH序列多态性分析[J]. 分子植物育种, 2015, 13(16): 51-60.
Qiu J, Zhu J W, Fu F, et al. Genome re-sequencing suggested a weedy rice origin from domesticated indica-japonica hybridization: A case study from southern China[J]. Planta, 2014, 240(6): 1353-1363.
邵 菁, 戴伟民, 张连举, 等. 江苏省中部地区杂草稻遗传多样性及其起源分析[J]. 作物学报, 2011, 37(8): 1324- 1332.
马殿荣, 马 巍, 唐 亮, 等. 吉林省杂草稻遗传多样性及起源的研究[J]. 沈阳农业大学学报, 2012, 43(3): 265-272.
Qiu J, Zhou Y J, Mao L F, et al. Genomic variation associated with local adaptation of weedy rice during de-domesti cation[J]. Nature Communications, 2017, 8: 15 323.
Liu P, Cai X X, Lu B R. Single-seeded InDel fingerprints in rice: An effective tool for indica-japonica rice classification and evolutionary studies[J]. Journal of Systematics and Evolution, 2012, 50(1): 1-11.
Sun J, Ma D R, Tang L, et al. Population genomic analysis and de novo assembly reveal the origin of weedy rice as an evolutionary game[J]. Molecular Plant, 2019, 12(5): 632- 647.
Londo J P, Schaal B A. Origins and population genetics of weedy red rice in the USA[J]. Molecular Ecology, 2007, 16(21): 4523-4535.