冻存器官和甲醛固定石蜡包埋组织中RNA的定量表达

2019-09-19 01:02吕叶辉黎世莹李志宏陶瑞旸邵煜胡茜杨智昉陈忆九
法医学杂志 2019年4期
关键词:内参脑组织定量

吕叶辉 ,黎世莹 ,李志宏 ,陶瑞旸 ,3,邵煜 ,胡茜 ,杨智昉 ,陈忆九 ,3

(1.上海健康医学院基础医学院,上海 201318;2.司法鉴定科学研究院 上海市法医学重点实验室 上海市司法鉴定专业技术服务平台,上海 200063;3.四川大学华西基础医学与法医学院,四川 成都 610065)

随着生物医学的不断发展及学科融合,核糖核酸(ribonucleic acid,RNA)这一生物大分子在死亡时间(postmortem interval,PMI)推断、死亡原因分析、不同体液鉴定等方面的相关研究日益深入,已成为法医学研究焦点之一[1-3]。与信使RNA(messenger RNA,mRNA)相比,非编码RNA(non-coding RNA,ncRNA)不编码蛋白质,如微小RNA(microRNA,miRNA),其长度只有18~24 nt,在生物体内广泛存在,表达具有组织特异性和高度稳定性,是法医学研究理想的分子标志物[4-5]。

与冻存组织相比,甲醛固定石蜡包埋(formaldehyde-fixed and paraffin-embedded,FFPE)组织能保存多年,是法医病理学实践和回顾性研究中最常使用的样本。随着RNA提取技术的进步,已有研究[6-8]证实在FFPE样本中可提取到一定质量的RNA,并用于下游定量分析。但是,现有研究的FFPE样本主要集中在医院手术取材病理组织,缺乏法医学尸检来源FFPE样本中RNA提取及定量研究的相关报道。因此,本研究以不同PMI的人体组织为研究材料,定量检测管家基因mRNA、miRNA等多种RNA在同一组织冻存样本及FFPE样本中的表达情况。

1 材料与方法

1.1 主要仪器与试剂

9700型PCR仪、7500型实时荧光定量PCR仪(美国AB公司),NanoDrop 2000分光光度计(美国Thermo Fisher Scientific公司),2100生物分析仪(美国Agilent公司)。

RNAlater保护液(日本TaKaRa公司),TRIzolTMPlus RNA Purification试剂盒(美国Invitrogen公司),RNeasy FFPE试剂盒、miScriptⅡ RT试剂盒、Quanti-Nova SYBR Green PCR试剂盒(德国Qiagen公司),焦碳酸二乙酯(diethyl pyrocarbonate,DEPC)水。

1.2 样本收集及总RNA提取

选取4例上海市公安局物证鉴定中心的检案案例,每例均有详细的卷宗记录,编号为1、2、3和4,PMI分别为6h、17h、45h及70h。死者尸体解剖前未经冻融过程,解剖时取脑组织(左额叶皮质)、心肌组织(心尖)及肝组织(左叶),一部分保存在RNAlater保护液中后置于-80℃冻存备用,另一部分进行常规10%甲醛固定(固定时间为20h)、石蜡包埋处理后常规保存备用。本研究方案及样本取材通过伦理委员会审查,并均获得家属知情同意。对于冻存样本,精确称取50g组织按照试剂盒说明书提取总RNA并去除基因组DNA(genomic DNA,gDNA);对于FFPE样本,保存1年后进行6 μm连续厚切片,每5片放入DEPC水灭菌的微量离心管后,使用RNeasy FFPE试剂盒提取总RNA并去除gDNA。使用NanoDrop 2000分光光度计测定RNA质量浓度及纯度,分别用ng/μL及260nm和280nm波长下的光密度比值(D260/D280)表示。使用2100生物分析仪测定RNA完整性,用RNA完整性指数(RNA integrity number,RIN)表示,10为RNA完整性最好,0为最差。

1.3 指标选择

本研究选择4种ncRNA作为指标,分别为脑组织特异性微小RNA-125b(microRNA-125b,miR-125b)、心肌组织特异性微小RNA-1(miR-1)、肝组织特异性微小RNA-122(miR-122)及5S核糖体RNA(5S ribosomal RNA,5S rRNA)。上述指标的下游引物为通用特异性引物(miScript primer),上游引物(5′→3′)分别为:miR-125b,TCCCTGAGACCCTAACTTGTGA;miR-1,TGGAATGTAAAGAAGTATGTAT;miR-122,TGGAG TGTGACAATGGTGTTTG;5S rRNA,TCTCGTCTGAT CTCGGAAGC。此外,选择管家基因甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)及β-肌动蛋白(β-actin,ACTB),并根据文献[9-10]或设计不同产物长度的引物(较长的用“-L”标识,较短的用“-S”标识),具体如下:GAPDH前引物为共用的CCACATCGCTCAGACACCAT,GAPDHL(323 bp)后 引 物 为 AAGACGCCAGTGGACTCCA,GAPDH-S(71bp)后引物为ACCAGGCGCCCAATACG;ACTB前引物为共用的GCATGGGTCAGAAGGATTCC,ACTB-L(276 bp)后引物为 TGGATAGCAACGTACA TGGC,ACTB-S(58 bp)后引物为 AGGATGCCTCTCT TGCTCTG。

1.4 实时荧光定量反转录聚合酶链反应与标准曲线制备

实时荧光定量反转录聚合酶链反应(reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR):按照说明书,使用miScriptⅡ RT试剂盒对总RNA进行反转录(reverse transcription,RT),合成的互补DNA(complementary DNA,cDNA)置于-20℃备用;使用QuantiNova SYBR Green PCR试剂盒进行实时荧光定量PCR,按照试剂盒说明书配制20μL反应体系,并应用7500型实时荧光定量PCR仪进行扩增。每个样本重复3次,结果由系统自动生成,从而得到各RNA指标的循环阈值(cycle threshold,Ct)。

标准曲线制备:分别将4例冻存或FFPE混合样本的cDNA进行10倍连续梯度稀释后作为制备标准曲线的cDNA模板,进行上述qPCR反应并绘制标准曲线。标准曲线的主要参数包括斜率(k)、截距(b)及决定系数(R2),并通过公式E=(10-1/k-1)×100%计算样本的扩增效率(E)。

1.5 统计学分析

运用RefFinder工具[11]对各指标的Ct值进行统计学处理,筛选内参指标,并对其他RNA指标进行内参标准化处理(ΔCt=Ct指标-Ct内参)后,运用2-ΔΔCt法分析各指标的表达情况,使用SPSS 22.0软件对D260/D280、RIN及扩增效率进行统计分析,采用t检验和Pearson相关分析,检验水准α=0.05。

2 结 果

2.1 RNA质量浓度、纯度和完整性

两种样本提取所得的总RNA均经NanoDrop 2000分光光度计测量质量浓度和纯度,结果如下。在冻存样本中,脑组织所提取的RNA质量浓度为608ng/μL,心肌组织为 449 ng/μL,肝组织为 839 ng/μL,均高于FFPE样本所提取的RNA质量浓度[208 ng/μL(脑组织)、132ng/μL(心肌组织)及342ng/μL(肝组织),P<0.05]。大部分样本RNA的D260/D280值在1.7~2.0,两种样本间差异无统计学意义(P>0.05),表明所提取的RNA纯度均较高。

每例样本均检测其RIN,结果如图1所示。各组织冻存样本的RIN值与PMI(6h、17h、45h及70h)有关,随着PMI延长逐渐降低。各组织冻存样本的RIN值均明显高于同一组织FFPE样本的RIN值,表明经甲醛固定石蜡包埋处理后,RNA的完整性显著下降。

图1 案例1~4中各组织样本的RIN

2.2 RT-qPCR及扩增效率

在所有组织冻存样本中,对各RNA指标均进行RT-qPCR扩增并获得Ct值,观测其扩增曲线及溶解曲线,扩增曲线为标准“S”形曲线,溶解曲线呈单峰,且多样本重合度高,表明各样本RNA指标均成功特异性扩增。在FFPE样本中,总RNA亦均成功反转录并进行RT-qPCR定量,除GAPDH-L和ACTB-L在部分FFPE样本(3号案例的肝组织及4号案例的3种组织)中Ct值超过检测阈值,其余RNA指标均成功特异性扩增。

扩增效率计算使用标准曲线法,以冻存脑组织miR-125b为例,标准曲线如图2所示,k=-3.349,即miR-125b的扩增效率为98.9%。各RNA指标在不同样本中的平均扩增效率如图3所示。在冻存样本中,各指标的扩增效率都接近理想扩增效率(90%~110%)。在FFPE样本中,组织特异性miRNA和5S rRNA的扩增效率较高,与冻存样本类似;而管家基因mRNA的扩增效率与产物长度有关,GAPDH-S和ACTB-S的扩增效率较为理想,但GAPDH-L和ACTB-L扩增效率较差。

图2 冻存脑组织miR-125b的标准曲线

图3 各指标的扩增效率

2.3 内参指标筛选

在各组织样本中选取理想扩增效率的RNA指标作为候选内参指标,分别为:miR-125b、5S rRNA、GAPDH-S及 ACTB-S(脑组织);miR-1、5S rRNA、GAPDH-S及 ACTB-S(心肌组织);miR-122、5S rRNA、GAPDH-S及ACTB-S(肝组织)。运用Ref-Finder软件对上述指标的Ct值进行统计学分析,得到各指标的综合稳定度排序为:脑组织中,ACTB-S>5S rRNA>miR-125b>GAPDH-S;心肌组织中,5S rRNA>ACTB-S>miR-1>GAPDH-S;肝组织中,5S rRNA>miR-122>GAPDH-S>ACTB-S。其中,5S rRNA在各组织中稳定性都相对较高,故选为本研究内参指标。

2.4 定量表达情况分析

对各RNA指标Ct值进行内参标准化处理(ΔCt=Ct指标-Ct5SrRNA),并以1号冻存样本(PMI为6 h)为对照,运用2-ΔΔCt法计算各指标在冻存样本和FFPE样本中的相对表达量。以脑组织ACTB-S为例,其在不同样本中的相对表达量如图4所示,结果表明,同一组织冻存样本和FFPE样本中ACTB-S的相对表达量高度相关(r=0.945,P<0.05),证实其在FFPE样本中能有效扩增,且其平均相对表达量(0.721±0.239)与冻存样本(0.795±0.232)相比,差异无统计学意义(P>0.05)。

图4 ACTB-S在脑组织冻存和FFPE样本中的表达情况

相应的,各RNA指标在各组织冻存和FFPE样本中的平均相对表达量如图5所示。

在各组织冻存样本中(特别是肝组织),GAPDHL和ACTB-L的相对表达量均略低于其对应的短扩增产物的GAPDH-S和ACTB-S,进一步证实随PMI延长RNA降解增加、完整性下降。在FFPE样本中,GAPDH-L和ACTB-L的相对表达量较冻存样本显著下降,表明经FFPE处理后RNA降解明显;但是扩增产物较短的GAPDH-S、ACTB-S及各组织特异性miRNA(miR-125b、miR-1和miR-122)的表达情况与冻存样本相比下降不明显。

图5 各RNA指标在冻存和FFPE样本中的相对表达量

3 讨 论

FFPE组织样本是法医病理学研究和实践中重要的材料来源,具有来源充足、可长期保存、疾病类型较多、病理信息丰富等优势。近年来,RNA(特别是小分子miRNA)在死亡原因分析、PMI推断及损伤时间推断等方面的作用也受到法医学者的重视,因此,如能在FFPE样本中提取到高质量的RNA,并准确定量及获取相关基因表达信息,对于上述研究具有重要的科研价值。近年来,随着RNA提取技术的进步和商业化试剂盒的更新,已有研究[12]证实在FFPE样本中可有效提取RNA,并能通过RT-qPCR技术检测各类RNA的表达情况,甚至还可进行高通量分析。此外,法医学尸检组织均经过一定的PMI,而PMI对新鲜(冻存)组织及其对应FFPE样本的影响也值得探究。已有研究[8,13]证实,FFPE样本中RNA的质量与甲醛固定时间和样本保存时间有关,因此,为了对比不同PMI的冻存及同一组织FFPE样本中RNA的质量,并分析管家基因mRNA及ncRNA的定量表达情况,本研究中各样本固定时间与保存时间均是一致的。

提取所得总RNA的质量检测一般分为浓度、纯度与完整性3项。与前期多数研究[14-15]一致,在FFPE样本中提取所得到的RNA浓度低于对应冻存样本,但可满足后续实验用量。纯度分析结果表明,从所有样本中提取得到的RNA纯度均较高,可用于下游反转录及RT-qPCR实验。完整性分析采用RIN表示,在冻存样本中,RIN值随PMI延长而下降,证实RNA随PMI延长会发生不同程度的降解,导致完整性下降。此外,同一案例中,心肌、脑组织的RIN值均高于肝组织,表明肝组织中RNA较易降解,与前期研究[16]结果一致。与冻存样本相比,FFPE样本RNA的完整性相对较低,表明RNA均发生不同程度降解导致完整性下降,分析与甲醛引起RNA与蛋白质交联及化学修饰有关[17-18]。因此,运用RT-qPCR对FFPE样本中各RNA指标进行定量分析时,一定要按照标准的流程进行。

本研究RT-qPCR实验严格按照MIQE指南[19](Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments)进行,包括标准化的RNA提取、gDNA去除、选取同样量的RNA进行反转录、标准曲线和溶解曲线检验引物特异性、定量PCR反应3次重复、建立标准曲线计算扩增效率及筛选内参指标等,确保定量结果的准确性和可重复性。为了更好地分析mRNA和ncRNA在FFPE样本中的表达情况,除常用管家基因GAPDH和ACTB外,本研究还选择了3种分别在脑、心肌及肝组织中特异性表达的miRNA及常用的内参指标5S rRNA,上述指标均具有一定的代表性。此外,本研究还对管家基因mRNA指标设计了不同扩增片段的引物,以进一步探究各组织样本中RNA的降解程度及产物长度对定量结果的影响。

RT-qPCR结果表明,除GAPDH-L和ACTB-L在PMI较长(45h及70h)的FFPE样本中未检出外,其余RNA指标均成功扩增并获得Ct值,但是不同RNA指标的扩增效率在冻存样本和FFPE样本中有差异。冻存样本中各RNA指标的扩增效率都较为理想,而FFPE样本中GAPDH-L和ACTB-L的扩增效率较差,这一方面与PCR受到抑制有关[15,20],另一方面也表明FFPE样本中RNA发生了不同程度的碎片化,片段较小的miRNA及产物长度较短的mRNA指标可有效扩增[9,21]。

RT-qPCR定量分析结果的可靠性与内参指标密切相关,为了筛选出在所有样本均能稳定表达的内参指标,本研究运用能综合分析的RefFinder工具进行筛选,结果表明5S rRNA在所有样本中综合稳定度最高,其表达水平也与各因素无关,是理想的内参指标。之后,对各候选RNA指标进行内参标准化处理,以准确定量各指标在冻存样本和FFPE样本中的表达水平。研究发现,各指标表达情况与其扩增效率有一致性,扩增效率接近理想的RNA指标,其定量结果在两组样本中也高度相关(如脑组织的ACTB-S,r=0.945)。与国内外研究结果[14-15,22]一致,扩增产物较长的管家基因GAPDH-L和ACTB-L在FFPE样本中的表达量显著降低,表明FFPE样本中长链线性RNA的碎片化是不可避免的;而扩增产物较短的mRNA指标(GAPDH-S和ACTB-S)及小分子miRNA,相对不受PMI及FFPE处理的影响,在两组样本中表达具有一致性。

综上所述,尽管FFPE组织样本中的RNA会发生不同程度的降解和碎片化,但通过标准化的RT-qPCR、选取合适的RNA指标及设计合适产物长度的引物,可有效地在组织样本中对管家基因RNA和miRNA进行准确定量,并能在一定程度上反映相关基因的真实表达水平。在后续研究中,本课题组将进一步扩大样本量及扩充指标选择范围,并探讨不同固定时间及保存条件下FFPE样本中RNA的质量及定量表达水平。

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