猪繁殖与呼吸综合征病毒、圆环病毒2型和衣原体混合感染引起母猪流产的诊断与防治

康新华，张 辉，张维新，滚双宝，郭慧琳，韩庆彦

（1.甘肃省动物疫病预防控制中心，甘肃兰州 730046；2.通渭县什川镇畜牧兽医站，甘肃通渭 743308；3.甘肃农业大学，甘肃兰州 730070）

猪繁殖与呼吸综合征（porcine reproductive and respiratory syndrome，PRRS）俗称蓝耳病，是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（porcine reproductive and respiratory syndrome virus，PRRSV） 引 起的，以母猪繁殖障碍和仔猪肺炎为主要特征的疾病。PRRSV具有高变异性和免疫抑制性，给养猪业带来巨大困扰。猪圆环病毒 2型（porcine circovirus type 2，PCV2）在我国流行广泛，可造成猪的多种病变和综合征，临床上常与其他病原形成混合感染。

衣原体病（chlamydiosis）是由衣原体（Chlamydia）引起的一种接触性人兽共患传染病。猪衣原体有2个属4个种，只感染猪。猪感染衣原体后多发生结膜炎、肺炎、脑炎、多发性关节炎等症状，母猪感染后主要表现流产，且多发于初产母猪，而经产母猪孕初期无异常，后期多发生流产、早产，产死胎、木乃伊胎和弱仔，所产弱仔一般在出生数天后死亡。衣原体能以原生小体的形式在环境中存活很长时间，并能够抵御干燥。在猪场内活动的啮齿类动物、鸟类以及禽类等都可能成为本病的自然散毒者。猪衣原体感染病猪的部分临床症状与猪瘟、乙型脑炎、伪狂犬病等疫病相似[1]。

本研究就甘肃省某规模场一起PRRSV、PCV2和猪衣原体混合感染引起的母猪流产进行了诊断，并简述了多种疫病混合感染的防治。

1 发病情况

2018年10月1日起，甘肃省某存栏900头母猪的规模场，每天有1～2头母猪流产，5—8日，每天的流产数量增至3～4头，直至11月初流产才停止，生产恢复正常。不同胎次、不同妊期母猪主要表现为流产，临产母猪表现为产死胎、畸形胎、木乃伊胎（表1），断奶仔猪主要表现关节肿大、肺脏坏死、绒毛心、肾脏出血等症状。流产前母猪表现厌食、体温升高等症状，流产后逐渐恢复采食。自流产发生后，乳猪和断奶仔猪死淘率明显增高，其中平均“死木弱畸”（死胎、木乃伊胎、弱胎和畸形胎）出现率达26.92%（365/1 356），乳猪死淘率达16.55%（164/991），详见表2。

表1 不同胎次和妊娠期母猪流产情况统计

2 病料采集

采样木乃伊胎（正常产期）、死胎（正常产期）、流产胎儿（2头）、自然死亡弱仔（7日龄）共5头的脑、脾脏、淋巴结、肺脏和肾脏等组织病料，根据各自症状及病变进行了猪乙型脑炎病毒（JEV）、PRRSV、伪狂犬病病毒（PRV）、猪细小病病毒（PPIV）、猪瘟病毒（CSFV）、PCV2和衣原体核酸检测。

3 实验室检测

采用RT-PCR或PCR方法进行上述7种病原的核酸检测。各项检测均使用世纪元亨生产的成品试剂盒。检测结果显示，5头猪的PRRSV、PCV2核酸检测均为阳性，4头猪的衣原体核酸检测为阳性，5头猪的JEV、PRV、PPIV、CSFV核酸检测均为阴性（图1）。

4 临床处置

疫情发生后，采取了无害化处理病死猪以及清洁环境、消毒、隔离等措施；对不稳定猪群，在饲料中添加“清瘟败毒散”“扶正解毒散”，同时先后添加替米考星和土霉素；对母猪群，在饲料中增添人工盐，强化接种PCV2和PRRSV疫苗；对仔猪群，将PCV2和PRRSV疫苗由14日龄接种临时改为7日龄半量、28日龄全量接种，同时接种链球菌疫苗和副猪嗜血杆菌疫苗。采取上述措施后40 d，疫情得到有效控制。

表2 流产期间全场日产仔和健康仔猪死淘情况统计 单位：%

5 讨论

通过临床症状及实验室检测，确定该规模场母猪流产的主要原因可能是PRRSV、PCV2和衣原体造成混合感染。

5.1 关于猪衣原体感染

近年来，猪衣原体病已经成为仅次于猪瘟、PRRS等高危性繁殖障碍性疾病的常见病种之一。1996年有研究发现，育肥猪衣原体肠道感染率高达99%[2-3]。邱昌庆等[4]调查研究发现，1986—2002年我国17个省份中，猪衣原体抗体阳性率在40% 以上的有7个，其中甘肃省最高，为42.2%。

衣原体对外界环境的抵抗力较强，一旦感染猪群，就很难被彻底净化。猪群可通过吸入或者摄入受污染的饲料感染衣原体，感染发生在子宫内时，还可通过配种发生垂直传播。衣原体对包含氧化剂的广谱消毒剂、酚类、氯制剂、季铵盐化合物以及一些清洁剂较敏感[6]。

图1 JEV、PRRSV、PRV、PPIV、CSFV、PCV2和衣原体核酸检测结果

5.2 关于免疫抑制病感染

PRRSV和PCV2是制约养猪业持续健康发展的主要病原。临床上，二者混合感染现象普遍存在，PRRSV和PCV2都属于免疫抑制性病毒，控制难度大，已成为世界养猪业的一大难题，其混合感染会导致猪群免疫力下降，从而导致对其他疫病的易感性增高[7]。

这两种病毒可通过相互作用加重病情。张盼等[8]研究表明，PCV2主要通过侵害机体单核细胞及巨噬细胞等免疫细胞，造成机体免疫抑制，使动物机体免疫应答能力下降，从而无法产生高水平抗体，而PRRSV感染则可使猪只的免疫调节紊乱。王天户等[9]研究表明，PRRSV和PCV2混合感染早期会引发比单独感染更严重、持续时间更长的细胞凋亡，后期主要表现为坏死性病变，导致更严重的免疫抑制。

此外，PRRSV对PCV2的复制有增强作用，并可增加组织样品中PCV2的抗原水平[10]，导致更严重的PCV2联合损伤[11-12]。PRRSV与PCV2混合感染更加严重抑制了宿主的免疫反应，增强了猪只对其他病原的易感性。PCV2还可诱导淋巴系统中B细胞凋亡，严重侵害猪只免疫系统，造成感染猪免疫功能降低，易感性增加[13]。因此，为保证养猪业健康持续发展，疫病的综合防控尤为重要。

5.3 混合感染防控

5.3.1 衣原体防控 怀疑猪场发生衣原体感染时，对于表现出临床症状的猪要进行隔离，对其他未感染的健康猪应避免接触感染猪、其他哺乳类动物以及鸟类的粪便和分泌物等。一般来说，要完全消除或抑制潜伏感染，应通过药敏试验，选择敏感药物。对整个猪场要加强消毒，对于流产排出的胎儿及分娩物要采取合理的无害化处理措施，防止新生仔猪感染[14]。规模场可以制定衣原体免疫程序，发病时采用灭活苗紧急免疫接种[15]。

5.3.2 免疫抑制病防控 要加强生物安全，减少免疫应激，做好防疫管理与疫病监测等综合防控措施，这些都能有效控制免疫抑制性疫病发生[16]。PRRS和PCV2疫苗之间也存在相互作用。研究表明：PCV2疫苗不仅不影响PRRSV疫苗的免疫反应，还可以诱导免疫应答，从而减少PCV2引发的毒血症以及组织损伤等；而PRRSV疫苗不但不能诱导免疫应答，减少由PRRSV引发的毒血症和组织损伤，还会增强PCV2的毒血症和组织损伤。因此，在PRRSV与PCV2混合感染猪中，PRRSV疫苗可能会诱导PCV2复制增强，而PCV2复制的增强会损害免疫系统。鉴于这两种疫苗之间的相互作用，在日常生产中，制定合理的免疫程序是防治混合感染的关键。规模猪场在免疫PRRSV疫苗时，应先检查猪只的PCV2感染状况，只有这样才能有效控制PRRS[17]。此外，免疫抑制性疫病还可以影响其他疫病抗体的产生。杨苗等[18]研究表明，PRRSV和PCV2混合感染会对CSFV抗体产生负面影响，从而影响免疫效果。因此，日常生产中，消除免疫抑制至关重要。