顾福明 沈晴 建德锋
【摘 要】 本试验以软枣猕猴桃的腋芽作为外植体,采用不同配方进行愈伤组织诱导培养,通过比较得出MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L为最佳愈伤组织诱导配方;然后将愈伤组织切块进行不定芽诱导,得出配方MS+6-BA 0.4mg/L分化率最高,所以该配方为最佳配方。
【关键词】 不定芽;软枣猕猴桃;组培
[Abstract] In this study, axillary buds of actinidia chinensis of soft date were used as explants for callus induction culture using different formulas. By comparison, MS+ 6-ba 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L were obtained as the optimal callus induction formula. Then, adventitious bud induction was performed on the cut of callus, and the formula MS+ 6-ba 0.4mg/L had the highest differentiation rate, so this formula was the best one.
[Keywords] adventitious buds; Chinese gooseberry; seed
软枣猕猴桃,猕猴桃科猕猴桃属,又称软枣子,学名Actinidia arguta (Sieb. & Zucc) Planch. ex Miq.。该植物为一高大藤本,长达30cm,叶宽卵形或椭圆形,长5-15cm,宽3-10cm,顶端突尖,基部圆形或微心形,叶缘锐锯齿,叶背面绿色;花白色,3-6朵腋生,花径2cm,花药暗紫色;果球形至椭圆形,径约2.5cm;花期6-7月,果期9-10月。软枣猕猴桃的果实可生食,具有强壮、解热、收敛之效,也可酿酒或制成果酱、果脯食用,此外,该植物也可应用于园林绿化中,作为棚架及立体绿化材料。目前苗圃中软枣猕猴桃常用的繁殖方法为扦插繁殖,但扦插繁殖会受到季节的限制,另外生根率并不高。因此本实验尝试采用组培繁殖技术进行繁殖,但在组培繁殖中,中间繁殖体的获得极为关键,该试验试以软枣猕猴桃的腋芽作为外植体,诱导其形成愈伤组织,再进一步诱导愈伤组织形成不定芽,然后以这些不定芽为中间繁殖体进行扩繁。
1 材料与方法
1.1 試验材料
该试验2018年5月~2018年9月于吉林农业科技学院花卉组培实验室进行。试验前选取生长良好、无病虫害的软枣猕猴桃植株1棵(吉林农业科技学院校园内),作为外植体采集来源母树,进行重点看护,在开始接种前,到母树上采取带腋芽茎段若干备用。
1.2 试验方法
1.2.1 培养及配方 愈伤组织诱导培养基采用4个配比,基本培养基均采用MS,其中添加不同配比的6-BA和NAA,分别记作:A1:MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.1mg/L;A2:MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.2 mg/L;A3:MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.1mg/L;A4:MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.2 mg/L。不定芽诱导培养基设置5个配方,采用在MS基本培养基中添加不同配比的6-BA,分别记作:J1:MS+6-BA 0.2 mg/L;J2:MS+6-BA 0.4 mg/L;J3:MS+6-BA 0.6 mg/L;J4:MS+6-BA 0.8 mg/L;J5:MS+6-BA 1.0mg/L。
1.2.2培养过程 将采集回来的带腋芽茎段截成2~3cm长的小段,先用流水冲洗20min,然后先后用75%的酒精浸泡10min、0.1%的升汞溶液浸泡3s,最后用无菌水冲洗3~5次后备用。超净台内接种时将腋芽剥离后切割为0.5cm大小,接种到4个愈伤组织诱导培养基配方上,待形成愈伤组织并等其生长结构致密后,切成0.5cm小块,接种到4种不定芽诱导培养基配方中,每瓶接3块,每配方接20瓶。整个培养期间注意观察和记录各种实验数据,培养过程中控制温度25℃-28℃,光照2000~3000 Lx,光照时间8~12h,湿度80%~85%。
2 结果与分析
2.1 愈伤组织诱导情况 见表1。
由表1可见,4种愈伤组织诱导培养基中均诱导出了愈伤组织,说明选用6-BA和NAA两种激素是正确的。4种培养基中,A1愈伤组织出现时间最晚,并且愈伤组织诱导率最低,A4出现愈伤组织的时间最早,但是愈伤组织诱导率不是很大。从第25d诱导率统计结果来看,随着NAA添加量的增加,A3诱导率达到最大,A4诱导率出现下降,说明6-BA添加量少,有利于生成愈伤组织,但并不是越少就越好。A3配方的瓶中,虽然第12d形成愈伤组织,但这些愈伤组织长势非常旺盛,并且质量最好。可见,在4个配方中,愈伤组织诱导的最佳配方为A3:MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.1mg/L。
2.2 不定芽诱导分化情况
2.2.1 不同培养基上分化系数 愈伤组织转接到不定芽分化培养基上,均分化形成了不定芽,到转瓶第30d统计每个配方的分化率,见图1。
由图1可知,在5个不定芽分化培养基中,均分化出了不定芽。但5个配方中的分化情况存在一定的差异,J2培养基中分化率最高,达到75%,其次为J3、J4、J1、J5。综合比较得出J2分化效果最好。
2.2.2 已分化培养基上分化情况 见表2。
由表2可知,J2、J4形成不定芽的时间比较早,从平均分化出不定芽的个数来看,J2配方最多,其次为J4配方。结合图1,可以得出J2、J4配方较优,形成不定芽的时间较早、分化不定芽的数量多。综合得出,在5个不定芽分化培养基中,J2(MS+6-BA0.4mg/L )、J4(MS+6-BA 0.8mg/L)配方均适合软枣猕猴桃愈伤组织块进行不定芽的诱导,但J2不定芽分化率较高,所以J2(MS+6-BA0.4mg/L )配方最为适合。
3 结论与讨论
通过软枣猕猴桃组培繁殖中不定芽诱导技术研究,得出MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L配方适合诱导愈伤组织,配方MS+6-BA 0.4mg/L适合不定芽的分化。软枣猕猴桃种子数量多、取种容易,而且发芽率很高,但是幼苗对水分要求高,所以只要满足湿度条件就能大量繁殖砧木苗【4】。现今,软枣猕猴桃园林应用还没有被大规模的使用,果实开发的力度还不够,苗圃育苗仅为少量,关于其组培快速繁殖方面的研究也比较少,本试验利用腋芽进行组织培养,得出了愈伤组织、不定芽两个阶段的最佳培养方式,希望该试验的结论能为整个软枣猕猴桃的离体快繁提供依据。
参考文献:
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